Mikro Silikon konsolun Kullanımı Hücresel kasılma fonksiyonunu değerlendirmek için<em&gt; İn Vitro</em

Özet

Bu protokol, in vitro kas hücrelerinin kasılma ölçmek için esnek kültür yüzeyleri olarak mikro silikon konsolun kullanımını tarif etmektedir. Hücresel kasılması, ölçülen kaydedilen ve in vitro kontraktil fonksiyon ölçmek için non-invazif ve ölçeklenebilir sisteminin temin edilmesiyle, kuvvet çıktılan dönüştürülebilir dirsekli bükme neden olur.

Özet

Daha fazla ön ve biyolojik olarak uygun in vitro tahlillerin gelişimi tohumlanmış hücrelerin fonksiyonel değerlendirilmesini sağlamak çok yönlü hücre kültür sistemlerinin ilerlemesi dayanmaktadır. Bu amaçla, mikro konsol bükme teknolojisi daralma kaynaklı alt tabakanın değerlendirilmesi yoluyla, iskelet, kalp ve düz kas hücreleri dahil hücre tipleri, bir dizi kasılma işlevselliğini ölçmek için hangi ile bir platform sunuyor. Birden fazla mesaj göndermiş konsol dizilerin uygulanması ilaç yeterlilik ve toksisitesini, hastalığın ilerlemesini fenotip ve yanı sıra, kas ve diğer hücre-hücre etkileşimleri değerlendirmek için yüksek verimli protokollere orta geliştirmek için bir araç sağlar. Bu yazıda, bu amaç için güvenilir bir konsol dizileri imal edilmesi için ayrıntıları ve bu yüzeyler üzerinde başarıyla kültürü hücreleri için gerekli olan bir yöntem sağlar. Ayrıca açıklama fonksiyonel anal gerçekleştirmek için gerekli adımlar sağlanırkontraktil hücre tipleri Ysis yeni lazer ve foto-dedektör sistemi kullanarak bu tür diziler üzerinde muhafaza. Vurgular hassasiyet ve bu sistem ile mümkün kontraktil fonksiyonun tekrar analiz tekrarlanabilir niteliği verilen temsili veriler, hem de çalışma geniş olan bu tür önlemlerin hale gelebilir. Bu sistemin başarılı yaygınlaşmasının araçlarla araştırmacılar doku performansı, hastalık gelişimi ve yeni terapötik tedaviye yanıtın daha doğru tahminlere yol açan, in vitro hızlı, düşük maliyetli fonksiyonel çalışmalar yapmak sağlayabilir.

Giriş

The in vitro culture of muscle cells from both human and rodent sources has been possible for decades^1,2. However, while standard coverslip preparations are useful for biochemical assessment, they do not facilitate analysis of the cell’s primary functional output (contractility), and therefore are of somewhat limited value as a means to assess cellular maturation and performance. In order to maximize the amount of data obtainable from such in vitro cultures, it is necessary to advance the development of systems capable of housing such cells in configurations that permit the real-time assessment of their functional performance. The establishment of a multitude of three dimensional muscle models has made some progress toward fulfilling this need, and such systems have been used in a number of publications as a means to assess the contractile capacity of cultured muscle cells in vitro^3-5. While such systems are invaluable for tissue modeling and reconstruction studies, they are limited in their applicability for studies of single cell responses. In such cases where single fiber studies are necessary, complex and labor intensive ex vivo methodologies remain the only option^6-10. Furthermore, current movement toward the development of complex, multi-organ platforms for drug development and screening protocols requires the establishment of systems which are non-invasive, easily scalable and which integrate readily with supporting cells and tissue models¹¹.

Microscale cantilevers offer a simple method for assessing the functional contractile capacity of single cells/small populations of cells^12,13. The technique is based on modified Atomic Force Microscopy (AFM) technology¹⁴, and uses a laser and photo-detector system to measure microscale cantilever deflection in response to cultured myotube contractile activity. Modified Stoney’s equations are then used to calculate stress in the myotube, and the force exerted by the myotube in order to generate the observed substrate deflection¹⁵. A scanning program has been written which enables simultaneous assessment of multiplexed cantilever arrays, offering potential moderate to high through-put applications for drug toxicity/efficacy studies^15,16. Such technology may prove invaluable in the development of functional, pre-clinical assays for predicting drug efficacy in vivo. Furthermore, fabrication of cantilever chips in silicon does not impede post analysis processing of cells for standard biomolecular assays such as immunostaining, western blotting and PCR.

This manuscript provides detailed instructions on the fabrication and preparation of microscale silicon cantilevers, the hardware and software set-up, and the operating guidelines for assessing the functionality of contractile cells cultured on these chips. Standard cell culture techniques can be implemented for plating and maintenance of cells on these surfaces, hence any contractile cell type for which reliable culture parameters exist should be able to integrate with this device with ease. The relatively simple 2D culture parameters utilized in this system makes integration of other cell models or addition of cell types that can interact with muscle (such as innervating neurons) straight-forward, greatly increasing the applicability of this model in the development of more complex functional in vitro assays and multi-organ models of mammalian systems.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protokol

1. Konsol Chip Fabrikasyon

Açıklanan imalat adımlarının gösterilen ayrıntıları Şekil 1 'de verilmiştir.

1. Bir fırın içinde silikon üzerinde yalıtkan (SOI) gofret yerleştirin ve bunları kurutmak için 20 dakika boyunca 125 ° C'de pişirilir.
2. Bir plazma kullanılarak susuz SOI gofretin sap tabakası üzerine silikon oksit, 1.5 mikron kalınlığında bir tabaka yatırın kimyasal buhar çöktürme (PECVD) aracı artırıldı.
3. Cihaz katman yukarı bakacak şekilde spin lak mandrenin gofret yerleştirin. , Gofret merkezli olduğundan emin olun 1,000 rpm / saniye bir hızlanma 60 saniye boyunca 3000 rpm'de gofret merkezinde ve spin P20 astar 2 ml dağıtmak. P20 astar cihaz fotorezist tabakaya yapışmasını teşvik etmektedir.
4. Gofret spin lak mandrenin görünse de, o ile 1000 rpm / saniye oranında hızı 60 saniye boyunca 3000 rpm'de S1818 gofretin ortasına ışığa ve spin 2 ml dağıtmakFotorezist 1.5 mikron kalınlığında bir tabaka btain.
5. Sıcak bir plaka üzerinde gofret yerleştirin ve 1 dakika boyunca 115 ° C'de bir fırında yumuşak gerçekleştirin.
6. Cihaz üzerinde bir tabaka ışığa için konsol maskeden desen transfer etmek için bir iletişim fotolitografi maske hizalama kullanılarak sert kontakt UV ışınlarına maruz kalma gerçekleştirin. 125 mj / S1818 fotodirenç için cm ² poz enerji değerine göre pozlama süresini hesaplayın.
7. Hafifçe ileri ve geri gofretin çalkalayarak, 1 dakika boyunca 726 MIF fotorezist geliştirici gofret daldırarak fotorezist geliştirir.
8. De-iyonize (DI) su ile durulayın gofret ve tercihen bir sıkma durulama kurutma makinesi (SRD) aracını kullanarak, kurutun.
9. Aseton batırılmış bir pamuk bez kullanılarak (kenardan 5 mm kadar) gofretin kenarından fotorezist çıkarın.
10. Fotorezist tarafı yukarı bakacak şekilde, bir Derin Reaktif İyon Asitli (DRIE) aracında gofret yükleyin ve devi ile desenli silikon tabakasını etch için bir reçete çalıştırınce katmanı. Bir aşındırma durak olarak gömülü oksit katmanı işlevleri, yani tam bir iz sağlamak için gerekli olması beklenmektedir% 100'den daha fazla döngü için% 50 ile bir iz gerçekleştirin.
11. Fotorezist şerit 20 dakika boyunca sıcak bir fotorezist Banyo çözeltisi içindeki gofret yerleştirin. DI su ile gofret durulayın hızlı-dökümü-rinser (QDR) gofret aktarın. Fotorezist şerit ardından, durulama ve gofretin kuruması için SRD aracında gofret yükleyin. Beklendiği gibi konsol desen görünür sağlamak için bir mikroskop altında gofret kontrol edin.
12. Bir PECVD alet gofretin cihaz katmanda un katkılı bir silikon oksit 1 mikron kalınlığında bir tabaka bırakın. Daha fazla işlem kademesi sırasında konsollar için koruyucu tabaka olarak bu oksit tabakası çalışır.
13. Gofretin arka tarafının başlatmak üzere yukarı bakacak şekilde sap tabakası ile dönel kaplayıcı aynası üzerine, gofret yerleştirin. Olun gofret 3000 rpm'de P20 gofretin ortasına astar ve spin 2 ml dağıtılması, ortalanır1000 rpm / saniye oranında hızı 60 sn.
14. Gofret spin lak mandrenin görünse de, bir 6.5 mikron kalınlığında bir tabaka elde edilmesi için 1000 rpm / saniye oranında hızı 45 saniye boyunca 2000 rpm'de gofretin merkezi ve spin üzerine SPR220-4.5 fotodirenç 2 ml dağıtmak Fotorezist.
15. 2 dakika boyunca 115 ° C'de bir fırında yumuşak gerçekleştirmek için bir yakınlık sıcak bir plaka üzerinde gofret yerleştirin.
16. Ön / arka uyum yeteneğine sahip bir fotolitografya temas hizalama kullanarak, ön yan konsol desen arka pencere maske hizalayın ve kolu katmanda fotodirenç için arka pencere maskeden desen transfer etmek için bir sert kontakt UV maruziyetini gerçekleştirin. 480 mj / SPR220-4.5 fotodirenç için cm ² poz enerji değerine göre hesaplanan bir pozlama süresi kullanın.
17. UV'ye maruz kalmadan sonra, çok ince bisküviler bir sonraki işleme aşamasından önce 30 dakika süre ile karanlık bir yerde kalmasını sağlar.
18. Gofretin daldırarak fotorezist geliştirilmesi2 dakika süre ile, 726 MIF fotorezist geliştirici hafifçe ileri ve geri gofreti çalkalandı.
19. De-iyonize (DI) su ile durulayın gofret ve tercihen bir sıkma durulama kurutma makinesi (SRD) aracını kullanarak, kurutun.
20. 12 saat boyunca 90 ° C'de bir fırında gofret yerleştirin.
21. Florlu gazlar ile RIE sistemi ve oksit gravür için bir tarifi kullanarak gofret ters silikon oksit tabakası etch. Gofretin ters desenli oksit daha sonraki işlemler için bir aşındırma maske olarak görev yapar. Maruz kalan penceresinde silikon oksit tamamen kazınmış olduğundan emin olmak için bir mikroskop altında gofret kontrol edin.
22. Aseton batırılmış bir bez kullanılarak temiz oda (kenardan 5 mm kadar) gofretin kenarında fotorezist çıkarın.
23. Bir DRIE aracında gofret yüklemek ve bir aşındırma durak olarak gömülü oksit tabakası işleyişi ile 500 um'lik bir derinliğe desenli tabaka sap oyulması için bir tarifi çalıştırın. Aşırı ısınmasını önlemek için birden çok çalışır içine bu etch bölünmüşsilikon tutarsız aşındırma neden gofret. Bu aşındırma adımı tamamen dirseklerin altında silikon kaldırır.
24. Dirseklerin altında gömülü oksit tabakası ve dirseklerin üstüne koruyucu oksit katman şerit,% 25 sulandırılmış HF pürüzlendirici kullanan bir ıslak aşındırma adımı gerçekleştirir.
    Not: Bu adım silikon konsolun alt yüzeyi serbest bırakır ve aynı zamanda lazer ile dirsekli araştırmak için bir erişim sağlamak için altına bir pencere açar.
25. DI su banyoları dizi ve azot ile dikkatlice kuru kullanarak gofret durulayın. Konsollar kendi üslerinde yalnızca desteklenen yana, doğrudan dirseklerin üzerine DI su veya inert gaz güçlü spreyler kullanmayın.
26. Sap tabakası aşındırma adımı esnasında üretilen klevajın çizgileri boyunca gofret bireysel fiş bölmektedir.

2. Hücre Kültürü

1. Daha önce yayınlanmış yöntemlerden ^17'ye göre 13F lamelleri hazırlayın.
   NOT: Eğer 13F koyrslips mevcut değildir, 95 ° C'nin üzerindeki bir temas açısına sahip herhangi bir hidrofobik yüzey kullanılabilir.
2. Konsol cips ve% 70 etanol çözeltisi içinde 13F lamelleri sterilize ve bir akış kaputu kurumaya bırakın.
3. Bir standart 12 plaka içindeki 13F lamelleri üstüne bireysel konsol cips yerleştirin.
4. Kaplayın hücre tipi için optimize biyopolimer veya yüzey modifikasyonu ile dirsekleri standart hücre kültür protokollere göre kullanılır.
5. Istenen konsantrasyona kendi özel büyüme ortamında hücrelerin yeniden askıya.
   NOT: Bu protokol konsol penceresinden düşen ve istenilen konsol yüzeyine yapışan olmayan hücrelerin önemli bir sayıda neden olur. Hücre preparasyonlar, bu sebepten, standart preparatları için bir örtücü cam, daha konsantre 3-4x yapılmalıdır. Örneğin, sıçan iskelet kas uydu hücreleri, tipik olarak tohumlama 500-700 hücre / mm kare ^15,16 ilk önce tohum ekme yoğunluğu kullanılarak yürütülürVe / meydan aa 2000 hücre olacak şekilde konsol alt tabakalar kullanılmaktadır. Optimizasyon deneyler, uygun bir tohum yoğunluğu belirlemek için yeni bir hücre kaynakları ile yapılmalıdır.
6. Orta kabarcık tamamen konsol pencere kapsayan sağlanması konsol çip yüzeyi üzerine, hücre süspansiyonu 200 ul pipetle. Orta pencereden fitiller ve dirseklerin üstüne bir statik kabarcık oluşturmak vermezse 13F lamel değiştirmek ve kaplama reattempt.
7. Bir kuluçka yongası içeren plaka aktarın ve hücreler, en az 1 saat (tercihen 2-3 saat) boyunca yapışmaya izin verir.
8. Bu kaplama tamamlandıktan sonra, büyüme ortamı, 1 ml kültür, bir 13F lamel olmaksızın temiz bir çukuruna çipi transferi, ve en fazla steril forseps kullanır.
9. Inkübatör plaka dönün.
10. Lamelleri in vitro bakım için standart bir protokole uygun hücreleri korumak. Iskelet kası hücreleri için,Hücreler birleştiklerinde, gerekli olacaktır hale kez ortam bileşiminin bir anahtar miyotüp oluşumunu tetiklemek için karıştırılabilir.

Konsol Saptırma Analiz için Donanım ve Yazılım 3.Kurulum

1. Dik elektrofizyoloji mikroskop aşamasında içine ısıtılmış kültür çanak yerleştirin.
2. Isıtılmış mikroskop kademesine ile henüz (+ 10 mM HEPES) içinde süspanse edilmektedir besleme ortamının 3 ml ilave edilir.
3. 15 mm'lik bir ayırma mesafesi ile ısıtılmış kültür çanak iç paslanmaz çelik elektrotlar monte ve bir darbe üreteci arasında değişen yoğunlukta, frekans ve dalga biçimi alan uyarım darbelerini üretebilen bağlamak, sistem alan uyarımı üretmek için izin Uygun zaman hücrelerin.
4. , Mikroskop tablonun alt tarafına, X ve Y platformlarının üzerine monte edilen bir helyum-neon lazer cıvata ve lazer ışını, bir 30 ° 'lik açı relativ de ısıtılmış kültür çanak tabanı boyunca yönlendirilecek şekilde ayarlayınkonsolun düzlemine e.
5. , Mikroskop sahne alt etmek, XY öteleme aşamalarında üzerine monte edilmiş bir kadran fotoğraf-dedektör modülü cıvata ve 4 kadranın merkezinde yansıyan lazer ışını topraklar. Şekil 2, böylece konumunu ayarlamak kurmak donanımın bir bakış sağlar Açıklanan protokol uygulanması için gerekli.
6. Cantilevers üzerinden tarama doğrusal aktüatörler kontrol etmek için bir yazılım program yazın. Şekil 3'te sunulan akış şemasına değini ile yazılım programı yazmak. Bu sistem ile kullanılmak üzere programlanmış bir grafik arayüz Şekil 4'te sunulmuştur.

4. Kaydı Konsol Sapma Veri

1. Konsol analiz donanımı ve ilgili yazılımlar açın.
2. Ortama ısıtılmış sahne termistoru yerleştirin ve 37 ° C okumak için sabırsızlanıyorum.
3. Cantileve ile aşamaya konsol çipi takınSahnenin sağ tarafında yönelmiştir rs.
4. Mikroskop ışık kaynağı açın.
5. Konsol varsayarsak sahnenin sağında, konsol 1 yöneliktir: görünüm içine konsolun kenarlarını getirmek ve konsol 1. NOT ucunda lazer ışını konumlandırmak için lazer / fotoğraf dedektör kontrol yazılımı kullanmak için Odak mikroskop Dizinin sol üst konumlandırılmış biridir ve sayılar sol alt aşağı 16 çalıştırın. Konsol 17 sağ üst pozisyonda ve sağ alt (Şekil 5A) içinde 32 hareket eder.
6. Basın kayıt yazılımı üzerinde "oynamak".
7. Sinyal foto-dedektörü kontrol kademeli motora ayarlayarak, x ve y çerçeveleri hem de "0" okur, böylece foto-dedektörü yerleştirin.
8. Lazer / fotoğraf-detektör kontrol yazılımı Set konsol 1 pozisyon (Şekil 4).
9. . Adımı 4.7 tekrarlayın, konsolun 16 ucuna lazer taşıyın ve cantilev seter lazer / fotoğraf-detektör kontrol yazılımı 16 pozisyon.
10. Lazer / fotoğraf-detektör kontrol yazılımı adımı 4.7. Ve set konsol 32 pozisyonunu tekrar, konsolun 32 ucuna lazer taşıyın.
11. Lazer / fotoğraf-detektör kontrol yazılımı adımı 4.7. Ve set konsol 17 pozisyonunu tekrar, konsolun 17 ucuna lazer taşıyın.
12. Mikroskop ışık kaynağı ve laboratuarda havai ışığı kapatın.
13. Kayıt yazılımı basın "rekor".
14. 1 Hz frekansta 40 msn'de, 5 V bakliyat için nabız jeneratörü donanımı ayarlayın ve makineyi açın.
    NOT: İsteğe bağlı olarak, bu noktada belirli bir hücre kaynakları için optimize edilmiş stimülasyon protokolleri istihdam, belirtilen ayarları insan ve kemirgen hücre kaynaklarının ^12,13,15,16 kullanılarak toplanan verilere dayalı kurallar vardır.
15. Lazer / fotoğraf dedektör kontrol yazılımı kullanarak, her on 5 saniye durdurma, 32 konsol dizi boyunca tarama donanımı ayarlayınör.
16. 32 konsolun Tarama işlemi tamamlandığında, daha sonra kayıt yazılımı ve veri dosyasını getirmek, uyarıcı kapatın.
17. Kontraktil aktivite kanıt her bir dirsek gelen kaydedilen iz inceleyin. Olumlu tepkiler her konsolun bir kenara not edin. Saptırma taban üzerinde en az 0,1 V ise, bir daralma, bir tepe noktası olarak tanımlanır.
18. Lazer / fotoğraf dedektör kontrol yazılımı üzerinde tarama protokolü herhangi bir sigara duyarlı konsol çıkarın.
19. Aktif konsollar daha sonra hücrenin spontan kontraktil aktivitenin bir okuma almak için uyarı olmaksızın rescanned edilebilir.
20. Kültürlenen hücrelerin fonksiyonel çıktıya üzerindeki etkisini gözlemlemek için ortama terapötik bir bileşik ilave edildikten sonra, ya da geniş alan elektriksel uyarımı olmaksızın taramaları çalıştırın.
21. Elektriksel Uzun süre ve Contr tarama seviyeleri için hücreleri uyararak yorgunluk değerlendirmeler yürütmek actility belirli bir eşiğin altına düşmesi pik gücü için ne kadar sürdüğünü ölçmek için.
22. Motor nöronlar, kas ile ko-kültür içinde muhafaza edilir deneylerde, nöromüsküler nöronal bir uyarıcı motonöron-miyotüp konsol ko-kültürler işlemi ile bağlantı oluşumu (glutamat gibi) veya sinaptik inhibitör ölçün (örneğin, D-tubokurarin) ve tarama spontan aktivitede artış ve azalışlar sırasıyla ^16.
23. Planlanan deneyler ihtiyaçlarına göre belirlenecektir gibi özel taramalar yapar.

Konsol Sapma Verilerin 5. Analiz

1. Kullanım Stoney denklemleri ¹⁵ hücre tabakası veya miyotüp (Pascal), ve (nano-Newton) hücresel kasılma gücünün doğrudan ölçümü stres bir okuma içine (Volt) ham konsol sapma verilerini dönüştürmek için (aşağıda ayrıntılı) güncellendi:
   reklam / 51866 / 51866eq1.jpg "/> Denklem 1
   Denklem 2
2. Δ = konsol ucu sapma ve stres miyotüp tarafından üretilen yerlerde, σ _c üniforma kalın filmi konsol, C _dedektörün tam genişliğini varsayarak miyotüp tarafından üretilen = stres, = fotoğrafın üstüne lazer konumuna gerilimi ilişkin sistemine özgü katsayısı -detector, θ = konsolun düzlemine lazer ve detektör açısının E _Si silikon elastik modüle = t _Si konsolun kalınlığı = t = _f miyotüp kalınlığı v = _Si oranı arasında Zehir silikon, L = konsol uzunluğu, dedektör konsol ucundan lazer P = yolu uzunluğu, w _{Si konsolun genişliği =. Bu denklemlerde kullanılan terimleri açıklayan şematik Şekil 6'da verilmiştir.}
3. Düzgün bir film miyotüp olduğunu varsayarak, miyotüp yapan kuvvet Stoney uygulama için kullanılan stresten kuvvet hesaplama ve varsayılan hücre bir kesit alana eşitleyerek, 3. Denklem yol filmde kuvvete eşittir denklem.
   Denklem 3
4. Fonksiyonel Veri toplama, imünositokimyasal analizler için konsol fiş düzeltmek veya standart teknikler kullanılarak protein veya DNA analizi için hücreler kullanır.
5. İsteğe bağlı olarak, daha sonraki bir zaman noktasında, işlevsel performansı yeniden değerlendirme amacıyla kuluçka yerine moleküler analiz için hazırlanırken hücreleri döner.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Sonuçlar

Dirseklerin kontraktil hücrelerinin başarılı kültürü, standart hücre kültürü teknikleri (Şekil 5) kullanılarak, nispeten basit bir işlemdir. Yakalanma hücreleri destekleyici dirseklerin yüzdesi, hücre tipine bağlı olarak değişir incelenmiş ve belirli bir kültür tekniği kullanılmış olmasıdır. Sıçan arka bacak türetilen birincil embriyonik hücreleri kullanarak, kontraktil aktivite incelendi konsolun tespit% 12 (n = 4). Açıklanan lazer ve foto-dedektör sistemi kullanıl...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Tartışmalar

Hücresel daralma kanıt için mikro konsol analiz kritik adımlar mikroskop sahne içindeki konsol çip yerleştirme ve dizideki köşe konsolun ucuyla lazer ve foto-dedektör sonraki hizalama vardır. Bu doğru yapılmazsa, o zaman yazılım potansiyel veri toplama sırasında yanlış negatif birikimine neden, dizideki kalan konsolun pozisyonlarını hesaplamak için mümkün olacaktır. Operatörler konsol çip lazer pozisyonları kalibre önce kültür çanak alt ile aynı hizada yalan emin olmak için dikkatli olm...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Malzemeler

Name	Company	Catalog Number	Comments
Primary rat muscle growth medium
Neurobasal medium	Life Technologies	21103-049
B27 (50x)	Life Technologies	17504044	1x
Glutamax (100x)	Life Technologies	35050061	1x
G5 supplement	Life Technologies	17503-012	1x
Glial-Derived Neurotrophic Factor	Cell sciences	CRG400B	20 ng/ml
Brain-Derived Neurotrophic Factor	Cell sciences	CRB600B	20 ng/ml
Ciliary Neurotrophic Factor	Cell sciences	CRC400A	40 ng/ml
Neurotrophin-3	Cell sciences	CRN500B	20 ng/ml
Neurotrophin-4	Cell sciences	CRN501B	20 ng/ml
Acidic Fibroblast Growth Factor	Life Technologies	13241-013	25 ng/ml
Cardiotrophin-1	Cell sciences	CRC700B	20 ng/ml
Heparin Sulphate	Sigma	D9809	100 ng/ml
Leukemia Inhibitory Factor	Sigma	L5158	20 ng/ml
Vitronectin	Sigma	V0132	100 ng/ml
Primary rat muscle differentiation medium
NB Activ 4	Brain Bits LLC	NB4-500
Equipment
Class 2 red diode laser	Newport
Photo-detector	Noah Industries
Model 2100 Pulse stimulator	A-M systems
Multiclamp 700B Digitizer	Axon Instruments
Patch clamp microscope and stage	Olympus
Delta T4 culture dish controller	Bioptechs
Axoscope software	Molecular Devices
LabVIEW software	National Instruments
37 oC, 5% CO2 incubator	NAPCO
Class 2 microbiological flow hood	Labconco
Pipettes and tips	Eppendorf