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요약

3D 다색 DNA FISH는 3D 보존 핵 내에서 다중 게놈 궤시를 시각화하는 도구를 나타내며, 단일 세포 수준에서 핵 공간 내에서 상호 상호 작용 및 국소화를 명확하게 정의합니다. 여기서, 단계별 프로토콜은 인간 1차 세포의 광범위한 스펙트럼에 대해 기재된다.

초록

세포 생물학에 있는 중요한 질문은 핵 공간 내의 게놈 조직 및 어떻게 염색질 건축이 유전자 발현, 세포 정체성 및 분화와 같은 프로세스에 영향을 미칠 수 있는지입니다. 게놈의 3D 건축을 연구하기 위하여 개발된 많은 접근은 염색체 형성 포착 기지를 둔 기술 (C 기술) 및 화상 진찰의 2개의 상보적인 종류로 분할될 수 있습니다. 전자는 고정 된 세포의 집단에서 염색체 형태와 근위 DNA 상호 작용을 캡처에 기초하는 동안, 후자는, 3D 보존 핵에 대한 체형 혼성화 (FISH)의 DNA 형광에 기초하여, 현대 시각화를 허용 단일 세포 수준에서 다중 위치 (다중 색), 핵 내에서 그들의 상호 작용 및 분포를 검사 (3D 다색 DNA FISH). 3D 다색 DNA FISH의 기술은 핵 아키텍처의 포괄적 인 분석을 허용하지 않고 몇 개의 미리 결정된 궤위만 시각화하는 데 한계가 있습니다. 그러나, 그 결과의 견고성을 감안할 때, 3D 다색 DNA FISH는 3D 현미경 검사법 및 심상 재구성과 결합하여 C 기술 기반 결과를 검증하고 특정 로시의 위치와 조직을 명확하게 연구할 수 있는 방법입니다. 단일 셀 수준에서. 여기서, 우리는 광범위한 인간 1 차 세포에 적합한 3D 다색 DNA FISH의 단계별 방법을 제안하고 성공적이고 유익한 3D 다색을 얻기 위해 필요한 모든 실용적인 행동, 중요한 단계, 3D 이미징 및 데이터 분석에 대한 개념을 논의합니다. 다른 생물학적 맥락 내에서 DNA 물고기.

서문

더 높은 진핵생물은 체계적으로 응축하고 핵1,2,3,4의 분 3D 공간에서 유전 정보의 엄청난 양을 압축할 필요가있다. 오늘, 우리는 게놈이 구획 및 위상으로 연관된 도메인5에서 공간적으로 주문되고 DNA 접기의 다중 수준이 염색질 루프 대형6,7을관련시킬 수 있는 다른 게놈 지구 사이 접촉을 생성한다는 것을 알고 있습니다. 염색질의 3D 동적 루핑은 전사8,9,분화 및 개발10,11,DNA 수리12,13,다양한 질병에 관여하는 동안14,15, 16 및 발달 결함15,17,18과같은 다양한 생물학적 과정에 영향을 미칠 수 있습니다.

3D 게놈 조직을 연구하기 위해 많은 접근법이 개발되었습니다. 염색체 형성 포획 기반 기술(C-기술, 3C, 4C, 5C, Hi-C 및 유도체)은 고정 세포3,4,19,20에서게놈 조직을 연구하기 위해 개발되었다. 이러한 접근법은 물리적 근접에서 게놈 궤위 사이의 접촉 주파수를 포착하는 능력에 기초한다. C-기술은 그 복잡성에 따라, 세포 집단의 글로벌 3D 게놈 조직 및 핵 토폴로지를잡는다 3,4,19,20. 그럼에도 불구하고, 3D 상호작용은 시간과 공간에서 동적이며, 멀티플렉스 상호작용으로 구성된 개별 세포 들 사이에서 매우 가변적이며, 광범위하게 이질적인21,22이다.

3D 다색 DNA 형광을 현장에서 혼성화(FISH)는 단일 세포 수준에서 특정 게놈 궤변을 시각화할 수 있는 기술로, C-기술에 대한 보완적인 방식으로 3D 핵 아키텍처에 대한 직접 적인 조사가 가능합니다. 현재 C-결과의 유효성을 명확하게 확인하는 데 사용되는 기술을 나타냅니다. 3D 다색 DNA FISH는 관심 있는 게놈 성소에 상보적인 형광 표지 프로브를 사용합니다. 상이한 형광단 및 적합한 현미경 장비의 사용은 핵 공간23,24내의 여러 표적의 현대 시각화를 가능하게 한다. 최근, FISH는 고해상도25,26 또는 CRISPR-Cas 접근법과 함께 정밀한 스케일 구조의 시각화를 얻기 위해 현미경 검사법의 기술적 진보와 결합되어 라이브 이미징27,28에서핵산의 시각화를 위한접근법을가지고 있다. 광범위한 채택에도 불구하고, 사용되는 생물학적 물질이 적응되어야하기 때문에 3D 다색 DNA FISH 접근법은 여전히 많은 실험실에서 어려운 것으로 간주됩니다.

여기에서는 광범위한 인간 1차 세포에 적용할 수 있는 3D 다색 DNA FISH(세포/프로브 준비에서 데이터 분석까지)를 위한 포괄적인 프로토콜을 제공하여 다중 게놈 궤적의 시각화를 가능하게 하고 핵의 3D 구조를 보존합니다. 핵 건축을 연구하기 위해서는 핵의 3D 구조를 보존해야 한다. 이러한 이유로, 다른 기존프로토콜(29,30,31)과는 대조적으로, 우리는 크로마틴구조에영향을 미칠 수 있는 알코올의 구배 및 커버슬립의 저장을 피한다. 상기 방법은 보존된 3D DNA FISH프로토콜(24,33)으로부터 적응되어 광범위한 인간 1차 세포에 적용될 수 있으며, 둘 다 생체외에서 분리된 생체내 또는 배양된다. 상이한 핵 형태 및 세포학적 특성(예를 들어, 다른 정도의 핵 다짐, 세포골격 풍부)에 대한 투과 및 탈백인 매개변수가있다 34. 이들 파라미터는 일반적으로 상이한 세포 유형 내에서 절차의 명확한 차별을 제공하지 않고, 다른 프로토콜24,33에서설명된다. 또한 NuCLθD(3D의 핵 접촉 로케이터)라는 특정도구를 개발하여 자동화된 방식으로 핵 공간 내의 다른 동위층과 핵 위상 분포 사이의 3D 근접성을 개선하는 데이터 분석 원칙을 제공합니다.

프로토콜

1. 닉 번역을 가진 DNA 탐사기 준비 및 표지 절차

  1. 정화 하고 깨끗한 세균성 인공 염색체 (BACs), 플라스미드 또는 PCR 제품을 특정 키트(재료 표)로재중단하고 ddH2O로 재중단하고 아가로즈 젤에 전기 영동으로 확인하고 정량화하십시오.
  2. 표 1에따라 모든 시약을 0.5 mL 저결합 DNA 튜브에 혼합하여 50 μL의 최종 부피로 1.1 단계로부터 1.5-2 μg의 DNA에 닉 번역을 수행한다.
    참고: 직접 라벨이 부착된 프로브는 신호 대 잡음 비를 향상시킬 수 있습니다. 닉 번역에 의해 다양한 알렉사 플루오로크롬을 사용하여 간접및 직접 라벨이 부착된 프로브를 생산하는 키트가 시판되고 있습니다.
  3. 시작 DNA 물질의 길이에 따라 한 동안 16°C에서 열 믹서에 닉 번역 믹스를 배양합니다: PCR 제품(각각 2,000 bp의 PCR 제품 풀)의 경우 45분, BAC DNA 및 플라스미드의 경우 최대 4시간.
  4. 2.2% 아가로즈 겔에 전기 동공에 의해 1.3 단계에서 생성 된 프로브의 크기를 확인합니다.
    참고: 최적의 프로브 크기는 <200bp(그림 1A)입니다.
    1. DNA가 충분히 소화되지 않으면, 반응에 DNA 폴리머라제 I 및 0.05 U의 5 U를 첨가하고 16°C에서 1-2시간 동안 배양한 후 다시 확인한다. 0.5 mM EDTA (최종 농도)로 반응을 중지합니다. 프로브를 -20°C로 저장합니다.
  5. 각 DNA FISH 실험에 대해, 프로브가 생성되는 시작 DNA 물질에 따라 다음과 같은 양의 프로브를 침전시: 닉 번역 PCR 제품에서 200 ng, 닉 번역 BACs에서 100 ng, 또는 닉 번역 플라스미드에서 300 ng. ddH2O 최대 150 μL, 20 μg의 라벨이 없는 연어 정자 DNA, 3.5 μg의 종별 Cot-1 DNA, 3 부피 100% EtOH, 1/10 부피 3 M 아세테이트 pH 5.2를 추가합니다. 1 시간 동안 -80 °C에서 침전.
  6. 4 °C에서 1 시간 동안 최대 속도로 원심 분리기를 폐기하고 상한체를 폐기하십시오. 펠릿을 70% EtOH로 두 번 씻으십시오.
  7. 펠렛을 100% 포마미드 pH 7.0의 2 μL로 다시 일시 중단하고, 40°C에서 30분 동안 흔들어 (몇 시간 걸릴 수 있음) 4x 식염수-나트륨 구연산염(SSC)/20% 덱란 황산염의 동일한 부피를 추가합니다.
    1. 175.3 g의 NaCl과 88.2 g의 구연산나트륨을 H2O. 오토클레이브의 최종 부적에 혼합하여 20x SSC를 준비하고, 알리쿼트들을 걸과 준비한다.
      참고 : 다색 DNA FISH의 경우 서로 어닐로 할 수있는 프로브를 제외하고 다른 프로브를 함께 침전 시킬 수 있습니다. 이러한 특정 한 경우에, 그들을 별도로 치료, 침전 및 프로브의 수에 대하여 단계 1.5-1.7에 언급 된 시약을 분할 하는 프로브를 다시 일시 중단. 포르마미드에서 재서스펜션 후에만 프로브를 풀합니다. 유리 커버가 10mm 이하또는 10mm 미만인 경우 슬라이드 크기에 비례하여 1.5-1.7 단계에 사용된 시약의 부피를 확장/축소합니다. 혼성화 프로브는 오랜 기간(최대 2개월)동안 -20°C에서 보관할 수 있습니다.

2. 세포 고정, 전처리 및 투과

참고: 투과 및 탈백통로는 중요한 단계입니다. 시약의 반응 및 농도는 세포 유형, 세포질 풍부 및 핵 형태에 따라 크게 달라집니다.

  1. 인간의 1 차 적인 T 림프구에 대 한 세포 고정, 전처리 및 투과
    참고 :이 프로토콜은 작은 핵과 적은 양의 세포질이있는 작은 세포에 적합합니다.
    1. 유리 커버슬립(10mm, 두께 1.5H)을 사용하십시오.
    2. ddH2O로 유리를 씻은 다음 70 % EtOH로 씻고 건조시십시오. 24웰 플레이트의 각 우물에 한 잔을 사용하십시오.
    3. 0.1% 폴리-L-리신(w/v)의 200 μL을 유리에 직접 추가하여 한 방울을형성합니다. 드롭은 2-5 분 동안 우물을 건드리지 않고 유리 표면에 남아 있어야합니다.
    4. 단계 2.1.3을 두 번 더 수행합니다.
    5. 200 μL의 현탁액 세포(2 x 10 6/mL, PBS 현탁액의 생체 내 1차 T 림프구)를 유리에 직접 놓고, 세포가 실온(RT)에서 30분 동안 종자화할 수 있도록 한다.
    6. 드롭을 빠르게 제거합니다. 갓 만든 4% PFA(PBS/0.1% TWEEN 20, pH 7.0, 여과)를 10분 동안 추가하고 RT에서 시드 세포를 고쳤다.
    7. RT에서 0.05% 트리톤 X-100/PBS(TPBS)로 5분 동안 3회 세척하고 RT에서 10분 동안 0.5% TPBS로 페메라빌화합니다.
    8. 2.5 μL의 RNase 칵테일(재료표)을PBS/웰 250 μL에 37°C에서 1시간 동안 24웰 플레이트에 추가하여 RNase 처리를 수행합니다.
    9. PBS에서 헹구고, 글리세롤/PBS 20%를 추가하고, 4°C에서 밤새 배양(ON)합니다.
      참고: 이 단계는 1시간에서 ON까지 다양합니다. 슬라이드는 4 °C에서 최대 7 일까지 20 % 글리세롤 / PBS로 보관 할 수 있습니다.
    10. 드라이 아이스(15−30s)에 얼린 후 RT에서 서서히 해동하고 글리세롤/PBS 20%에 담가세요. 2.1.9단계를 세 번 반복합니다.
    11. RT에서 0.5% TPBS로 0.5% TPBS를 0.05% TPBS로 세척하고, RT에서 5분 동안 2회, RT. 인큐베이트에서 0.1 N HCl에서 2x SSC에서 12분 동안 2회 동안 세척하십시오.
    12. RT에서 50% 포름아미드 pH 7.0/2x SSC ON으로 인큐베이션합니다.
      참고: 인큐베이션 시간을 최적화하고 결국 줄일 수 있습니다. 슬라이드는 며칠 동안 50 % 포름 아미드 / 2 x SSC에 보관 할 수 있습니다.
  2. 인간 1차 근세포에 대한 세포 고정, 전처리 및 투과
    참고 :이 프로토콜은 세포질의 높은 금액과 큰 세포에 적합합니다.
    1. 성장 배지 (덜베코의 변형 된 독수리 배지 (DMEM), 20 % 태아 소 혈청 (FBS), 25 ng / mL 섬유 아세포 성장 인자 (FGF), 10 ng / mL 표피 성장 인자 (EGF), 10 μg / mL 인간에서 24 웰 플레이트에서 커버 슬립 안경에 직접 인간의 기본 근세포 성장, 1x 글루타민, 1 x 페니실린 / 스트렙 토마이신) 적어도 24 시간 (합류의 50-70 %에 도달).
      참고: 밀착을 용이하게 하기 위해, 젤라틴 또는 콜라겐 또는 폴리-L-리신은 시딩 전에 커버슬립을 코팅하는데 사용될 수 있다.
    2. PBS의 2−3 변경에서 세포를 헹구. 갓 만든 4 % PFA를 추가하고 RT에서 10 분 동안 세포를 고정하십시오.
    3. RT에서 0.01% TPBS에서 3분 동안 3회 세척하십시오.
    4. 2.5 μL의 RNase 칵테일(재료표)을PBS/웰 250 μL에 37°C에서 1시간 동안 24웰 플레이트에 추가하여 RNase 처리를 수행합니다.
    5. PBS에서 헹구고, 글리세롤/PBS 20%를 추가하고, RT에서 ON을 배양하십시오.
      참고: 이 단계는 1시간에서 ON까지 다양합니다. 슬라이드는 4 °C에서 최대 7 일까지 20 % 글리세롤 / PBS로 보관 할 수 있습니다.
    6. 드라이 아이스(15−30s)에 얼린 후 RT에서 서서히 해동하고 글리세롤/PBS 20%에 담가세요. 이 단계를 세 번 반복합니다.
    7. PBS에서 각각 10분 동안 세 번 세 번 씻으시고. RT. 린스에서 0.1 N HCl에서 2x SSC로 5분 동안 배양합니다.
    8. RT에서 50% 포름아미드 pH 7.0/2x SSC ON으로 인큐베이션합니다.
      참고: 인큐베이션 시간을 최적화하고 결국 줄일 수 있습니다. 슬라이드는 며칠 동안 50 % 포름 아미드 / 2 x SSC에 보관 할 수 있습니다.
    9. 평형 슬라이드(50% 포름아미드/2x SSC에 보관)를 2x SSC에서 2분 동안 유지합니다. 그런 다음 PBS에서 3 분 동안 평형화하십시오.
    10. 세포 유형에 따라 몇 초에서 최대 5 분까지 0.01 N HCl / 0.0025 % 펩신으로 치료하십시오. 이 단계에서, 광학 현미경의 밑에 세포를 관찰하고 핵이 세포질에서 자유로이 되는 즉시 반응 (단계 2.2.11)을 중단하고, 그들의 구조를 그대로 유지하면서 (예를 들어, 핵소체는 여전히 가시적이고 손상되지 않음).
    11. 50 mM MgCl 2/PBS에서 각각 5분동안 2회 세척하여 펩신을 비활성화합니다.
    12. 1% PFA/PBS에서 1분 동안 사후 수정하십시오. 2x SSC에서 5분 동안 두 번 씻은 다음 50% 포름아미드/2x SSC를 30분 이상 추가합니다.

3. 3D 다색 DNA 물고기 혼성화

  1. 프로브를 80°C에서 5분 동안 변성한 다음 얼음위에 빠르게 올려 놓습니다.
  2. 깨끗한 현미경 슬라이드에 혼성화 프로브를 로드합니다. 혼성화 프로브의 드롭에 거꾸로 셀커버 슬립을 켭니다.
  3. 커버 슬립을 고무 시멘트로 밀봉합니다. 고무 시멘트를 완전히 건조시키십시오. 그런 다음 가열 블록에 슬라이드를 놓고 75 °C에서 4 분 동안 변성하십시오.
    참고: 변성 타이밍과 변성 온도는 최대 80°C까지 증강할 수 있습니다.
  4. 수조에 떠있는 금속 상자에 37 °C ON에서 혼성화하십시오.
    참고: 신호 대 잡음 비율을 향상시키기 위해 하이브리드화 온도는 최대 42°C까지 올라갈 수 있습니다.
  5. 고무 시멘트를 벗기고 슬라이드를 2x SCC에 담그고 유리 커버 슬립을 제거하고 6 웰 플레이트에서 2 x SSC로 옮깁니다.
  6. 2x SSC를 37°C에서 5분 동안 3회 3회 세척하고, 인큐베이터 셰이커에서 90 rpm에서 흔들어 줍니다. 인큐베이터 셰이커에서 90 rpm에서 흔들어, 60°C에서 각각 5분 동안 0.1x SSC로 3회 세척합니다. 4x SSC/0.2% 트위넨 20으로 간략하게 헹시다.

4. 3D 다색 DNA 물고기 검출

참고: 직접 레이블이 지정된 프로브의 경우 4.1 단계와 4.2단계를 건너뜁니다.

  1. 4x SSC/0.2% TWEEN 20/4% 소 혈청 알부민(BSA)에서 24웰 플레이트에서 37°C에서 20분 동안 블록하고, 인큐베이터 셰이커에서 20 rpm에서 흔들어 줍니다.
  2. 반 디갈산소인 (1:150) 및 / 또는 스트렙타비딘 (1: 1,000)(재료 표)의적절한 농도로 배양하여 4 x SSC / 0.2 % TWEEN 20 / 4 % BSA에서 37 °C의 어둡고 습한 챔버에서 35 분 동안 희석하십시오.
  3. 4x SSC/0.2% TWEEN 20을 37°C에서 5분 동안 3회 세척하고, 인큐베이터 셰이커에서 6웰 플레이트에서 90 rpm에서 흔들어 줍니다.
  4. 24웰 플레이트에서 RT에서 2%의 포름알데히드/PBS로 PBS와 사후 수정을 평형화합니다.
    참고: 직접 라벨이 부착된 프로브는 사후 고정이 필요하지 않습니다.
  5. PBS에서 5배 간세척합니다. RT에서 5 분 동안 1 ng / mL DAPI (4,6-디아미디노-2-페니 린들)/PBS로 얼룩.
  6. PBS에서 5배 간세척합니다. 안티 페이드 솔루션(재료 표)와함께 마운트합니다.

5. 3D 다색 DNA 물고기 현미경 검사법 및 분석

  1. 현미경 시스템으로 3D 이미지를 수집합니다.
    참고: 여기서, 연속적인 단면 사이 0.2−0.25 μm의 축 거리를 가진 광시야 현미경이 사용된다(그림 1B).
  2. 다양한 소프트웨어 및 도구를 사용하여 3D 이미지 스택을 분석합니다(여기, NuCLθD 또는 핵 접촉 로케이터(3D).
    참고 : 도구 NuCLθD는 형광 세포 이미지 z 스택에서 3D 다색 DNA FISH를 자동으로 분석하기 위해 개발되었습니다. NuCLθD는 세포 이미지 스택에서 핵을 3D로 재구성하고 형광 3D 반점을 감지하고 국소화합니다. 핵의 반점(예: 핵의 중심으로부터의 거리 및/또는 핵의 주변으로부터의 거리)과 각 핵 및 중간 반점 거리의 최대 반경을 측정합니다. 사용된 도구와 알고리즘은 Cortesi 등16에완전히 설명되어 있습니다.
  3. NuCLθD에서 검색한 데이터(예: 지정된 게놈 로시와 핵 중심 및 접촉 주파수 사이의 3D 거리)를 분석합니다.
    참고: 지정된 게놈 궤체와 핵 중심 사이의 3D 거리의 경우 각 핵의 최대 반지름에서 거리를 정규화하고 이러한 데이터를 핵 중심에서 정규화된 거리의 주파수 분포로 나타냅니다. 장거리 상호 작용 연구의 경우, 접촉 주파수는 변화할 수 있고 약 2 μm35를넣을 수 있는 임계값 인터-거리와 함께 10-20%21의 범위에 있어야 한다.
    1. 통계 분석을 수행하려면 생물학적 복제당 약 100개의 핵을 분석합니다. 지정된 게놈 궤변 사이의 3D 거리를 선택한 임계값 간 거리 미만의 거리의 누적 주파수 분포로 나타내고 t-test를 사용하여 분포의 차이의 유의성을 평가합니다. 또한 선택한 임계값 간 거리 미만의 상호 작용에 대해 핵 양성 비율을 계산하고 Fisher의 정확한 테스트를 사용하여 백분율차이의 유의성을 평가합니다.

결과

이 문서에서 기술된 3D 다색 DNA FISH의 방법은 보존된 3D 핵 내의 다른 게놈 성소의 현대 시각화를 허용합니다(그림 1B). 이 프로토콜은 그들의 공간 근접성을 평가하고, 핵 공간 내의 위치(예를 들어, 핵의 중심 또는 주변으로부터의 좌위 거리) 16내에서 그들의 위치를 평가하기 위해 대두, 및 상이한 게놈 좌위 사이의 거리를 측정할 수 있도록한다 16.

토론

현재의 방법은 광범위한 인간 1차 세포에서 3D 다색 DNA FISH를 수행하기 위한 단계별 프로토콜을 설명한다. DNA FISH는 광범위하게 사용되는 기술이지만, 보존된 3D 상간 핵에 대한 3D 다색 DNA FISH는 주로 사용되는 시료의 특성으로 인해 많은 실험실에서 수행하기가 여전히 어렵다23,24.

프로브 닉 번역은 성공적인 3D 다색 DNA FISH를 위한 기?...

공개

저자는 공개 할 것이 없다.

감사의 말

저자는 INGM 이미징 시설 (이스티투토 나치오날레 디 유게코콜라 몰레콜라 "로미오 에드 엔리카 인버니치"(INGM), 밀라노, 이탈리아, 특히 C. Cordiglieri의 기술 지원을 인정, 3D 다채 DNA FISH 이미지 동안 도움 수집. 이 작품은 B.B.에 다음과 같은 보조금에 의해 지원되고있다: EPIGEN 이탈리아어 주력 프로그램, 협회 프랑수아즈 콘트 레 Myopathies (AFM-텔레톤, 그랜트 nr 18754) 및 조바니 Ricercatori, 건강의 이탈리아 정부 (GR-2011-02349383). 이 작품은 F.M.에 다음과 같은 보조금에 의해 지원되고있다: 폰다지오네 카리플로 (반도 조바니, 부여 nr 2018-0321).

자료

NameCompanyCatalog NumberComments
24-well platesThermo Fisher Scientific142475
6-well platesThermo Fisher Scientific140675
Anti-Digoxigenin 488DBADI7488
b-MercaptoethanolSigmaM3148
bFGFPeproTech100-18B
Biotin 11 d-UTPThermo Fisher ScientificR0081
BSA (bovine serum albumine)SigmaA7030
CoverlsipsMarienfeld117500
CY3 d-UTPGE HealthcarePA53022
DAPI (4,6-diamidino-2-phenylindole)Thermo Fisher ScientificD21490
Deoxyribonucleic acids single strand from salmon testesSigmaD7656
Dextran sulfate (powder)Santa Cruzsc-203917A
Digoxigenin 11 d-UTPRoche11093088910
DMEMThermo Fisher Scientific21969-035 500mL
DNA polymerase IThermo Fisher Scientific18010-017
DNase ISigmaAMPD1
dNTPs (C-G-A-T)EurocloneBL0423A/C/G
EGFSigmaE9644.2MG
EthanolSigma02860-1L
FBS HycloneThermo Fisher ScientificSH30109
Formaldehyde solutionSigmaF8775-25mL
FormamideSigmaF9037
GlutammineThermo Fisher Scientific25030-024 100mL
GlycerolSigmaG5516-100mL
GlycogenThermo Fisher ScientificAM9510
HClSigma30721
Human Cot-1 DNAThermo Fisher Scientific15279-001
Insulin HumanSigmaI9278-5 mL
MgCl2Sigma63069
NaAc (Sodium Acetate, pH 5.2, 3 M)SigmaS2889
NaClSigmaS9888
ParaformaldehydeSigma158127-25G
PBS (phosphate-buffered saline)SigmaP4417
Pennycillin/StreptavidinThermo Fisher Scientific15070-063 100mL
PepsinBioradP6887
PhasePrep BAC DNA KitSigmaNA0100-1KT
Poly-L-lysine solutionSigmaP8920
ProLong Diamond Antifade MountantThermo Fisher ScientificP36970
PureLink Quick Gel Extraction & PCR Purification Combo KitThermo Fisher ScientificK220001
PureLink Quick Plasmid Miniprep KitThermo Fisher ScientificK210010
RNAse cocktailThermo Fisher ScientificAM2288
RubbercementBostik
SlidesVWR631-0114
Streptavidina Alexa fluor 647Thermo Fisher ScientificS21374
Tri-Sodium CitrateSigma1110379026
Tris-HClSigmaT3253-500g
Triton X-100SigmaT8787-250mL
TWEEN 20SigmaP9416-100mL

참고문헌

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  3. Schmitt, A. D., Hu, M., Ren, B. Genome-wide mapping and analysis of chromosome architecture. Nature Reviews: Molecular Cell Biology. 17 (12), 743-755 (2016).
  4. Bonev, B., Cavalli, G. Organization and function of the 3D genome. Nature Reviews: Genetics. 17 (12), 772 (2016).
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