Привет, меня зовут Гурприт. Наша лаборатория исследует механизмы воспаления и восстановления легких. Привет, меня зовут Джессика, и я исследую озоноиндуцированные лабораторные альвеолы крыс с помощью флуоресцентных микроскопических методов.
Привет всем, меня зовут Манприт. И я изучаю воспаление легких с помощью методов визуализации животных. Легкие постоянно сталкиваются с прямыми и косвенными оскорблениями, возникающими из-за стерильных, таких как озон, и микробных компонентов, таких как бактериальный липополисахарид или ЛПС.
Подавляющая реакция хозяина может привести к скомпрометированному дыханию и острому повреждению легких, характеризуясь рекрутированием нейтрофилов легких из-за нерегулируемого иммунного, коагулятивного и тканевого ремоделирования хозяина. Описан комплексный анализ различных компартментов, а именно бронхо-альвеолярной лаважной жидкости, то есть БАЛ, легочной сосудистой перфузата, то есть ЛВП, криоотсеков левого легкого, периферической крови и грудинного и бедренного костного мозга. Для воздействия озона осторожно поместите мышей в специальный индукционный ящик и непрерывно подвергайте мышей воздействию 0,05 PPM озона в течение двух часов.
Для воздействия ЛПС обезболивают мышей под легкой внутрибрюшинной смесью кетамина и ксилазина. Теперь закапывайте 50 микролитров из раствора LPS во внешние нары мышей. Закапывать контрольным мышам 50 микролитров стерильного физиологического раствора.
В указанные моменты времени обезболивают мышей полной дозой смеси кетамина и ксилазина. Затем продезинфицируйте мышей и проверьте на педальные рефлексы, то есть зажмите любой из пальцев задних конечностей, и наблюдайте за втягиванием конечности. Отсутствие рефлекса означает глубокую анестезию.
Теперь сделайте разрез ниже грудины и обнажите сердце. Поместите иглу 25 калибра, прикрепленную к гепаринизированному шприцу, в правый желудочек и проколите кровь путем пункции сердца. Соберите кровь в гепаринизированные шприцы и слейте в микрофьюж-пробирки для дальнейшей обработки.
Осторожно используйте пинцет или тупые щипцы, чтобы очистить область трахеи от вышележек. Теперь прорежьте грудную клетку, чтобы обнажить легкие. Пропустите ватную лигатуру ниже трахеи, и оставьте ее такой на время.
Отрежьте трахею, расположенные примерно на одной трети ее длины от легких для трахеостомии. Вставьте полиэтиленовую канюлю 28 калибра в трахею. Плотно завяжите хлопчатобумажную лигатуру, чтобы удерживать канюлю на месте.
Убедитесь, что вы не сворачиваете канюлю. Теперь постепенно вводят 0,5 мл PBS в канюлю с помощью одного мл шприца. После инъекции PBS аспирировать шприц до тех пор, пока он не сопротивляется всасыванию.
Соберите аспирированную жидкость в меченую микрофаговую трубку и повторите эту процедуру еще два раза. Отрежьте нисходящую грудную аорту в месте между грудной и брюшной половинами, чтобы избежать любого резервирования во время перфузии легких. Промокните полость возле разрезанной аорты, свободной от крови.
Далее перфузировать легкие 0,5 мл гепаринизированного физиологического раствора комнатной температуры, ввести его через правый желудочек. Соберите сосудистую перфусат из полости на разрезаемом конце нисходящей грудной аорты. После перевязки правого бронха дайте левому легкому надуться 0,5 мл параформальдегида в течение пяти минут.
Теперь продезинфицируйте брюшную часть. Отрежьте брюшную часть и отрежьте ее от тазовой кости. Соберите тазовую кость и изолируйте левую и правую бедренные кости в заполненной физиологическим раствором чашке Петри, храняшейся на льду.
Соберите вентральную грудную клетку и грудину в наполненную физиологическим раствором чашку Петри, которая также хранится на льду. Срежьте срезанные концы костей четыре раза 0,5 мл физиологического раствора с помощью хорошо подогнанных игл на шприцах по 1 мл. Соберите фракции из каждой кости в помеченные трубки Falcon, снабженные фильтрами и помещенные на лед.
Центрифугировать все образцы в течение 10 минут при 3000 об/мин. Соберите супернатанты и заморозьте их. Воссоздайте клетки минимум в 200 микролитрах PBS.
Выполните общий подсчет лейкоцитов. Окрашивайте другую жидкость BAL смесью зеленого кальцеина и красного гомодимера этидия одним пятном. Проанализируйте супернатант на хемокины и общую концентрацию белка.
Центрифугировать клетки, чтобы подготовить два цитоспина на каждом слайде и окрашивание для биохимических и иммунных белков. Выполняйте модифицированное окрашивание H и E на криосекциях легких для всех групп. Вручную нарисуйтесь от 150 до 200 ячеек на объединенной панели изображений.
Скопируйте обозначенные области, представляющие интерес, во все каналы. Измерьте заданные параметры для всех каналов. Разделите флуоресцентную интенсивность окрашенной молекулы на интенсивность DAPI или CD61.
Они называются нормализованными коэффициентами интенсивности флуоресцентной мощности DAPI или CD 61. Затем настройте график параметров для оценки любых изменений после экспозиции. Хотя комбинированное воздействие не индуцировало каких-либо изменений в общем количестве клеток BAL, LVP или грудины костного мозга, мыши демонстрировали системный лейкоцитоз через 24 часа, за которым следовала лейкопения через 72 часа после воздействия.
Они отображаются в количестве клеток периферической крови. Количество клеток бедренного мозга показывает поздний всплеск через 72 часа по сравнению со всеми временными точками. Обратите внимание на отсутствие окрашивания Siglec-F и CX3CRI в полиморфноядерных клетках через 24 часа на изображении BAL цитоспина.
Цитоспины BAL и LVP показали наличие больших CD11b и GR1 положительных мононуклеарных клеток в нулевые часы. Полиморфонядерные клетки представлены как преобладающий тип клеток во всех компартментах после воздействия. Общее содержание белка BAL было самым высоким через 36 часов после комбинированного воздействия.
Тем не менее, белок LVP не изменился после воздействия. Уровни эотаксина-2 и интерлейкина-2 были самыми высокими в течение четырех часов в LVP. Эти хемокины были уменьшены во фракции BAL.
Интересно, что нейтрофильные сигналы IL-16 и многие врожденные хемокины были изменены в LVP, но не во фракции BAL. На исходном уровне более 95% клеток BAL были моноядерными, показывающими кортикальные актиновые, ламеллиподии, стрессовые и тубулиновые волокна, и они были сильно положительными для снижения окрашивания митотрекером. Через четыре часа мы наблюдали круговые клетки BAL, которые потеряли актин, но показали растянутую сеть микротрубочек, как показано красным цветом и более низким уменьшением окрашивания митотрекера.
В начале после комбинированного воздействия клетки BAL оказались вдвойне положительными для гомодимера кальциина и этидия-1, что указывает на частично скомпрометированные клетки. Через 36 часов клетки BAL были в значительной степени жизнеспособными, то есть зелеными. Мы наблюдали дискретное окрашивание АТФ альфа и Ly6G в альвеолярных макрофагах BAL и нейтрофилах.
Мы наблюдали снижение DAPI нормализованного альфа АТФ и увеличение содержания внутриклеточного белка Ly6G. Комбинированное воздействие индуцировало переходные экспрессии Bal, естественной клетки-киллера и K1.1, нейтрофильной АТФ, субъединитги PETA, фактора пролиферации, Ki-67 и устойчивых экспрессий нейтрофилов GR1, тромбоцитов CX3CRI и антиангиогенного белка ангиостатина в клетках BAL после воздействия. Хотя ожидалось повреждение бронхиолярной и альвеолярной перегородки, было удивительно наблюдать клеточные агрегаты в более крупных сосудах через 36 часов после воздействия.
Наконец, в этой таблице у нас есть результаты обобщения. Мы надеемся, что наша мышиная модель послужит легкодоступным прототипом, который может быть воспроизведен в лабораториях сдерживания второго уровня для изучения механизмов инвазивной гибели клеток и инфекций. Спасибо.
