Zebra balığı Larva yılında Dissemine Kandidiyazis non-invaziv Görüntüleme

Özet

Zebra balığı hızla gelişmesi, küçük boyutu ve şeffaflık enfeksiyon doğal immün kontrolü çalışması için çok büyük avantajları vardır ^1-4. Burada fungal patojen kullanarak Zebra balığı larvası bulaştırdıkları teknikleri göstermek Candida albicans Mikroenjeksiyon tarafından, metodoloji son zamanlarda mantar dimorfizm kontrolü fagosit NADPH oksidaz aktivitesi bulaştırmak için kullanılan ⁵.

Özet

Patojen Candida albicans neden olduğu yaygın kandidiyazis yatan bireylerde klinik olarak önemli bir sorundur ve bir% 30-40 ölüm atfedilebilen ⁶ ile ilişkilidir. Sistemik kandidiyazis normalde doğal bağışıklığın tarafından denetlenir ve bu tür fagosit NADPH oksidaz gibi doğuştan gelen bağışıklık hücre bileşenleri genetik bozuklukların bireylerin kandidemi ^7-9 daha duyarlıdırlar edilir. Çok az C. dinamikleri hakkında bilinmektedir in vivo olarak doğuştan gelen bağışıklık hücreleri ile albicans etkileşim. in vitro çalışmalar Kapsamlı kurduk ana C. dışında ^albicans, makrofajlar içinde filizlenir ve hızlı bir şekilde nötrofil ^10-14 tarafından yok edilir. In vitro çalışmalar, faydalı olsa da, sitokin düzeyleri, hücre dışı matriks ekleri ve hücreler arası iletişim ¹⁰ zamana bağlı dinamiklerini içeren in vivo ortamda, karmaşık özetlemek olamaz ^15-18 Zebra balığı larva enfeksiyon çalışma için benzersiz ve çok yönlü bir omurgalı sunar. Gelişim zebrabalıkları larvaların ilk 30 gün için sadece doğuştan gelen bağışıklık sistemi ^{2, 19-21} gibi doğal bağışıklığın çok bağımlı dissemine kandidiyazis gibi hastalıkların çalışma basitleştirilmesi, var. Zebra balığı larva küçük boyutu ve şeffaflığı hem de ev sahibi ve patojen için hücresel düzeyde enfeksiyon dinamiklerinin görüntüleme sağlar. Doğuştan gelen bağışıklık hücreleri floresanlama ile Transgenik larvalarının enfeksiyon ^22-24 dahil belirli hücrelere türlerini tanımlamak için kullanılır. Modifiye anti-sense oligonükleotidler (Morpholinos) gibi fagosit NADPH oksidaz gibi çeşitli bağışıklık bileşenleri yıkmak ve funga yanıt değişiklikleri incelemek için kullanılabilirl enfeksiyonu ^5. Küçük bir düşük omurgalı kullanılarak etik ve pratik bir avantaj ek olarak, resim her iki zebrafish larvaları intravitally ve renk açısından patojen ve ev sahibi arasındaki eğimli mücadele etmek eşsiz olasılığını sunar.

Zebra balığı, insan patojen bakterilerin bir dizi model enfeksiyon için kullanılır olmuştur ve mikobakteriyel enfeksiyonu ^{3, 25} anlayışımızda önemli gelişmeler etkili olmuştur. Bununla birlikte, sadece son larvası ⁵ gibi enfekte etmekte kullanıldığında edilmiş ^{mantarlar, 23, 26} gibi daha büyük patojenler sahiptir ve enfeksiyona yöntem ayrıntılı bir açıklaması görsel olmamıştır güncel. Burada daha önceki protokollere bizim değişiklikler dahil olmak üzere prim ²⁵ zebrabalıkları ve arka beyin ventrikül mikroenjeksiyon için, teknikler sunuyoruz. Mantar enfeksiyonu için larva zebrabalıkları modeli kullanarak Bulgularımız in vitro çalışmalar uzaklaşacak ve konak-patojen Intera incelemek gerekli kılmaktadıryerine Petri tabağı ⁵ basitleştirilmiş sistem daha konağın kompleksi ortamda ction.

Protokol

Tüm zebrabalıkları bakım protokolleri ve deneyler Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (IACUC) protokolü A2009-11-01 altında yapıldı.

1. Morfolino ve Larva Enjeksiyon Yemekleri

Deney süresi: * (10-15 dakika)

Zorluk derecesi: *

1. Yumurta enjeksiyonlar için steril su ve mikrodalga% 2 agaroz solüsyon hazırlanır. Bunun yarısını kadar çözüm ekstra bir derin Petri (Fisher Scientific) içine bazı dökün soğuduğunda. Buz ve plaka düzeyde olduğundan emin olun serin.
2. Çanak soğuduktan sonra,% 2'lik agaroz bir 15 mL üst tabaka dökülür. Bir sprey şişesinden steril su ile plastik kalıp (Adaptif Bilim Araçları) yivli bir yumurta enjeksiyon püskürtün. Sıcak agaroz içine kalıp oluk tarafı dikkatlice aşağı yerleştirin. Agaroz soğuduğunda, aga gelen kalıp ayırmak için (VWR Bilimsel) bir metal düz spatula kullanınyükseldi. Yavaşça agaroz gelen ızgara çıkarın. Wrap embriyo enjeksiyon parafilm yılında yemekleri (VWR Bilimsel) ve mağaza 4 ° C de ters
3. Balık larva enjeksiyonlar için, olarak tarif% 2 agaroz solüsyon hazırlanır. Standart bir boyut Petri (VWR Bilimsel) içine çözüm dökün ve katılaşır kadar kenara koyun. Parafilm ve mağaza içine al larva enjeksiyon yemekleri 4 ° C de ters

2. Mantar Kültür Hazırlık

Deney süresi: ** (30 dakika)

Zorluk derecesi: **

1. 10 g / L maya ekstraktı, 20 g / L pepton, 20 g / L dekstroz ve ve otoklav içine 20 g / L agar: özü-pepton-dekstroz (YPD) agar maya hazırlayın. YPD sıvı 121 10 g / L maya ekstraktı, 20 g / L pepton, 20 g / L dekstroz ve otoklav 20-30 dakika ° C hazırlamak için
2. Balık enfeksiyonları önce iki gün donmuş bir Sürme hazırlamakYPD agara Candida albicans kültürlerin stokları tek koloniler elde etmek.
3. 37 ° C'da gece boyunca inkübe edilir.
4. 16 x 150 mm kültür tüpleri (VWR Bilimsel) içine 5 ml YPD suyu koyun.
5. Balık enfeksiyonları önceki gün bir ahşap takoz (VWR Scientific) ile YPD agar 1 küçük koloni seçin. YPD sıvı içerisinde tekrar askıya koloni etrafında kültür tüp ve girdabında sopa koyun.
6. Bir 14 inç test tüpüne tekerlek (New Brunswick Scientific) ile donatılmış bir TC-7 Doku Kültürü bandajlar 37 ° C'de gece boyunca büyür.
7. Ertesi gün, bir 1.7 ml tüp (Axygen) 1 dakika 14000x g de kültür 1 mL aşağı doğru döndürün. Süpernatantı ve vorteks (VWR Bilimsel) tarafından rezidüel sıvı pelletini.
8. Salin (VWR Bilimsel) Buffered 1 ml 1x Fosfat ekleyin ve daha önce açıklandığı gibi dönerler.
9. PBS yıkama 3 kez tekrarlayın.
10. 1x PBS içinde 1:100 (990 uL 1x P içine yıkanmış C. albicans 10 uL sulandırınızBS).
11. Bir hemositometre (VWR Bilimsel) güvenin.
12. 10 ⁷ hücre / ml ye tamamlanır.

3. Zebra balığı Enfeksiyonlar

Deney süresi: **** (1-3 saat)

Zorluk derecesi: ****

1. Bölüm 5 ve yumurta-su deposu, steril deiyonize su içinde 60 mg / L anında okyanus tuzları (Fisher Scientific) göre embriyolar toplayın.
2. Böyle Olympus SZ61 (Olympus), enfeksiyon günü dechorionate embriyolar gibi bir mikroskop kullanma. Cips bir çanta açarak, ya da hafifçe koryon içine kapalı konumda cımbız karıştırmak ve daha sonra yavaş yavaş onları açık gibi koryon ²⁷ ayrı parçalara çektiğimi Dumont Dumoxel cımbız (VWR Bilimsel) kullanın. Balık koryon dışarı doğru pop gerekir.
3. Kapak çanak ortasına balık taşımak için üzerine olan girdap ekstra derin Petri. Çanağı kapağı balık aktarın. Yumurta-su çıkarın vetaze ortam ile değiştirin. Medya balıkları ekleyin.
4. 28 yaşında bir kuluçka sıcak larva enjeksiyon yemekleri ° C Tricaine metan sülfonat (Batı Kimya A.Ş.) 200 mg / balık anestezi için mL seyreltme hazırlayın.
5. Enfeksiyonu (20-50 balık) için larva istenilen sayısını sayın. Tricaine sülfonat çözüm balık koyun ve hareketli durdurana kadar 1-2 dakika bekleyin.
6. MPPI-3 enjeksiyon ünitesi (Uygulamalı Bilimsel Cihazlar) açın. Basınç anahtarı "darbe" üzerine ve "darbe süresi" backpressure birim için 3 PSI ile 9 ayarlanmış olduğundan emin olun. Enjeksiyon ünitesi üzerindeki basıncı 30 PSI okuyana dek azot tankına valfini açın.
7. 1x10 ⁷ hücre / mL 'lik bir konsantrasyonda santrifüja Candida albicans 5 uL sahip bir çekilmiş mikropipet ²⁸ yerleştirin. Mikropipet tutucu (Uygulamalı Bilimsel Cihazlar) içinde mikropipet yerleştirin. Su ile boş bir ekstra derin Petri doldurun. Ucu kadar mikropipet taşıyın igörünüm içinde sadece çekti pipet ucundan 3mm hakkında iğne takılması için mikroskop ve kullanımı Dumont Dumoxel cımbız (VWR Bilimsel) diseksiyon ile su yüzeyine dokunmadan.
8. Iğne kırpılmış oldu doğrulamak için ayak anahtarı (Uygulamalı Bilimsel Cihazlar) basın. Eğer başarılı olsaydı sıvı dağıtmak görmelisiniz. Sıvı bolus çapı prim ²⁵ zebrafish larva pupil (0.21 mm, 4.9 hacim NL bir küre ye kadar) çapından daha büyük olmalıdır. Sıvı bolus çok büyük veya çok küçük buna göre eğer basıncını ayarlayın.
9. Tricaine metan sülfonat da balık (200 ug / mL) uyuşturmak. Bir kez balık hareketli, girdap balık merkezinde kadar kapağı ile çanak durduruldu. Bir transfer pipeti (Fisher Scientific) kullanılarak 50 balık toplayın. Ucu doğru balık yerleşmek için pipet yan dokunun. Yavaşça mümkün olduğu kadar az bir sıvı olarak kullanarak larva agaroz tabağa balık Pipeti.
10. Düzgün bir cam çubuk (onları ezmek için dikkatli olun!) Ile Hat balık. Çanağı mümkün kapalı olduğu kadar sıvı aspire. Herhangi nemi fitil için bir KimWipe kullanın.
11. Aynı zamanda balık ve iğne iyi bir görünüm elde edene kadar mikroskop altında balık larva agaroz çanak yerleştirin. Balık doğru cam iğne taşıyın. Eğer balık doğru iğne konumlandırmak olarak balık ve iğne hem Yakınlaştır. Dikkatle ilk balık kulak vezikül ^{27, 29} (kulak) içine cam iğne taşıyın. Eğer balığa iğne taşıdığınız bir kez ayak anahtarı (Uygulamalı Bilimsel Cihazlar) bastığınızda, arka beyin ventrikül hafifçe yukarı kaldırın çünkü bileceksiniz.
12. Ayak pedalı (Uygulamalı Bilimsel Aletler) basın ve sıvı balığın arka beyin ventrikül ²⁷ içinde dispers izleyebilirsiniz. Balık ve hareket sonraki balığa iğne geri çekin. Eğer plaka üzerinde balık her enjekte kadar işlemi tekrarlayın. Herhangi bir d çıkarınEAD balık ve (50 balık) numarasının doğru tutmak yerine enjekte edin. 50 balık her bir grup için yeni bir mikroenjeksiyon iğne hazırlanması gerekmektedir enjekte veya C. albicans iğne alt yerleşir ve takunya, ya da enjekte konsantrasyonu atar.
13. Çanak olta balıkçılığı ve 60 mL yumurta-su içeren temiz bir ekstra derin Petri kabına balık üzerine yumurta-su püskürterek yemeğin balık yıkayın. Bu daha uzun 15-20 dakika agaroz üzerinde balık bırakmamaya önemlidir ya da dışarı kurur ve ölür.
14. Bitirene kadar tüm enjeksiyon işlemi tekrarlayın. PBS ve patojen olmayan enjekte kontrolleri ihmal etmeyin.
15. Bittiğinde, 28 balık tutmak ° C
16. Azot tankı vanasını kapatın. Tank hattı basıncı rahatlatmak için "sürekli" için "darbe" den enjeksiyon ünitesi anahtarı taşımak, basınç bu noktada sıfıra düşmesi gerekir. "Darbe" geri enjeksiyon ünitesi açın. Enjeksiyon ünitesi kapatın ve çalışma alanı temizlemek.

4. Görüntüleme için Balık hazırlanması

Deney süresi: ** (30 dakika)

Zorluk derecesi: **

1. (200 ug / mL) daha önce olduğu gibi tricaine metan sülfonat çözeltisi hazırlayın. Enfekte balıkların dışarı alın ve tricaine içine aktarabilirsiniz.
2. Yumurta-su 47.9 mL% 0.4 düşük erime agaroz (VWR bilimsel) hazırlayın. Microwaving tarafından çözüm ısıtın. 37 ° C ve serin bir karışımına ilave tricaine metan sülfonat (200 ug / mL)
3. Bir kez balık tricaine metan sülfonat,% 0.4 düşük erime agaroz (VWR Bilimsel) içeren Petri (VWR bilimsel) pipetlenir bireysel balık immobilize edilir.
4. Sonra, görüntüleme için bir cam alt çanak (MatTek Corp Corporation) bireysel kuyulara düşük erime agaroz gelen balık taşıyın. Balık tabağın tabanına düz yatıyor yüzden mümkün olduğunca az düşük erime agaroz olarak kullanın. Sadece doldurmak için yeterli tricaine-agaroz kullanımıCam alt çanağı ner çevreler.

5.. Protokoller Vallahi İlgili Değişiklikler

Mikroenjeksiyon için mikropipetler

Deney süresi: * (10-15 dakika)

Zorluk derecesi: *

1. Yuan ve ark göre Flaming Brown Mikropipet Çektirme Model P-97 (Sutter Araçlar). ³⁰ ile içi boş cam çubuklar BF120-69-10 (Sutter Instruments) çekin. Aşağıdaki koşullar Isı = 470, Hız = 120, Zaman = 200 ile program # 7 seçin. Çıkan iğne kez yaklaşık 10 mikron çapındaki ucu yukarıda 3 mm'den az kırpılır 8 konik uca mm vardır.
2. Parantez içine bir cam mikropipet yükleyin. "Çekin." I seçin Isıtma filament programı parametreleri ve cam çubuk iki çekilir mikropipetler içine ayıracaktır göre iğne ısıtır. Bir pipet saklama kutusu (Sutt Mağaza mikropipetlerer araçlar).

Embriyo Koleksiyonu, morfolino Enjeksiyon ve Bakım

Deney süresi: *** (1-2 saat)

Zorluk derecesi: ***

3. Rosen ve diğ. ³¹ yöntemlere göre embriyosu Collect. Yumurtlama tankı (Sucul Habitatlar) yumurta toplamak için bir plastik elek (Knutsford Gereçleri) kullanın. Ekstra derin petri üzerinde baş aşağı tutun elek ve yumurta toplamak için tankı su ile durulayın.
4. Morfolino hazırlanması için, morfolino 300 nanomol (GeneTools, LLC) 300 uL steril su ekleyin. Bu 1.0 mM çalışan bir stok verir.
5. Bir Nanodrop (Thermo Scientific) kullanılarak morfolino konsantrasyonu doğrulayın. "Nükleik asit ve numune tipi değiştirme" 265 seçmek üzere diğer "ve dalgaboyu. Absorptivit bölünmesiyle 1000 tarafından morfolino moleküler ağırlığı çarparak sabiti Girişy katsayısı morfolino oligo özellik sayfasında listelenmiştir.
6. 2 ul 0.1 N HCI ile boş nanodrop. 0.1 N HCI (20x seyreltme) 95 uL içine morfolino çözeltinin 5 uL seyreltilir. Nanodrop kaide ve tıklama önlem seyreltme 2 uL yerleştirin. Seyreltme faktörü (20) tarafından konsantrasyonu çarpma. Bu, morfolino çalışan bir konsantrasyonda verir. Milimolar konsantrasyonu hesaplamak için morfolino moleküler ağırlığı ile elde edilen konsantrasyon böler.
7. Danieau tampon içinde morfolino (58 mM NaCI, 0.7 mM KCI, 0.4 mM MgSO _4, 0,6 mM Ca (NO _{3) 2,} 5.0 mM HEPES, pH 7.6) ve% 0.01 fenol kırmızısı (VWR Scientific) çalışan bir stok hazırlayın.
8. Morfolino püskürtme çalışması için Rosen ve diğ. ³¹ ve Yuan ve ark. ³⁰ göre protokolü takip. 15 dakika 28 ° C'de yumurta-su ve sıcak ile morfolino enjeksiyon yemekleri durulayın. Enjeksiyon yemekleri ve line-up tek-c su kaldırmaell aşamada bir transfer pipetle enjeksiyon çanak (Bölüm 1 hazırlanan) ve oyuklara embriyoların. Her plaka yaklaşık 250 yumurta yapacak. Morfolino ile 1-2 hücreli embriyo aşamasında enjekte edilir. Yumurta 15 dakika için ²⁷ aşamasında bir hücre içinde kalır.
9. Ekstra derin Petri 60 ml yumurta-su enjekte bitmiş yumurta suyu ile yumurta (60 mg / L Instant Ocean tuzları ile steril deiyonize su) ve yeri yıkayın. Morfolino enjeksiyon yemekler yeniden kullanılabilir. Bittiğinde yumurta su ile durulayın ve 4 ° C de ters mağazası
10. Depolama için embriyoların çanak için 60 ml yumurta-su ekleyin. 60 ml yumurta su ile ayrı ekstra derin Petri içine bir transfer pipetle 110 embriyolar sayıyoruz. 28 mikrobiyal büyüme ve inkübe embriyo önlemek için mavi 0.00003% metilen ekle ° C
11. Embriyo gelişimi hızlandırmak için embriyolar kafa geliştirmesine izin Kimmel ve ark. ^27'ye göre 24 saat ve sahne için 33 ° C'de embriyo yemekleri tutmak75 gövde açısı ° (Prim 25 aşama ^27).
12. Larva enfeksiyonu iş için C ile enjekte sonra 28 ° C'de embriyo tutma albicans.
13. Her gün 60 ml taze yumurta suyu ile embriyo yemekleri değiştirin.

Görüntüleme

Deney süresi: ***** (1-5 saat)

Zorluk derecesi: ***

14. Daha önce anlatıldığı gibi cam alt görüntüleme yemekleri (MatTek Corp Corporation) olarak tricaine düşük erime agaroz (bölüm 4.2 'ye göre) balık hazırlayın. Olympus IX-81 (Olympus) inverted mikroskop sahnede tabak yerleştirin. Diferansiyel girişim kontrast (DIC) ışık altında 4x büyütme altında odak haline balık getir. Görüntüler 4x, 20x yakalandı ve DIC, TRITC (tetrametil rodamin izotiyosiyanat) ve FITC (fluorescein izotiyosiyanat) filtre ayarları 40x büyütme. Edilebilir
15. Bir FV-1 ile bir Olympus IX-81 inverted mikroskop kullanın000 lazer Ariga ark göre konfokal tarama sistemi. ^32. 1-1.5 mikron dilim enfeksiyon saatte Z-yığınlarının ayarlayarak 40x büyütmede zamanlı kurslar düzenlemek.
16. 2 saat veya daha uzun süre ders görüntüleme için, görüntüleme çanak balık her 2-3 saatte üst üste düşük erime agaroz bir katman yer. Bu kuruma ve görüntülü edilirken balık ezme gelen agaroz önler. Balık küçük bir sayı ile uzun süre dersler için, enfeksiyonlar sırasında 28 ° C korumak için (Bioptechs A.Ş.) ateşli bir sahne kullanın.

6. Temsilcisi Sonuçlar

Başarılı bir arka beyin ventrikül C. bir örneği 5 saat sonra enfeksiyon (hpi) ve 24 hpi bir zebrafish larva in albicans enfeksiyonu (Şekil 1) 'de gösterilmiştir. Yuttu C. ile makrofaj benzeri hücreler albicans 5 hpi azından arka beyin ventrikül görülür. 24 tarafından hpi, C. albicans makrofaj-benzeri hücre içindekidissemine kandidiyazis göstergesidir dorsal kuyruk dokusunda s. Bu enfeksiyon sonucu 10-15 maya-form C. doğru bir enjeksiyon üzerine oldukça bağımlıdır ardbeyin ventriküle albicans. Enfekte balıkların hemen post-enjeksiyon Eleme bunu sağlayabilir.

Şekil 1 Transgenik fli1:. EGFP ^22, CaF2-yCherry Candida albicans ve konfokal mikroskopi ile intravitally yansıması ile enfekte ³³ larva. (AC) 5 saat sonrası enfeksiyon enfeksiyon sitesi (arka beyin ventrikül) Ölçek çubuğu = 100 um az makrofaj benzeri hücreler EGFP-ifade ile (A) Enfekte larvanın. Aynı balık (B ve C) Yüksek büyütmeli görüntü, C. gösteren fagositler içinde albicans. Ölçek çubuğu = B için 100 mikron ve C. (DF) CaF2-yCherry C. ile dissemine kandidiyazis ile 24 saat sonrası enfeksiyon (D) Enfekte larvalar için 10 mikron EGFP mac içinde albicansdorsal kuyruk dokusunda rophage benzeri hücreler. Ölçek çubuğu = 100 mikron. Aynı balık (E ve F) Yüksek büyütmeli görüntü, C. gösteren kuyruk dokusunda albicans. Ölçek çubuğu = 100 mikron.

Tartışmalar

Burada sunulan zebrabalıkları mikroenjeksiyon yöntemi Gutzman ark farklıdır. ³⁴ burada biz 36-48 hpf larvaların arka beyin ventrikül içine otik vezikül ile enjeksiyon göstermektedir. Bizim tarif ettiğimiz yöntem düşük doku hasarı ile arka beyin ventrikül içine 10-15 maya tutarlı enjeksiyon için izin verir. Bu protokol 24 hpi (Şekil 1) ve önemli öldürücülüğü / morbidite ⁵ sonuçları ile vücuda yayılır bir başlangıçta lokal enfeksiyon üre...

Malzemeler

Name	Company	Catalog Number	Comments
Reaktif Adı	Şirket	Katalog numarası	Yorumlar (isteğe bağlı)
Yumurtlama tankları	Sucul habitatlar	2L
1,7 mL tüpler	Axygen	MCT-175-C
Instant Ocean	Fisher Scientific	S17957C
Ekstra derin Petri	Fisher Scientific	08-757-11Z
Standart Petri	VWR Bilimsel	25384-302
Transferi pipetler	Fisher Scientific	13-711-7M
Maya Ekstraktı	VWR scientific	90000-726
Pepton	VWR Bilimsel	90000-264
Dekstroz	Fisher Scientific	D16-1
Agar	VWR Bilimsel	90000-760
Tek hemositometre	VWR Bilimsel	82030-468
Fosfat Tamponlu Salin	VWR Bilimsel	12001-986
Dumont Dumoxel Cımbızlar	VWR Bilimsel	100501-806
Ahşap Dübeller	VWR Bilimsel	10805-018
KimWipes	VWR Bilimsel	300053-964
Melt DüşükAgaroz	VWR Bilimsel	12001-722
Enjeksiyon yemekleri için Agaroz	VWR Bilimsel	12002-102
Brown Mikropipet Çektirme Flaming	Sutter Aletleri	P-97
Çukur cam çubuklar	Sutter Aletleri	BF120-69-10	Bunsen beki üzerinde ısıtılarak cam çubuklar için düz cam
Pipet Saklama Kutusu	Sutter Aletleri	BX10
MPPI-3 Enjeksiyon sistemi	Uygulamalı Bilimsel Enstrümantasyon	MPPI-3
Geri Basınç Ünitesi	Uygulamalı Bilimsel Enstrümantasyon	BPU
Mikropipet Tutucu kiti	Staed Bilimsel Enstrümantasyon	MPIP
Ayak Anahtarı	Uygulamalı Bilimsel Enstrümantasyon	FSW
Mikromanipülatör	Uygulamalı Bilimsel Enstrümantasyon	MM33
Manyetik Base	Uygulamalı Bilimsel Enstrümantasyon	Manyetik Base
Tricaine metan sülfonat	Batı Kimya A.Ş.	MS-222
Kapsam Kesme	Olympus	SZ61 üst SZX-ILLB2-100 baz
Konfokal Mikroskop	Olympus	FV-1000 lazer tarama konfokal sistemi ile IX-81
14 inç test tüpü tekerleği ile TC-7 Doku Kültürü Merdane davul	New Brunswick Scientific	TC-7
Görüntüleme Yemekleri	MatTek Corp Şirketi	P24G-1.0-10-F
Iğneleri yükleme için pipet uçları	Eppendorf	930001007
Plaka boşaltma ızgaralar	Adaptif Bilim Araçları	TU-1
Isıtmalı Sahne	Bioptechs A.Ş.	Delta T-5
Düz Spatula	VWR Bilimsel	82027-486
Plastik Elekler	Knutsford Online Gereçleri	12 cm
Parafilm	VWR Bilimsel	52858-000
Vortex Genie	VWR Bilimsel	14216-184
16 x 150 mm kültür tüplerinin	VWR Bilimsel	60825-435
Nanodrop	Thermo Scientific	ND 2000
Fenol Red	VWR Bilimsel	97062-478
HCl	VWR Bilimsel	87003-216
NaCl	VWR Bilimsel	BDH4534-500GP
KCl	VWR Bilimsel	BDH4532-500GP
MgSO 4	VWR Bilimsel	BDH0246-500GP
Ca (NO 3) 2	VWR Bilimsel	BDH0226-500GP
HEPES	VWR Bilimsel	BDH4520-500GP
Morpholinos	GeneTools, LLC