ブタモデルにおけるアドミタンスカテーテルによる閉鎖胸部両室圧容積ループ記録

要約

ここでは、急性右心室機能障害を有するブタにおける入院ベースの両心室圧 - 体積ループ記録に対する閉鎖胸部アプローチを提示する。

要約

圧力 - 体積(PV)ループ記録は、心室性能の負荷独立変数の最先端の調査を可能にします。単心室評価は、しばしば前臨床研究において行われる。しかしながら、右心室および左心室は、それらの並列および直列接続のために機能的相互依存性を発揮し、両方の心室の同時評価を奨励する。さらに、様々な薬理学的介入は、心室およびそれらの前負荷および後負荷に異なる影響を及ぼす可能性がある。

我々は、急性右心室(RV)過負荷のブタモデルにおけるアドミタンスベースの両心室PVループ記録に対する我々の閉鎖胸部アプローチを説明する。私たちは、超音波によって導かれるすべての血管アクセスで低侵襲技術を利用しています。PVカテーテルは、閉鎖胸部アプローチが関連する心肺生理機能を維持するため、動物の開胸術を避けるために、透視的ガイダンスの下で配置される。アドミタンス技術は、ポストホック処理を必要とせずにリアルタイムのPVループ記録を提供します。さらに、提示された手順の重要な時点におけるいくつかの重要なトラブルシューティング手順について説明します。

提示されたプロトコールは、大型動物モデルにおいて二心室性心臓PVループ記録を得るための再現性があり生理学的に関連するアプローチである。これは、多種多様な心臓血管動物研究に適用することができます。

概要

圧力-容積(PV)ループには、収縮終期および拡張末期の圧力および体積、駆出率、一回拍出量、および脳卒中作業を含む多数の血行動態情報が含まれています¹。さらに、過渡的な予荷重低減により、負荷独立変数を導出できるループのファミリが作成されます^2,3。心室機能のこの負荷に依存しない評価は、血行動態評価においてPVループ記録を最先端のものにします。PVループ記録はヒトで行うことができますが、主に前臨床研究で使用され、推奨^{されています4,5,6}。

圧力 - 体積ループは、右心室(RV)および左心室(LV)の両方から得ることができる。ほとんどの研究仮説は単一の心室に焦点を当てており、その結果、単室PVループのみが記録されています7,8,9,10。しかしながら、右心室および左心室は、タイトな心膜¹¹内でのそれらの直列および並列接続のために収縮期および拡張期の相互依存性を発揮する。一方の心室の出力またはサイズの変化は、他方の心室のサイズ、負荷条件、または灌流に影響を及ぼす。したがって、両心室PVループ記録は、総心臓性能のより包括的な評価を提供する。薬理学的介入はまた、2つの心室およびそれらの負荷条件に異なる影響を与え、両心室評価の重要性をさらに強調する。

PVカテーテルは、心臓の頂点からのアクセスを伴う開放胸部アプローチを含むいくつかのアプローチによって、またはRV流出路を介して、いずれかの心室に進めることができる⁷、10、12、^13、14。しかし、胸郭の開口部は生理学的条件に影響を与え、バイアスを導入する可能性がある。

これまでの研究^15,16,17,18の経験に基づいて、我々は、心肺生理機能への影響が最小限に抑えられた急性RV不全の大型動物モデルにおける両心室PVループ記録に対する閉鎖胸部アプローチを提示することを目指しています(図1)。

プロトコル

このプロトコルは、動物福祉と倫理に関するデンマークおよび機関のガイドラインに準拠して実施された研究のために開発され、利用されました。デンマーク動物研究検査官は、この研究を承認した(ライセンス番号2016-15-0201-00840)。約60kgのデンマークの雌屠殺豚(ランドレース、ヨークシャー、デュロックの交配種)が使用された。

1.麻酔と換気

1. 輸送中の動物のストレス、痛み、不安を軽減するために筋肉内注射として、Zoletilミックス1mL / kg( 材料表を参照)で覚醒ブタを麻酔前麻酔します。
2. 動物を農場施設から研究施設に輸送する。
3. 耳静脈に静脈内アクセスを確立する。
   1. これを行うには、耳を軽く止血して静脈血の停滞を引き起こします。目に見えるまっすぐな静脈の上の皮膚をエタノールで消毒する。
   2. 20G静脈カテーテルで静脈を穿刺し、止血帯を解放する。変位を避けるために、必ず粘着テープでアクセスを固定してください。
   3. 静脈カテーテルの適切な位置を確保するために、等張生理食塩水で洗い流してください。生理食塩水が通過するにつれて静脈のわずかな脱色を観察してください。
      注:皮下の膨らみが現れた場合、静脈カテーテルは皮下の位置にあり、取り外す必要があります。2 回目の静脈内アクセスをバックアップとして確立することを検討してください。
4. 動物を手術台に移動します。仰臥位に置きます。
5. サイズ7のチューブで直接喉頭鏡検査によってブタを挿管する。偶発的な抜管を避けるために、チューブを動物の鼻/頭に固定します。換気、聴診および/または十分な呼気二酸化炭素で等しい胸部の動きを探すことによって、チューブの正しい位置決めを確実にします。
6. チューブを事前にテストされた機械式人工呼吸器に接続し、換気を開始します。一回換気量8 mL/kgの圧力制御容積ゲート換気と低流量換気を使用してください。インスピレーション酸素(_FiO2)の割合は、正常酸素症以上で0.21であり得る。5kPaの潮汐終末二酸化炭素をターゲットにするように呼吸数を調整します。
7. プロポフォール3mg / kg / hおよびフェンタニル6.25g / kg / hによって総静脈内麻酔を開始する。角膜反射の欠如および痛みを伴う刺激に対する反応によって十分な麻酔を確実にする。必要に応じて注入を増やしてください。
   注:動物が胸骨の臥位(生存プロトコル)を維持するのに十分な意識を取り戻すか、安楽死するまで、動物をいつでも放置しないでください。
8. 3誘導心電図とパルス酸素濃度計で動物を監視します。
9. 体温を測定します。必要に応じて、38〜39°Cの通常のブタ温度を標的とする動物を加熱する。
   注:低体温症は、機器によって引き起こされる不整脈発生のリスクを高める可能性があります¹⁹。
10. 経膣アクセスにより膀胱カテーテル(サイズ14)を挿入し、尿サンプリングバッグに接続します。
11. 研究プロトコールと調査する科学的仮説に応じて、ヘパリンを静脈内投与すること(必要に応じて4〜6時間ごとに5000 IEを繰り返す)および/またはアミオダロン(20分にわたって300mg注入)を検討する。
    注:ヘパリン化は、血管内アクセスが確立された後に行うことができる。これらの薬物は、機器を容易にするかもしれないが、結果を偏らせる可能性がある。あるいは、静脈内鞘へのゆっくりとした生理食塩水注入は、管腔内血栓症を予防することができる。
12. 乾燥を防ぐために目に獣医軟膏を使用してください。

2. 血管内アクセス

注:血管内アクセスは、右外頸静脈、左外頸静脈、左頸動脈、左大腿動脈、および右大腿静脈に確立されるべきである。ブタでは、外頸静脈は内頸静脈よりもはるかに大きいので、アクセスしやすいです。このセクションに必要なすべての材料を 図2Aに示します。

1. 血管内アクセスのために穿刺部位で動物を剃る。
2. クロルヘキシジン(またはポビドンヨウ素)で皮膚を消毒し、イソプロピルアルコールを使用してきれいに拭きます。さらに2サイクル繰り返します。
3. カバーの中央に穴を開けた消毒した場所に滅菌ドレープを置きます。
4. リニアプローブを備えた超音波装置を使用してください。プローブを滅菌カバーで覆い、血管検査に滅菌ゲルを使用してください。
5. 17G滅菌静脈カテーテルを使用して皮膚を穿刺し、超音波によって針を血管内位置決めに導きます(図2B、C)。
6. セルディンガー技術を使用して針をガイドワイヤーと交換します。血管内腔にガイドワイヤーだけを残して静脈カテーテルを取り外します。次に、シースの挿入を容易にするために、ガイドワイヤーに付着する小さな皮膚切開部(〜5mm)を作る。
7. 8フレンチ(F)のシースをガイドワイヤーの上に置き、選択した容器に入れます(セルディンガー技法)。右外頸静脈(右心臓のカテリゼーション用)と左頸動脈(LV PVループカテーテル用)の8Fシースを選択します。カテーテルの損傷を避けるために十分な内腔が必要である。
8. 左外頸静脈に7Fシースを置きます。後で大きなシースと交換されます(ステップ4.4-4.6を参照)。
9. 左大腿動脈に7Fシースを置きます。アクセスは、侵襲的な血圧測定と血液ガスサンプリングのためのものです。
10. 下大静脈(IVC)バルーン挿入のために、右大腿静脈に12F(または利用可能な場合は14F)シースを置きます。より大きなシースに対して 2 段階のアプローチで拡張器を使用することを検討してください。
11. 血液(静脈または動脈、それぞれ)を採取し、等張生理食塩水で簡単に洗い流すことによって、すべての鞘の位置を確認し、制御する。シースは、抵抗なく血液を採取することができれば、血管内に正しく配置されます。
12. シースの偶発的な除去を避けるために、すべてのシースを皮膚縫合糸(サイズ3.0)で固定する。皮膚縫合糸は、シースの除去とともにプロトコルの完了後に除去される。
13. 大腿動脈アクセスを圧力トランスデューサに接続し、大気圧に較正します。この設定で動脈圧曲線の正しい形式が生成されていることを確認します。
14. 動脈鞘から動脈血液サンプルを採取し、動脈血液サンプラー装置で分析して、pH、二酸化炭素の動脈分圧(PaCO2)、酸素(PaO2、選択した_FiO2に応じて)、ヘモグロビン、電解質、血糖、乳酸レベルを評価します。
    1. 必要に応じて、必要な製品の注入により電解質および血糖値を標準値に修正する。特に、カリウム障害は機器によって引き起こされる不整脈発生のリスクを高める可能性があるため、カリウムレベルの補正を検討してください。
15. ブタが実験前に空腹時であった場合は、血液量減少に対抗するために、等張生理食塩水(10mL / kgを30〜60分かけて注入)または同様の結晶質のボーラス注入を検討してください。
16. プロトコル全体で発汗に対抗するために、4mL/kg/h等張生理食塩水の連続注入を検討してください。
    注: この手順では、実験を一時停止できます。

3. 右心のカサライゼーション

1. スワンガンツカテーテルを生理食塩水で洗い流し、バルーンが正しく膨張していることを確認します。
2. スワンガンツカテーテルのポートを圧力トランスデューサに接続します。ブタの中腋窩レベルで2つの圧力ポート(それぞれ肺動脈圧と中心静脈圧)を保持する圧力を大気圧にリセットします。
3. スワンガンツカテーテルを右頸静脈の8Fシースに挿入します(ステップ2.7)。
   警告: 透視法を使用するときは、鉛のエプロンまたは同様の保護具を着用してください。
4. スワンガンツカテーテルの遠位部がシースから外れているときに透視検査で観察してください。関連するシリンジでバルーンを膨らませます。
   注:鞘の内側にある白鳥のガンツ風船が膨張すると、風船が損傷します。透視検査の前後視は、記載されたすべての手順に十分である。
5. スワンガンツカテーテルを透視法での動きに従ってゆっくりと進めます。遅い進歩は血流がカテーテルを導くことを可能にする。
6. 遠位ポートからの圧力信号がRVに入るとき、および肺動脈の直後に圧力信号の変化を観察します(図3)。カテーテルが抵抗なく進むようにしてください。
   1. 圧力が中心静脈循環における5〜8mmHgから収縮期における20〜30mmHgおよびRVにおける拡張期の0〜5mmHgに変化することを確認する。肺弁を通過した後、拡張期血圧は10〜15mmHgになります(圧力信号の形状の変化については 図3 を参照)。
      注:RVおよび肺動脈の収縮期血圧が40を超える(または平均肺動脈圧が25を超える)場合は、動物の肺炎感染による肺高血圧症の徴候である可能性があります。陽圧の機械的換気も肺動脈圧を上昇させる可能性があることを覚えておいてください。
7. バルーンを収縮させ、遠位圧ポートがまだ主肺動脈にあることを確認します。この検証には、透視法と圧力信号の両方を使用します。

4. 右室圧-容積カテーテル挿入(図4)

1. 製造元の指示を読み、それに従ってください。PVカテーテルを生理食塩水に少なくとも30分間浸すのを許します。
2. データ集録ソフトウェア( 材料表を参照)を8チャンネルのセットアップ(両方の心室からの圧力、体積、位相、および大きさ)で開きます。[ 開始 ]をクリックして、圧力信号が記録されていることを確認します。圧力信号に過度のノイズがないか探します。圧力レコーダーはまだ動物の外側にあるため、値は0mmHgに近くなります。
3. 圧力ポートを生理食塩水の表面のすぐ下に保持して圧力をゼロレベルに較正し、上の水柱からの望ましくない圧力効果を回避します。
4. 左頸静脈の7Fシースに長いガイドワイヤーを挿入します(ステップ2.8)。透視検査によって導かれて、ガイドワイヤーを上部中央静脈、右心房(RA)、および下大静脈に前進させる。進歩が何の抵抗もないことを確認してください。早期収縮期イベントは、ガイドワイヤがRAを通過するときに一般的です。
5. ガイドワイヤーを静脈循環に残した7Fシースを抽出する。エントリ ポイントを圧縮して、出血を防ぎます。セルディンガー技法を使用して、7Fシースを16Fシースに交換します。必要に応じて、より大きなシースのために皮膚切開部を延長する。
6. 透視法によって導かれて、シースの先端(拡張器ではない)が上大静脈のレベルに達するまで、ガイドワイヤーを介して16Fシースを前進させる(図4B)。
7. 慎重に引っ張ってダイレーターとガイドワイヤーを抜きますが、シースを外さないように注意してください。内腔内の血液凝固を避けるために、等張生理食塩水でシースを洗い流す。
8. PVカテーテルを16Fシースに挿入します。
9. 透視法を使用して、PVカテーテルがシースを通過するときに、圧力ポートがシースを離れるまで追跡します。
10. シースが心膜境界のすぐ外側になるまで、シースとPVカテーテルをまとめて慎重に進めます。
11. PVカテーテルをRAに進めます(図4C)。
12. シースの長さを使用して、PVカテーテルをRAからより前方に配置されたRVに前進させるのに役立ちます。16Fシースの外部端を下向き(仰臥位動物の後方)および内側に向け、シースの内部端を前方に向ける。
13. PVカテーテルをRVに進めます。これは、PVカテーテルから古典的な心室形状への圧力信号の変化、およびPVカテーテルが右心室頂点を満たすときの触覚抵抗によって検証することができる。
14. PVカテーテルがRVに入ったら、心臓の近くに位置するデバイスの血行力学的または電気的影響を避けるために、胸腔の外側に16Fシースを後退させます(図4D)。
15. PVカテーテルの位置決めは、透視法に基づいて、RV頂点にできるだけ近づけて最適化しますが、心内膜に触れさせないでください。
    注:透視法を使用して、PVカテーテルと心内膜との間の過剰な機械的接触(存在する場合)を観察します。これは、曲がったPVカテーテル(そのピグテールを含む)および心電図モニタリングを介した持続的な早期収縮期事象と見なされる。
    1. PVカテーテルを接着テープでシースの外端に固定し、カテーテル位置決めの安定性を確保します。
       注:時折、フローティングカテーテルが余分なビートを引き起こすことがあります。もしそうなら、心内膜をあまり圧縮せずに固定してみてください。
16. メーカーのプロトコルに従って、関連する記録セグメント数を選択し、記録された位相および大きさの信号に基づいてRV内のPVカテーテルの位置決めを最適化します。
    注:体重60kgのブタの場合、RV用の2つまたは3つのセグメント、およびほとんどの場合、LV用の3つのセグメントがこの実験に使用された。より小さな動物で必要とされるセグメントが少なくなり、その逆も同様です。カテーテルの位置決めは、最初は信号の大きさに基づいていた。圧力 - 大きさループの形状は、所望の圧力 - 体積ループのように見えるべきである。マグニチュードの振幅はできるだけ大きくする必要があります(5~10 mS)。位相角は、可能な限り高い振幅(約1.5 ^o )で1〜3 ^o以内にする必要があります。

5. 左室圧-容積カテーテル挿入(図5)

1. 製造元の指示を読み、それに従ってください。PVカテーテルを生理食塩水に少なくとも30分間浸すのを許します。
2. 圧力をゼロレベルに較正します(ステップ4.3)。
3. 左頸動脈の8FシースにPVカテーテルを挿入します。
4. PVカテーテルがシースを通過して大動脈弁に向かうのを透視法で追跡します(図5B)。PVカテーテルが大動脈弁によって停止されると抵抗が感じられる。透視では、カテーテルの屈曲が観察される。
   注:時折、PVカテーテルは下降大動脈に変わります。これは透視検査によって認識され、PVカテーテルの圧力曲線上のあまり目立たない大動脈ノッチである。
5. PVカテーテルを大動脈弁から約1cm上に引っ込める。
6. PVカテーテルの次の急速な進歩を心周期の収縮期に同期させる。これは開いた大動脈弁を通して起こります。成功は、PVカテーテルから古典的な心室形状への圧力信号の変化によって検証することができる。
7. バルブを通って前進しようとする試みが失敗した場合は、PVカテーテルを回転させて、上行大動脈の中心により良い位置決めをします。必要に応じて再試行してください。
8. LVの内部に入ったら、左心室PVカテーテルの位置決めを透視法に基づいて最適化し、できるだけLVの頂点に近づけますが、心内膜に触れさせないでください(図5C)。ステップ 4.15 を参照してください。
   注:時折、浮遊カテーテルは早期の心臓収縮を引き起こす可能性があります。もしそうなら、心内膜をあまり圧縮せずに固定してみてください。
9. メーカーのプロトコルに従って、関連する記録セグメント数を選択し、記録された位相信号と振幅信号に基づいてLVでのPVカテーテルの位置決めを最適化します(ステップ4.16を参照)。

6.下大静脈バルーン挿入

1. インフレーション用のシリンジに生理食塩水または造影剤を好適に充填し、バルーンが正しく膨張できることを確認します。
2. 右大腿静脈の12Fシースにガイドワイヤーを挿入します。
3. ガイドワイヤーをダイヤフラムのレベルでIVCに進めます。
4. バルーンをガイドワイヤーの上に挿入し、有効期限終了時にダイヤフラムレベルまで進めます(図5D)。
5. ガイドワイヤーを引っ込め、血液凝固を避けるために生理食塩水で内腔を洗い流します。

7. 圧力 - 容積カテーテル校正

1. 製造元の指示を読み、それに従ってください。
2. 心電モニターで安定した洞調律と安定した心肺変数を5〜10分間確保します。
3. スワンガンツカテーテルを使用して、熱希釈による心拍出量(CO)を測定します。10%未満の変動で10mLの5°C等張性グルコースを平均3回注射する。CO測定中の動物の心拍数(HR)を観察します。ストロークボリューム(SV)をSV = CO/HR(単位mL)として計算します。通常のCOは、一回拍出量が80〜110mLの60kgブタに対して4〜6L/分である。
4. SV を LV と RV の両方の PV ボックスに入力します。
5. 最適な位相と大きさの信号が両方の心室から受信されていることを確認します。特に、2つのPVボックスは、電子クロストークを避けるために異なる周波数で記録する必要があります。
6. 一時的な無呼吸では、PV信号を較正(「スキャン」)します。
7. キャリブレーションが満足のいく場合は、心室PVループの適切な形状と、現実的な圧力と体積の両方を確認してください。そうでない場合は、キャリブレーションをやり直してください。

8. ベースライン評価

注:研究プロトコールが開始される前に、血行動態の安定化のためにこのレベルで実験を一時停止することができます。

1. PVループを記録する場合は、製造元の指示に従ってください。データ集録ソフトウェアで [開始 ]を押します。PVループがまだ許容できる形状であることを確認します。
2. 30〜60秒の連続換気でPVループを記録します。例えば、3つの呼吸サイクルの平均を見つけることによって分析を行う。または、人工呼吸器で最終有効期限の一時的な息止めを実行し、無呼吸からこれらのループを分析します。正の呼気終末圧力(PEEP)と最小調整可能な圧力制限(APL)バルブを低く/まったく持たないことを検討してください。
   注:心室機能、特にRVは、換気(または自発呼吸)中の胸腔内圧の周期的な変化の影響を受けます。重要なのは、換気中または無呼吸中にPVループが記録されたかどうかを紙に報告することです。
3. 負荷に依存しないPV変数の場合、ブレスホールドを行い、数回の心臓の鼓動を待ってから、選択した液体でIVCバルーンをゆっくりと膨らませます(ステップ6.1)。バルーンは心臓の予圧を徐々に減少させます。
4. RV PV ループが徐々に小さくなり、左にシフトする様子を観察します。
   注: RV プリロードの漸進的な減少は、RV 拡張期末期容積を徐々に低下させます。体積が低いほど、圧力と出力が低くなります(スターリング機構)。詳細については、参考文献^1,2,3を参照してください。
5. 重要なことに、関連するシリンジへの圧力をLV予圧の減少(RVと直列接続)に十分な長さに保つことによって、バルーンを膨張させておく。LV圧力と体積の漸進的な減少も観察してください。例については、「代表的な結果」セクションを参照してください。
6. すぐに、風船を収縮させ、換気をオンにします。
7. 応答が満足のいくものでない場合、すなわち、早期の心臓複合体、洞徐脈、または同様に影響を受けた心機能がない場合、8.3-8.7をやり直す。
8. ブタが次のIVC閉塞の前に2〜5分間安定するのを許してください。
   注:血行動態は、特に心血管障害のモデルにおいて、息止めおよび予負荷低下によって一時的に影響を受ける。
9. 統計分析のロバスト性を高めるために、満足のいくオクルージョンを 3 つ実行すること (8.7 を参照) を検討してください。

9. ポストプロトコル

1. 生存率研究では、すべての血管内機器(PVカテーテル、IVCバルーン、およびスワンガンツカテーテル)を取り外して清掃します。
   1. シースを所定の位置に保持していた皮膚縫合糸を切断する。手動で引っ張って各シースを取り外します。止血を達成するために、各静脈アクセス部位を数分間圧縮する。
   2. 動脈の場合は、シースを取り外し、より長く(5〜10分間)圧縮して止血を達成します。あるいは、血管閉鎖装置の使用を検討してください。
   3. 出血や感染を避けるために、1つの適応皮膚縫合糸(3.0、吸収性縫合糸)でシースからの皮膚切開部を閉じます。痛みを和らげるために、各皮膚切開部の周りに5mLのブピバカイン(5mg / mL)を皮下に塗布する。
2. すべての装置が取り外され、止血が達成されたら、麻酔の注入を止める。この段階で動物を注意深く観察してください。
3. 喉の反射が存在し、動物が抜管のために十分に目覚めるまで、動物を挿管したままにしておきます(最初は袖口を膨らませたまま)。適切な換気を確保するために、抜管の前後にパルス酸素濃度計を介して酸素レベルを測定してください。必要に応じて酸素を塗布します。
4. 完全に回復するまで、動物を他の動物の会社に返さないでください。
5. 生存手術のために、適切な滅菌状態を維持してください。手順 2.2-2.5 を参照してください。動物の体温の測定を含む感染の徴候のために毎日皮膚切開および縫合糸を観察してください。
6. 実験が終了したら、致死量のペントバルビタール(15mL、400mg/mL)で安楽死を行う。

結果

本説明書は、大型動物においてRVおよびLVの両方からアドミタンスベースのPV記録を達成するためのアプローチを説明する。

RVとLVの同時PV記録を比較するために、我々は最大の研究18からの両心室CO測定値の線形回帰を、RV COとLV COの同時測定の最大数(¹² 匹の動物からのn = 379の記録)で実行しました。傾きは1.03(95%CI 0.90-1.15)で、Y切片は695(95%CI -2-1392)、^r2<...

ディスカッション

この論文では、両心室圧 - 体積ループ記録のための再現可能な低侵襲閉鎖胸部アプローチについて説明する。

PVカテーテルをRAからRVに進歩させることは、このプロトコルの最も重要なステップです。RVの複雑な組成とカテーテルの剛性は、容易に変形し幾何学的に困難なRVへの挿入を複雑にする。この難しさは、オープンチェスト計装がしばしば好まれる理由を説明する?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
12L-RS	GE Healthcare Japan	5141337	Ultrasound probe
Adhesive Aperature Drape (OneMed)	evercare	1515-01	75 x 90 cm (hole: 6 x 8 cm)
Alaris GP Guardrails plus	CareFusion	9002TIG01-G	Infusion pump
Alaris Infusion set	BD Plastipak	60593
Alkoholswap	MEDIQ Danmark	3340012	82% ethanol, 0,5% chlorhexidin, skin disinfection
Amplatz Support Wire Guide Extra-Stiff	Cook Medical	THSF-25-260-AES	diameter: 0.025 inches, length: 260 cm
BD Connecta	BD	394601	Luer-Lock
BD Emerald	BD	307736	10 mL syringe
BD Luer-Lock	BD Plastipak	300865	BD = Becton Dickinson, 50 mL syringe
BD Platipak	BD	300613	20 mL syringe
BD Venflon Pro	Becton Dickinson Infusion Therapy	393204	20G
BD Venflon Pro	Becton Dickinson Infusion Therapy	393208	17G
Butomidor Vet	Richter Pharma AG	531943	10 mg/mL
Check-Flo Performer Introducer	Cook Medical	RCFW-16.0P-38-30-RB	16 F sheath, 30 cm long
Cios Connect S/N 20015	Siemens Healthineers		C-arm
D-LCC12A-01	GE Healthcare Finland		Pressure measurement monitor
Durapore	3M	-	Adhesive tape
E-PRESTIN-00	GE Healthcare Finland	6152932	Respirator tubes
Exagon vet	Richter Pharma AG	427931	400 mg/mL
Fast-Cath Hemostasis Introducer 12F	St. Jude Medical	406128	L: 12 cm
Favorita II	Aesculap		Type: GT104
Fentanyl	B. Braun	71036	50 mikrogram/mL
Ketaminol Vet	MSD/Intervet International B.V.	511519	100 mg/mL
LabChart	ADInstruments		Data aquisition software
Lawton 85-0010 ZK1	Lawton		Laryngoscope
Lectospiral	VYGON	1159.90	400 cm (Luer-LOCK)
Lubrithal eye gel	Dechra, Great Britain
MBH qufora	MBH-International A/S	13853401	Urine bag
Natriumklorid	Fresenius Kabi	7340022100528	9 mg/ml Isotonic saline
PICO50 Aterial Blood Sampler	Radiometer	956-552	2 mL
Portex Tracheal Tube	Smiths Medical	100/150/075	"Cuffed Clear Oral/Nasal Murphy Eye"
PowerLab 16/35	ADInstruments	PL3516	Serial number: 3516-1841
Pressure Extension set	CODAN	7,14,020	Tube for anesthetics, 150 cm long, inner diameter 0.9 mm
Propolipid	Fresenius Kabi	21636	Propofol, 10 mg/mL
PTS-X	NuMED Canada Inc.	PTSX253	Inferior vena cava balloon
Radiofocus Introducer II	Radiofocus/Terumo	RS+B80N10MQ	6+7+8F sheaths
Rompun Vet	Beyer	86450917	Xylazin, 20 mg/mL
Rüsch Brilliant AquaFlate Glycerine	Teleflex	178000	Bladder catheter, size 14
S/5 Avance	Datex-Ohmeda	-	Mechanical ventilator
Safersonic Conti Plus & Safergel	SECMA medical innovation	SAF.612.18120.WG.SEC	18 x 120 cm (Safersonic Sterile Transducer Cover with Adhesive Area and Safergel)
Scisense Catheter	Transonic Scisense	FDH-5018B-E245B	Serial number: 50-533. Pressure-volume catheter
Scisense Pressure-Volume Measurement System	Transonic Scisense	ADV500	Model: FY097B. Pressure-volume box
Swan-Ganz CCOmbo	Edwards Lifesciences	744F75	110 cm
TruWave Pressure Monitoring Set	Edwards Lifesciences	T434303A	210 cm
Vivid iq	GE Medical Systems China	Vivid iq
Zoletil 50 Vet (tiletamin 125 mg and zolazepam 125 mg)	Virbac	83046805	Zoletil Mix for pigs: 1 vial of Zoletil 50 Vet (dry matter); add 6.25 mL Xylozin (20 mg/mL), 1.25 mL ketamin (100 mg/mL) and 2.5 mL Butorphanol (10 mg/mL). Dose for pre-anesthesia: 10 mL/10 kg as intramuscular injection