Rilevamento di ossido nitrico e anione superossido radicale da spettroscopia di risonanza paramagnetica elettronica da cellule con Spin Traps

Riepilogo

La risonanza paramagnetica elettronica (EPR) spettroscopia è stato impiegato per rilevare ossido nitrico da cellule endoteliali aortiche bovine e radicale superossido da neutrofili umani utilizzando ferro (II)-N-metil-D-glucammina ditiocarbammato, Fe (MGD) ₂ E 5,5-dimetil-1-pyroroline-N-ossido, DMPO, rispettivamente.

Abstract

Azoto reattivo / specie di ossigeno (ROS / RNS) a basse concentrazioni gioca un ruolo importante nella regolazione della funzione delle cellule, di segnalazione, e la risposta immunitaria, ma in concentrazioni non regolamentati sono dannose per la vitalità cellulare ^{1, 2.} Mentre i sistemi viventi si sono evoluti con meccanismi antiossidanti di difesa endogeni e dietetici per regolare ROS generazione, ROS vengono prodotti continuamente come naturali sottoprodotti del normale metabolismo di ossigeno e può causare danni ossidativi alle biomolecole con conseguente perdita di funzione della proteina, taglio del DNA, o lipidi perossidazione ^3, e, infine, allo stress ossidativo che porta a lesioni o morte delle cellule ^4.

Radicale superossido (O ₂ • -) è il principale precursore di alcune delle specie più altamente ossidanti noti presenti in sistemi biologici, come perossinitrito e radicale idrossile. La generazione di O ₂ • - segnala il primo segnale di burst ossidativo, e pertanto, its rilevamento e / o il sequestro nei sistemi biologici è importante. In questa dimostrazione, O ₂ • - è stato generato da neutrofili polimorfonucleati (PMN). Attraverso la stimolazione chemiotattica con forbol-12-miristato-13-acetato (PMA), PMN genera O ₂ • - attraverso l'attivazione di nicotinammide adenin dinucleotide fosfato (NADPH) ossidasi ^5.

Ossido nitrico (NO) sintasi che viene in tre isoforme, come inducibile-,-neuronale e endoteliale-NOS, o iNOS, eNOS nNOS o, rispettivamente, catalizza la conversione di L-arginina a L-citrullina, usando NADPH per produrre NO ⁶ . Qui, abbiamo generato NO da cellule endoteliali. In condizioni di stress ossidativo, eNOS ad esempio possibile passare dalla produzione di NO a O ₂ • - in un processo chiamato disaccoppiamento, che è ritenuto essere causato da ossidazione di eme ⁷ o la co-fattore, tetraidrobiopterina (BH ₄₎ ^8.

Ci sono solo pochemetodi affidabili per la rilevazione di radicali liberi in sistemi biologici, ma sono limitati dalla specificità e sensibilità. Trapping Spin è comunemente utilizzato per l'identificazione di radicali liberi e comporta la reazione di addizione di un radicale di una trappola di spin formando un addotto persistente centrifuga che può essere rilevato dal risonanza paramagnetica elettronica (EPR) spettroscopia. Gli addotti vari radicali presentano spettro distintivo che può essere utilizzato per identificare i radicali che vengono generati e può fornire una grande quantità di informazioni sulla natura e la cinetica della produzione di radicali ^9.

Le nitroni ciclici, 5,5-dimetil-pirrolina-N-ossido, DMPO ^10, il fosforil-sostituito DEPMPO ^11, e l'estere-sostituito, Empo BMPO ¹² e ^13, sono stati ampiamente impiegati come trappole di spin - spin quest'ultimo trappole esibendo emivita più lunga per O ₂ • - addotto. Ferro (II)-N-metil-D-glucammina ditiocarbammato, Fe (MGD) _{2 <}/> Sub è comunemente utilizzato per intercettare NO dovuto alla elevata di formazione di addotti e l'elevata stabilità dell'addotto rotazione ^14.

Protocollo

1. Coltura di cellule endoteliali dell'aorta bovina (BAEC)

1. Corrette tecniche asettiche sono stati seguiti.
2. In un bagno di acqua, terreno senza antibiotici calda a 37 ° C.

Nota: Il mezzo è costituito da fenolo libero terreno Dulbecco modificato Eagle (DMEM) con 4,5 g / L D-glucosio, 4 mM L-glutammina, 1% di amminoacidi non essenziali, integrato con 10% siero bovino fetale (FBS) e 2,5 mg / L fattore di crescita endoteliale.

3. Rimuovere le cellule T75 pallone contenente dall'incubatore e pulire la superficie del pallone con il 70% di etanolo prima di inserirlo all'interno della cappa.
4. Rimuovere il mezzo vecchio usando un aspiratore e lavare due volte con 5 ml di Dulbecco tampone fosfato salino (DPBS).
5. Aggiungere 2 ml di tripsina e attendere per 4-5 min per le cellule di staccare periodicamente, mentre l'ispezione sotto il microscopio.
6. Aggiungere 3 ml del mezzo e ripetutamente miscelare con una pipetta a separato tegli cellule e creare una sospensione omogenea.
7. Trasferire 5 ml del mezzo con tripsina in un tubo da 15 ml e centrifugare a 121 g per 5 min.
8. Rimuovere il surnatante mediante un aspiratore. Aggiungere 5 ml di DPBS e mescolare accuratamente. Centrifugare a 121g per 5 min.
9. Aspirare il supernatante e risospendere il pellet aggiungendo 6 ml del mezzo.
10. Su una piastra da 6 pozzetti, aggiungere 1 ml della sospensione cellulare a ciascun pozzetto si aggiunge 1 ml di mezzo. Mescolare la sospensione con una pipetta.
11. Etichettare la piastra e incubare durante la notte a 37 ° C e 5% CO _2.

2A. Rilevamento di NO con Cell BAEC

1. Corrette tecniche asettiche sono stati seguiti.
2. Rimuovere la piastra da 6 pozzetti dall'incubatore e aspirare il mezzo dal primo pozzetto. Lavare le cellule due volte con 1 ml di DPBS.
3. Aggiungere 210 ul di 1,9 mM ferro (II) solfato eptaidrato (FeSO ₄ .7 H ₂ O, preparare fresco sciogliendo 0,8 mg in1 ml con DPBS CaCl ₂ e MgCl ₂₎ e 210 pl di ammonio N-metil-D-glucammina ditiocarbammato (MGD, preparare fresco sciogliendo 2,7 mg in 500 pl con DPBS CaCl ₂ e MgCl ₂₎ usando un rapporto di 01:07 . (Nota:. Questo rapporto dove viene utilizzato MGD eccesso è stato convenzionalmente impiegati per la preparazione di Fe ^{2 +-MGD} complessa a causa del fatto che la resa di Fe ^{3 +-MGD} è massimizzata in presenza di eccesso MGD L'aggiunta di ascorbato in soluzione per stabilizzare il Fe ^{2 +-MGD} non è necessaria poiché il NO-Fe ^{3 +-MGD} formatosi viene endogenamente ridotto al rilevabile EPR NO-Fe ^{2 +-MGD} da ascorbato, idrochinone, o cisteina con un'efficienza di conversione fino al 99,9% .. Il basso stato di spin diamagnetico di Fe ^{2 +} consente il rilevamento di NO con celle piane o tubo capillare senza la necessità di un dispositivo a bassa temperatura) ^15.
4. Agitare la sospensione risultante bene e aggiungere 4,6 μl di calcio ionoforo (CAI) (preparato da una soluzione stock di 1,9 mM sciogliendo 1 mg in 1 ml di DMSO).
5. Agitare la soluzione nuovamente e incubare a 37 ° C per 36 min per permettere un'ulteriore riduzione di NO-Fe ^{3 +-MGD} al rilevabile EPR NO-Fe ^{2 +-MGD.}
6. Raccogliere il supernatante (425 pl) in un tubo Eppendorf e il trasferimento di una cella EPR piatta (o ad un tubo capillare 50 pl).
7. Parametri di acquisizione EPR sono: frequenza delle microonde: 9,8 GHz; centro del campo: 3427 G; modulazione di ampiezza: 6,0 G, larghezza di scansione: 100 G; guadagno del ricevitore: 1 x 10 ^5, potenza microonde: 10 mW, il numero totale di scansioni: 121; tempo di scansione: 10 s, e la costante di tempo: 20 ms (Nota: poiché i parametri possono variare da uno strumento e le condizioni sperimentali per un altro, quindi, solo il campo centrale, la frequenza e modulazione di ampiezza sono i parametri più importanti da considerare.).
8. Registrare il spettri a temperatura ambiente e il 2-D spettri sono stati integritànominale per ridurre il rumore di fondo e di base corretta con Bruker WinEPR software di elaborazione dati o di altri software di elaborazione. Per la quantificazione della formazione di addotti, trame standard di concentrazione in funzione del intensità del segnale (o area) può essere costruito usando un donatore di NO SNAP.

2B. eNOS Uncoupling Experiment

1. Rimuovere la piastra da 6 pozzetti dall'incubatore e aspirare il terreno dal secondo pozzo e lavare due volte con 1 ml DPBS.
2. Un donatore perossinitrito, 5-ammino-3-(4-morfolinil) -1,2,3-oxadiazolium cloruro (SIN-1) è stato usato per disaccoppiare eNOS ^16. Aggiungere 100 pl di 0,5 mM SIN-1 (M _r 206,6 g / mol, da 10 mM soluzione fotografia preparata sciogliendo 1 mg SIN-1 in 500 pl di PBS senza Ca / Mg ioni) e diluire a 2 ml con DPBS e il 10% FBS.
3. Incubare per 2 ore a 37 ° C e 5% CO _2.
4. Rimuovere la piastra dalla camera umida e lavare due volte con DPBS.
5. Aggiungere 210 pl di2,8 mM FeSO ₄ .7 H ₂ O e 210 microlitri di 19,6 mM MGD preparata secondo la procedura di cui sopra.
6. Agitare la soluzione e aggiungere 4,6 microlitri di 1,9 mM CAI.
7. Agitare la soluzione nuovamente e incubare a 37 ° C per 36 min.
8. Raccogliere il supernatante (425 pl) in un tubo Eppendorf e il trasferimento di una cella EPR piatta.
9. Parametri di acquisizione EPR sono: frequenza delle microonde: 9,8 GHz; centro del campo: 3427 G; modulazione di ampiezza: 6 G, larghezza di scansione: 100 G; guadagno del ricevitore: 1 x 10 ^5, potenza microonde: 10 mW, il numero totale di scansioni: 121; Tempo di scansione: 10 s, e la costante di tempo: 20 ms.
10. Registrare il spettri e il 2-D spettri sono stati integrati per ridurre il rumore di fondo e basale corretta come menzionato sopra.

3. Rilevamento di O ₂ • - da polimorfonucleati neutrofili (PMN)

1. I neutrofili sono stati isolati dal campione di sangue umano come descritto in precedenza ¹⁷.
2. Ottenere una soluzione stock di 1 M * DMPO in PBS contenente 0,1 mM dietilentriammina-pentaacetico acido (DTPA). DMPO ha un punto di fusione di 25-29 ° C ed è quindi più conveniente per pipettare liquidi DMPO (densità ~ 1,02 g / ml a 25 ° C) per una fiala di vetro (Nota: non usare i flaconi di plastica per la pesatura in quanto pura DMPO reagisce con plastica). DMPO congelato può essere sciolto da acqua corrente tiepida al flacone (Nota: non eseguire l'acqua calda come DMPO può decomporsi).
3. È importante utilizzare DMPO elevata purezza (> 99%) poiché alcune delle trappole di spin disponibili in commercio contengono impurità paramagnetici, e pertanto, è indispensabile eseguire spettro EPR della sola soluzione DMPO sola (10 mM in questo caso). È fondamentale che non segnale di fondo è evidente (vedi Figura 3A).
4. Preparare la soluzione madre (1 mg / ml) di forbol-12-miristato-13-acetato (PMA) in DMSO. Effettuare aliquote diluendo la soluzione a 10 ug / ml in PBS.
5. In un 1.5 ml provetta Eppendorf, preparare una soluzione con un volume totale di 0,6 ml seguendo la sequenza di aggiunta: ~ 10 ⁶ cellule per ml di PMN, D-glucosio (1 mg / ml) e albumina (1 mg / ml), 10 DMPO mM e 0,2 mg / ml di PMA. (Nota: PMA è il radicale attivatore e dovrebbe essere aggiunto per ultimo).
6. Trasferire la soluzione in una cella EPR piatto.
7. EPR parametri di acquisizione condizioni sono: frequenza delle microonde: 9,8 GHz; centro del campo: 3486 G; modulazione di ampiezza: 0,5 G, larghezza di scansione: 100 G; guadagno del ricevitore: 5 x 10 ^5, il numero totale di scansioni: 10; tempo di scansione: 30 s ; microonde potenza: 20 mW, e costante nel tempo: 81 ms. Per la quantificazione della formazione di addotti, trame standard di concentrazione in funzione del intensità del segnale (o area) può essere costruito utilizzando i nitrossidi stabili come TEMPO o 3-carbossilico-PROXYL.

* Attenzione sull'uso di DMPO: Utilizzando una cella piatta, si può aumentare la densità cellulare e aumentando il segnaleintensità dell'addotto rotazione ma l'emivita di O ₂ • - addotto di DMPO è breve (t _1/2 ~ 1 min) che si decompone a DMPO-OH. DMPO può essere sostituito con le stesse concentrazioni di Empo, BMPO o DEPMPO che sono disponibili commercialmente per una maggiore stabilità addotto con t _1/2 ~ 8 e 14 minuti, rispettivamente.

4. Risultati rappresentativi

Spin intrappolamento di NO radicale è stata effettuata utilizzando Fe ^{2 +-MGD.} Figure 2A e 2B mostrano alcun segnale EPR da Fe ^{2 +-MGD} o miscela di Fe ^{2 +-MGD} con CAI, indicando che non NO segnale di fondo proviene da questi reagenti. BAEC dopo stimolazione con CAI rilascia NO che reagisce con Fe ^{2 +-MGD} per formare l'addotto di spin, NO-Fe ^{2 +-MGD,} e mostra un segnale di caratteristica tripletto con divisione iperfine costante (hfsc) valore di _N = 12,66 G e g-fattore g = 2,040. (Figura 2C). Il hfsc valore è stato determinato utilizzando il programma di simulazione WINSIM che può essere scaricato dal sito NIEHS Database Software EPR. Il hfsc sperimentale è coerente con il valore di una letteratura _N = 12,70 e G = 2,041 g per ¹⁸ NO-Fe ^{2 +-MGD} addotto. Analogamente, l'effetto di SIN-1 sul BAEC abbassa la produzione di NO per eNOS disaccoppiamento come mostrato nella Figura 2D.

DMPO spin trap è stato utilizzato per O ₂ • - rilevamento. DMPO sola non ha dato un segnale, come mostrato nella Figura 3A confermano che la trappola rotazione è esente da impurità paramagnetiche. Figura 3B è lo spettro di DMPO e PMN solo, e analogamente, non c'è segnale rilevabile suggerendo che il DMPO non provoca attivazione del ossidasi NADPH enzima. figura 3C mostra il segnale osservato EPR ​​alla stimolazione di PMN da PMA. I valori hfsc per questo segnale sono stati determinati per essere un _N = 14,71 G, a _&beta;-H = 11,40 G e _γ-H = 1,25 G, e sono coerenti con i valori di letteratura di un _N = 14,3 G, una _β-H = 11,7 G e _γ-H = 1,3 G ¹⁹ per DMPO-O ₂ H addotto.

Figura 1. Diagramma di flusso per la rilevazione di radicali da neutrofili e BAEC utilizzando trapping EPR rotazione. (A) sono stati mescolati con PMN DMPO e PMA, e la miscela risultante trasferita in una cella EPR piatta per l'acquisizione dei dati. (B) BAEC sono state fatte crescere su una piastra, e lavata con DPBS. Lo spin trap Fe (MGD) ₂ è stato aggiunto insieme con il CAI. La soluzione è stata accuratamente miscelati e incubati. La miscela è stata trasferita ad una cella EPR appartamento EPR acquisizione dati.

Figura 2. Rilevazione EPR di NO da BAEC. (A) Spettro di Fe ^{2 +-MGD} solo (B) Spettro di Fe ^{2 +-MGD} + CAI solo. (C) Triplet spettro derivante da NO trapping da Fe ^{2 +-MGD} con CAI-cellule stimolate. (D) Spettro che mostra diminuzione della produzione di NO per 0,5 mM SIN-1 trattamento di cellule.

Figura 3. Rilevazione EPR di DMPO-O ₂ H dai neutrofili attivati. (A) Spettro di 10 DMPO soli mm. (B) Spettro di PMN solo in presenza di 10 mM DMPO. (C) Spettro di PMN attivato dal PMA in presenza di 10 mM DMPO.

Discussione

Trapping centrifuga EPR è stato impiegato in una vasta gamma di applicazioni biomediche per quantificare e identificare i radicali liberi. Trapping Spin è altamente sensibile, in grado di rilevare radicali a concentrazioni comprese tra nM a pM rendendo così adatto per applicazioni in sistemi biologici. La formazione dell'addotto paramagnetico, NO-Fe ^{2 +-MGD,} è la base di NO rilevamento via EPR. Fe ^{2 +-MGD} reagisce rapidamente con NO ¹⁸ ad una velocità di ~ 10 ⁶

Materiali

Name	Company	Catalog Number	Comments
Nome del reattivo	Azienda	Numero di catalogo	Commenti (opzionale)
Fenolo DMEM libero Alta glucosio 1X	GIBCO	31053
0,25% tripsina-EDTA	GIBCO	25200
L-Glutammina	Fisher Scientific	BP379-100
MEM non amminoacidi essenziali	GIBCO	11140
Siero bovino fetale	Atlanta Biologicals	S11550
Fattore di crescita endoteliale	Millipore	02-102
CAI	Enzo Life Sciences	A-23187	Sciogliere in DMSO
SIN-1	Enzo Life Sciences	BML-CN245-0020
DMPO	Dojindo Laboratories	D048-10
FeSO 4 .7 H 2 O	Sigma Aldrich	215422-250G	Sciogliere in PBS con Ca e Mg
MGD	Enzo Life Sciences	ALX-400-014-M050	Sciogliere in PBS con Ca 2 + e Mg 2 +
Cellule BAEC	Sistemi di celle	2B2-C75
DMSO	Fisher Scientific	BP231-100
DPBS	Sigma Aldrich	D8537
DPBS con CaCl 2 e MgCl 2	A Sigmaldrich	D8662
Forbol-miristato acetato (PMA)	Sigma Aldrich	79346-1MG