JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Burada, L-dihydroxyphenylalanine uzarlar basit başlangıç malzemelerden genetik birleşme ve protein konjugasyon için uygulama için bir iletişim kuralı mevcut.

Özet

L-dihydroxyphenylalanine (basıncın) katekolaminler hayvanlar ve bitkiler içinde biyosentezi bulunan bir amino asittir. Belirli biyokimyasal özellikleri nedeniyle, amino asit biyokimyasal uygulamalarda birden çok faydası vardır. Bu rapor bir protokol uzarlar basıncın genetik birleşme ve protein konjugasyon için uygulama açıklar. BASINCIN bir Tirozin fenol-liyaz (TPL) katekol, pyruvate ve amonyak tarafından uzarlar olduğunu ve amino asit doğrudan bir Gelişmiş Aminoasil tRNA ve Aminoasil tRNA sentetaz çiftini kullanarak genetik birleşme yöntemi tarafından proteinlerin dahil edilmiştir. Bu doğrudan birleşme sistemi verimli basıncın daha iyi protein verimini basıncın daha önceki genetik birleşme sistemi ile diğer doğal amino asitler ve küçük eklenmesi ile birleştirmek. Protein konjugasyon basıncın içeren proteinler ile verimli ve siteye özel ve kullanışlılığı çeşitli uygulamalar için gösterir. Bu iletişim kuralı protein bilim adamları ile istediğiniz siteleri ve onların konjugasyon Sanayi ve ilaç uygulamaları için basıncın içeren mutasyona uğramış proteinlerin verimli biyosentezi için ayrıntılı yordamlar sağlar.

Giriş

BASINCIN katekolaminler hayvanlar ve bitkiler içinde biyosentezi katılan bir amino asittir. Bu amino asit tirozin hidroksilaz ve moleküler oksijen (O2)1tarafından Tyr sentezlenir. BASINCIN dopamin öncüsüdür ve kan - beyin bariyerini nüfuz için Parkinson hastalığı2tedavisinde kullanılmıştır. BASINCIN da midye ıslak koşullar3,4,5,6,7yapışkanlı özelliklerini sorumludur midye yapışma proteinler (haritalar) bulunur. Tyr başlangıçta nerede basıncın haritalar bulunur ve basıncın tyrosinases8,9tarafından daha sonra dönüştürülür pozisyonlarda kodlanır. İlginç biyokimyasal özellikleri nedeniyle, basıncın çeşitli uygulamalarda kullanılmaktadır. BASINCIN dihidroksi grup kimyasal oksidasyon yatkın ve amino asit L-dopaquinone, melanins habercisi kolayca dönüştürülür. Onun yüksek electrophilicity nedeniyle, L-dopaquinone ve onun türevleri crosslinking ve fiil ile10,11,12,13thiols ve aminler için kullanılmaktadır. 1,2-quinones Dien cycloaddition tepkiler gibi de davranabilir ve bioconjugation için zorlanma terfi oksidasyon kontrollü cyclooctyne-1,2-quinone (SPOCQ) cycloaddition14tarafından kullanılmıştır. Buna ek olarak, dihidroksi grup Fe3 + ve Cu2 +gibi metal iyonlarının şelasyon yapın ve basıncın içeren proteinler ilaç dağıtım ve metal iyon15,16algılama için kullanılmıştır.

BASINCIN edilmiş genetik olarak protein bir dik Aminoasil tRNA (aa-tRNA) ve Aminoasil tRNA sentetaz (aaRS) çifti17 kullanarak dahil ve protein konjügasyon ve crosslinking10,11için, kullanılan 12,13. Bu raporda, deneysel sonuçlar ve protokolleri basıncın uzarlar ucuz başlangıç malzemeleri ve uygulamaları bioconjugation için genetik birleşme açıklanmıştır. BASINCIN bir TPL kullanarak ve katekol, pyruvate ve Escherichia coliamonyak başlayarak uzarlar var. BASINCIN uzarlar doğrudan evrimleşmiş bir aa-tRNA ve aaRS çifti için basıncın ifade ederek protein kurulmuştur. Buna ek olarak, basıncın içeren uzarlar protein site-specifically bir floresan sonda ve protein reaksiyonlar üretmek için çapraz ile Birleşik. Bu iletişim kuralı için biosynthesize mutasyona uğramış proteinlerin basıncın içeren protein bilim adamları için yararlı olduğu ve proteinler ile biyokimyasal probları veya ilaç sanayi ve ilaç uygulamaları için eşlenik.

Protokol

1. plazmid İnşaat

  1. Sitrobacter freundii üzerinden TPL gen bir bünye organizatörü kontrol altında ve yeşil flüoresan protein (GFP) gen bir His ile ifade bir ifade plazmid (pBAD-çift-TPL-GFP-WT) inşa6-etiket denetimi altında araBAD organizatörü. PBAD-çift-TPL-GFP-E90TAG için kodon (E90) site için bir site Yönetmen: mutagenesis iletişim kuralı kullanılarak basıncın kehribar bir kodon (TAG), ile değiştirin. Bu plazmid inşası için Ayrıntılar bizim önceki rapor18' açıklanan.
  2. Bir tRNA/aaRS-ifade plazmid (pEVOL-DHPRS2)18,19 basıncın genetik birleşme oluşturmak. pEVOL aaRS genlerin iki kopya bağımsız organizatör ile ifade bir özel plazmid vektörü olduğu ve plazmid ayrıntılı bilgi bir önceki rapor19' de açıklanmıştır.
  3. Piyasada bulunan plazmid hazırlık setleri yüksek saflıkta plazmid DNA'lar almak için kullanın. Hazırlandı DNA'lar saflığı özel jel elektroforez, kullanarak gerekirse gözden geçirin.

2. kültür hazırlama

  1. Elektroporasyon
    1. Bu deney için kullanım elektro-yetkili E. coli DH10β zor. Her plazmid DNA (pEVOL-DHPRS2 ve pBAD-çift-TPL-GFP-E90TAG) 1 µL yetkili hücreleri 20 µL için ekleyin. Mix onları hafifçe bir pipet kullanarak homojen bir karışım yapmak.
    2. Karışım Elektroporasyon cuvettes aktarın. Küvet Elektroporasyon odasına koyun. Firma küvet-odası yapmak için odasına küvet itmek başvurun.
    3. 25 µF kullanarak küvet, şok ve 2,5 kV 0.1 cm cuvettes için.
    4. Prewarmed süper en iyi suyu (SOC), 1 %2 (w/v) tryptone içeren mL ekleyin, %0,5 (w/v) özü, 10 mM NaCl, 2.5 mM KCl, 10 mM MgCl2ve 20 mM glikoz, küvet için Maya ve hücreleri bir kültür tüp transfer. Hücreleri onları 37 ° C'de sallayarak ile 1 h için kuluçka kurtarma.
    5. 10-100 µL 35 µg/mL kloramfenikol ve 100 µg/mL ampisilin içeren bir tabakta lysogeny suyu (LB) agar kurtarıldı hücrelerinin yayıldı. 16 h için 37 ° C'de hücreler kuluçkaya.
  2. Starter kültür hazırlama
    1. Antibiyotik içeren LB orta 5 ml dönüştürülmüş bir koloni aşılamak. Colony 37 ° C'de sallayarak ile 12 h için kuluçkaya.

3. ifade ve arıtma GFP-E90DOPA biyosentetik sistemi tarafından

  1. GFP-E90DOPA ifade biyosentetik sistem tarafından
    1. Starter kültür (2 mL) 100 mL PA-5052 orta20 (50 mM Na2HPO4, 50 mM KH2PO4,4, 2 mM MgSO4, % 0,1 [w/v] izlemek böylece metaller, %0,5 [w/v] gliserol, 25 mM [NH4]2aktarım %0,05 [w/v] glikoz ve %5 [w/v] amino asitler [pH 7.25]) 35 µg/mL kloramfenikol, 100 µg/mL ampisilin, 100 mM pyruvate, 10 mM katekol, 25 mM amonyak ve 300 µM dithiothreitol (DTT) içeren bir kuluçka 30 ° C'de sallayarak ile izledi.
    2. 2 mL %0,2 (w/v) L-arabinoz eklediğinizde 550 nm ulaşır 0.8, optik yoğunluk (OD). Örnek 12 h 30 ° C'de sallayarak ile için kuluçkaya.
    3. Spin aşağı hücreleri 11.000 x g 5 min için de, süpernatant atmak ve hücre Pelet-80 ° C'de dondurmak
  2. Hücre lizis
    1. Hücre Pelet buz çözme ve 10 mL lizis arabellek 50 mM NaH2PO4 (pH 8.0), içeren hücrelerde resuspend 10 mM imidazole ve 300 mM NaCl.
    2. 10 dk. kullanım % 80 sonication genlik bir darbe ile 25 buzda resuspended hücreleri solüsyon içeren temizleyicide s kapalı açık ve 35 s.
    3. Spin aşağı lysate 18.000 x g 15 dk. arıtma için taze bir tüp süpernatant aktarmak için 4 ° C'de, hücre ve Pelet atın.
  3. Ni-NTA benzeşme Kromatografi
    1. Ni-NTA (nitrilotriacetic asit) reçine (reçine süspansiyon bir 100 mL kültür için 300 µL) süpernatant için ekleyebilir ve süspansiyon 1 h için hafifçe sallayarak proteinler 4 ° C'de Ni-NTA reçine bağlayabilirsiniz.
    2. Süspansiyon Polipropilen bir sütuna aktarmak ve reçine 3 yıkama yıkama arabelleği 50 mM NaH2PO4 (pH 8.0), içeren 5 mL x 20 mM imidazole ve 300 mM NaCl.
    3. Proteinler 3 elute x 50 mM NaH2PO4 (pH 8.0), içeren elüsyon arabelleği 300 µL ile 250 mM imidazole ve 300 mM NaCl.
    4. 280 absorbans ölçerek protein konsantrasyonu belirlemek nm. Yok olma (24,630 M-1cm-1) için katsayısı GFP-E90DOPA, 280 nm olarak hesaplanır bir protein yok olma katsayısı hesaplama (Örneğin, https://web.expasy.org/protparam/) ve bağımsız olarak ölçülen yok tarafından coefficiennt (2630 M-1cm-1) basıncın için. Alternatif bir yöntem, Bradford protein tahlil21 protein konsantrasyonu tayini için kullanın.

4. Oligomerizasyonda arıtılmış GFP-E90DOPA

  1. Sodyum 1 µL periodate H2O (6 mM) eklemek (1.0 eşdeğeri GFP-E90DOPA için) 20 µL GFP-E90DOPA bir çözüm için (300 µM) 50 mM Na2HPO4 (pH 8.0) içeren bir fosfat tampon ve 300 mM NaCl.
  2. Oligomerizasyonda tepki için 48 h 25 ° C'de devam etmek izin verir.
  3. Reaksiyon karışımı Sodyum Lauryl Sülfat-polyacrylamide jel elektroforez tarafından analiz) (SDS-sayfa) 6. adımda açıklandığı gibi.

5. GFP-E90DOPA SPOCQ tarafından bir alkin sonda ile konjugasyon

  1. Cy5.5 bağlı azadibenzocyclooctyne (Cy5.5-ADIBO)22 H2O (4.0 mM) 1 µL ekleyin (10 GFP-E90DOPA eşdeğeri) 20 µL GFP-E90DOPA bir çözüm için (20 µM) 50 mM Na2HPO4 (pH 8.0) içeren bir fosfat tampon ve 300 mM NaCl.
  2. Sodyum 1 µL H2O periodate Ekle (400 µM) (1.0 GFP-E90DOPA eşdeğeri) tepki karışıma.
  3. 25 ° c 1 h için devam etmek SPOCQ tepki sağlar. Bir ışığa duyarlı prob kullanılıyorsa, alüminyum folyo ile reaksiyon gemi kapsar.

6. etiketli GFP saflaştırılması

  1. 50 mM Na2HPO4 (pH 8.0) içeren bir fosfat tampon ekleyerek SPOCQ reaksiyon karışımı sulandırmak ve 300 mM NaCl, 500 µL.
  2. Seyreltik çözüm bir santrifüj filtre spin sütuna aktarmak. Spin sütun sırasında 14.000 x g 4 ° C'de 15 dakika santrifüj kapasitesi ve akışı aracılığıyla atın. Bu 3 x herhangi bir aşırı Cy5.5 ADIBO kaldırmak için adımları yineleyin.
  3. Arıtılmış örnek spin sütundan bir 1.5 mL microcentrifuge tüp aktarın.
  4. Alternatif olarak, aynı tampon karşı diyaliz tarafından bir saflaştırma taşımak.
  5. Arıtılmış GFP 4 ° C'de depolayın

7. SDS-sayfa analizi ve floresan jel tarama

  1. Protein örnekleri 5 µL protein örnek arabelleği ekleyerek SDS-sayfa analizi için hazırlamak ( Tablo malzemelerigörmek) ve DTT (1.00 M) 2 µL arıtılmış veya ham, 13 µL için etiketli GFP (13,6 µM veya 0,38 mg/mL). Oligomeric GFP bir analizi için GFP (67.8 µM veya 1,9 mg/mL) daha yüksek bir konsantrasyon kullanın. Onları 95 ° c 10 min için kuluçka proteinler denatüre.
  2. Elektroforez için % 4 - % 12 Bis-Tris SDS-sayfa jel kaset (satın alınan, hazır jel kaset) yerleştirin ve çalışan bir arabellek ekleyin ( Tablo malzemelerigörmek). Protein örnekleri ve molekül ağırlığı marker yükleyin. 35-40 dk Elektroforez 200 V çalıştırın.
    Not: fotoğraf ağartma-floresan probe en aza indirmek için karanlıkta tüm işlemler gerçekleştirerek gün ışığına protein örneklerinin herhangi bir yay.
  3. Bir floresan tarayıcı floresans görüntüleme için kullanın. Protein jel elektroforez üzerinden sarın ve bir floresan tarayıcıya yerleştirin. Jel bir uygun dalga boyu ayarını kullanarak tarayın. Cy5.5 için tarayıcı yazılımını sağlanan Cy5 modunu seçin.
  4. Jel reaktif boyama ticari bir protein ile leke.

8. MALDI-TOF MS Analizi tripsin sindirim tarafından

  1. Arıtılmış GFP-E90DOPA (2.2 mg/mL veya 80 µM) arabellekte (w/v) SDS %0,1 50 mM Tris-HCl (pH 8.0), içeren ve 25 mM DTT 60 ° c için 1 h 100 µL kuluçkaya.
  2. Iodoacetamide (IAA, 4.0 M) H2O 1 µL ekleyin (500 eşdeğeri GFP-E90DOPA için) aynı arabellek arıtılmış GFP-E90DOPA çözüm (80 µM) için. Karışımı 30 dk ışık koruma için 25 ° C'de kuluçkaya.
  3. Tripsin (1: 100 proteaz-substrat protein oranı [w/w]) ekleyerek GFP-E90DOPA örnek sindirmek ve 37 ° C 4 h için tepki karisimin kuluçkaya.
  4. Sindirilir peptid örnek C18 spin sütunlarla desalting için standart bir yol kullanarak arındırmak.
  5. Alfa-cyano-4-hydroxycinnamic asit (CHCA) bir matris23kullanarak matris yardımlı Lazer Desorpsiyon/iyonlaşma uçuş zaman kütle spektrometresi (MALDI-TOF MS) için bildirilen protokolü tarafından sindirilmiş peptidler analiz.

Sonuçlar

BASINCIN uzarlar bir TPL üzerinden doğrudan birleşme ifade sistem Şekil 1' de gösterilen. Gelişmiş aa-tRNA ve aaRS çifti için gen bir plazmid yerleştirilir ve 90 konumundaki sarı bir kodon içeren GFP gen (GFP-E90TAG) başka bir plazmid basıncın birleşme değerlendirmek için GFP floresans tarafından bulunur. TPL gen GFP gen içeren aynı ifade plazmid içinde yerleştirilir ve yapısal basıncın biyosentezi verimi en üst düzeye çıkarmak i...

Tartışmalar

Bu protokol için biyosentezi ve basıncın doğrudan birleşme açıklanmıştır. Bu yöntemde kullanılan bakteri hücre sentez ek bir amino asit ve protein sentezi için doğal olmayan bir yapı taşı olarak kullanabilirsiniz. Doğal olmayan amino asitler genetik birleşme genişletilmiş bir genetik kod ile doğal olmayan organizma gelişimi için anahtar bir teknoloji olmuştur. Ancak, bu yöntem Teknik olarak eksik oldu ve birleşme verimliliği artırmak ve pertürbasyon endojen çeviri sistemleri için en aza i...

Açıklamalar

Yazarlar ifşa gerek yok.

Teşekkürler

Bu araştırma genel sınır araştırma programı (NMK-2015M3A6A8065833) tarafından desteklenen ve temel bilim araştırma programı (2018R1A6A1A03024940) aracılığıyla Ulusal Araştırma Vakfı, Kore (NMG) Kore hükümeti tarafından finanse.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
1. Plasmid Construction
Plasmid pBAD-dual-TPL-GFP-E90TAGoptionally contain the amber stop codon(TAG) at a desired position. Ko, W. et al. Efficient and Site-Specific Antibody Labeling by Strain-promoted Azide-Alkyne Cycloaddition. BKCS. 36 (9), 2352-2354, doi: 10.1002/bkcs.10423, (2015)
Plasmid pEvol-DHPRS21. Young, T. S., Ahmad, I., Yin, J. A., and Schultz, P. G. An enhanced system for unnatural amino acid mutagenesis in E. coli. J. Mol. Biol. 395 (2), 361-374, doi: 10.1016/j.jmb.2009.10.030, (2010) 2. Kim, S., Sung, B. H., Kim, S. C., Lee, H. S. Genetic incorporation of l-dihydroxyphenylalanine (DOPA) biosynthesized by a tyrosine phenol-lyase. Chem. Commun. 54 (24), 3002-3005, doi: 10.1039/c8cc00281a (2018).
DH10βInvitrogenC6400-03Expression Host
Plasmid Mini-prep kitNucleogen5112200/pack
AgaroseIntron biotechnology32034500 g
Ethidium bromideAlfa AesarL074821 g
LB BrothBD Difco244620500 g
2. Culture preparation
2.1) Electroporation
Micro pulser BIO-RAD165-2100
Micro pulser cuvetteBIO-RAD165-20890.1 cm electrode gap, pkg. of 50
Ampicillin SodiumWako018-1037225 g
ChloramphenicolAlfa AesarB2084125 g
AgarSAMCHUN214230500 g
SOC mediumSigmaS1797100 mL
3. Expression and Purification of GFP-E90DOPA by biosynthetic system
3.1 Expression of GFP-E90DOPA by biosynthetic system
L(+)-Arabinose, 99%Acros104981000100 g
Pyrocatechol, 99%SAMCHUNP138725 g
Ammonium sulfate, 99%SAMCHUNA0943500 g
pyruvic acid, 98%Alfa AesarA13875100 g
Sodium phosphate dibasic, anhydrous, 99%SAMCHUNS08911 kg
Potassium phophate, monobasic, 99%SAMCHUNP11271 kg
Magnesium sulfate, anhydrous, 99%SAMCHUNM01461 kg
D(+)-Glucose, anhydrous, 99%SAMCHUND0092500 g
Glycerol, 99%SAMCHUNG02691 kg
Trace metal mix a5 with coSigma9294925 mL
L-Proline, 99%SAMCHUNP125725 g
L-Phenylalanine, 98.5%SAMCHUNP198225 g
L-TryptophaneJUNSEI49550-031025 g
L-Arginine, 98%SAMCHUNA114925 g
L-Glutamine, 98%JUNSEI27340-031025 g
L-Asparagine monohydrate, 99%SAMCHUNA119825 g
L-MethionineJUNSEI73190-041025 g
L-Histidine hydrochloride monohydrate, 99%SAMCHUNH060425 g
L-Threonine, 99%SAMCHUNT293825 g
L-LeucineJUNSEI87070-031025 g
Glycine, 99%SAMCHUNG028625 g
L-Glutamic acid, 99%SAMCHUNG023325 g
L-Alanine, 99%SAMCHUNA154325 g
L-Isoleucine, 99%SAMCHUNI104925 g
L-Valine, 99%SAMCHUNV008825 g
L-SerineSAMCHUNS244725 g
L-Aspartic acidSAMCHUNA120525 g
L-Lysine monohydrochloride, 99%SAMCHUNL059225 g
3.2 Cell lysis
Imidazole, 99%SAMCHUNI05781kg
Sodium phosphate monobasic, 98%SAMCHUNS09191 kg
Sodium Chloride, 99%SAMCHUNS29071 kg
Ultrasonic Processor - 150 microliters to 150 millilitersSONIC & MATERIALSVCX130
3.3 Ni-NTA Affinity Chromatography
Ni-NTA resinQIAGEN3021025 mL
Polypropylene columnQIAGEN3492450/pack, 1 mL capacity
4. Oligomerization of Purified GFP-E90DOPA 
Sodium periodate, 99.8&Acros4196100505 g
5. Conjugation of GFP-E90DOPA with an Alkyne Probe by Strain-Promoted Oxidation-Controlled Cyclooctyne–1,2-Quinone Cycloaddition (SPOCQ) 
Cy5.5-ADIBO FutureChemFC-61191mg
6. Purification of Labeled GFP
Amicon Ultra 0.5 mL Centrifugal FiltersMILLIPOREUFC50039696/pack, 500ul capacity
7. SDS-PAGE Analysis and Fluorescence Gel Scanning
1,4-Dithio-DL-threitol, DTT, 99.5 %Sigma1070898400110 g
NuPAGE LDS Sample Buffer, 4XThermofisherNP000710 mL
MES running bufferThermofisherNP0002500 mL
Nupage Novex 4-12% SDS PAGE gelsThermofisherNO032112 well
Coomassie Brilliant Blue R-250Wako031-1792225 g
G:BOX Chemi Fluorescent & Chemiluminescent Imaging SystemSyngeneG BOX Chemi XT4
8. MALDI-TOF MS analysis by Trypsin Digestion
8.1 Preparation of the digested peptide sample by trypsin digestion
Tris(hydroxymethyl)aminomethane, 99%SAMCHUNT1351500 g
Hydrochloric acid, 35~37%SAMCHUNH0256500 mL
Dodecyl sulfate sodium salt, 85%SAMCHUND1070250 g
IodoacetamideSigmaI61255 g
Trypsin Protease, MS GradeThermofisher900575 x 20 µg/pack
C-18 spin columnsThermofisher8987025/pack, 200 µL capacity
8.2 Analysis of the digested peptide by MALDI-TOF
Acetonitirile, 99.5%SAMCHUNA0125500 mL
α-Cyano-4-hydroxycinnamic acidSigmaC202010 g
Trifluoroacetic acid, 99%SAMCHUNT1666100 g
MTP 384 target plate ground steel BC targetsBruker8280784
Bruker Autoflex Speed MALDI-TOF mass spectrometerBruker

Referanslar

  1. Nagatsu, T., Levitt, M., Udenfriend, S. Tyrosine hydroxylase: The initial step in norepinephrine biosynthesis. Journal of Biological Chemistry. 239, 2910-2917 (1964).
  2. Pinder, R. M. Possible dopamine derivatives capable of crossing the blood-brain barrier in relation to parkinsonism. Nature. 228 (5269), 358 (1970).
  3. Waite, J. H., Tanzer, M. L. Polyphenolic substance of mytilus edulis: novel adhesive containing L-DOPA and hydroxyproline. Science. 212 (4498), 1038-1040 (1981).
  4. Lee, H., Scherer, N. F., Messersmith, P. B. Single-molecule mechanics of mussel adhesion. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (35), 12999-13003 (2006).
  5. Papov, V. V., Diamond, T. V., Biemann, K., Waite, J. H. Hydroxyarginine-containing polyphenolic proteins in the adhesive plaques of the marine mussel Mytilus edulis. Journal of Biological Chemistry. 270 (34), 20183-20192 (1995).
  6. Waite, J. H., Qin, X. Polyphosphoprotein from the adhesive pads of Mytilus edulis. Biochemistry. 40 (9), 2887-2893 (2001).
  7. Nicklisch, S. C., Waite, J. H. Mini-review: The role of redox in DOPA-mediated marine adhesion. Biofouling. 28 (8), 865-877 (2012).
  8. Silverman, H. G., Roberto, F. Understanding marine mussel adhesion. Marine Biotechnology. 9 (6), 661-681 (2007).
  9. Lee, B. P., Messersmith, P. B., Israelachvili, J. N., Waite, J. H. Mussel-inspired adhesives and coatings. Annual Review of Materials Research. 41, 99-132 (2011).
  10. Umeda, A., Thibodeux, G. N., Zhu, J., Lee, Y., Zhang, Z. J. Site-specific protein cross-linking with genetically incorporated 3,4-dihydroxy-L-phenylalanine. ChemBioChem. 10 (8), 1302-1304 (2009).
  11. Umeda, A., Thibodeux, G. N., Moncivais, K., Jiang, F., Zhang, Z. J. A versatile approach to transform low-affinity peptides into protein probes with cotranslationally expressed chemical cross-linker. Analytical Biochemistry. 405 (1), 82-88 (2010).
  12. Xu, J., Tack, D., Hughes, R. A., Ellington, A. D., Gray, J. J. Structure-based non-canonical amino acid design to covalently crosslink an antibody-antigen complex. Journal of Structural Biology. 185 (2), 215-222 (2014).
  13. Burdine, L., Gillette, T. G., Lin, H. J., Kodadek, T. Periodate-triggered cross-linking of DOPA-containing peptide-protein complexes. Journal of the American Chemical Society. 126 (37), 11442-11443 (2004).
  14. Borrmann, E., et al. Strain-promoted oxidation-controlled cyclooctyne-1,2-quinone cycloaddition (SPOCQ) for fast and activatable protein conjugation. Bioconjugate Chemistry. 26 (2), 257-261 (2015).
  15. Ayyadurai, N., et al. Development of a selective, sensitive, and reversible biosensor by the genetic incorporation of a metal-binding site into green fluorescent protein. Angewandte Chemie International Edition. 50 (29), 6534-6537 (2011).
  16. Kim, B. J., Cheong, H., Hwang, B. H., Cha, H. J. Mussel-inspired protein nanoparticles containing iron(III)-DOPA complexes for pH-responsive drug delivery. Angewandte Chemie International Edition. 54 (25), 7318-7322 (2015).
  17. Alfonta, L., Zhang, Z., Uryu, S., Loo, J. A., Schultz, P. G. Site-specific incorporation of a redox-active amino acid into proteins. Journal of the American Chemical Society. 125 (48), 14662-14663 (2003).
  18. Kim, S., Sung, B. H., Kim, S. C., Lee, H. S. Genetic incorporation of L-dihydroxyphenylalanine (DOPA) biosynthesized by a tyrosine phenol-lyase. Chemical Communications. 54 (24), 3002-3005 (2018).
  19. Young, T. S., Ahmad, I., Yin, J. A., Schultz, P. G. An enhanced system for unnatural amino acid mutagenesis in E. coli. Journal of Molecular Biology. 395 (2), 361-374 (2010).
  20. Studier, F. W. Protein production by auto-induction in high density shaking cultures. Protein Expression and Purification. 41 (1), 207-234 (2005).
  21. Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry. 72 (1-2), 248-254 (1976).
  22. Jang, S., Sachin, K., Lee, H. J., Kim, D. W., Lee, H. S. Development of a simple method for protein conjugation by copper-free click reaction and its application to antibody-free Western blot analysis. Bioconjugate Chemistry. 23 (11), 2256-2261 (2012).
  23. Gobom, J., et al. Alpha-cyano-4-hydroxycinnamic acid affinity sample preparation. A protocol for MALDI-MS peptide analysis in proteomics. Analytical Chemistry. 73 (3), 434-438 (2001).
  24. Mukai, T., et al. Highly reproductive Escherichia coli cells with no specific assignment to the UAG codon. Scientific Reports. 5, 9699 (2015).
  25. Lajoie, M. J., et al. Genomically recoded organisms expand biological functions. Science. 342 (6156), 357-360 (2013).
  26. Bryson, D. I., et al. Continuous directed evolution of aminoacyl-tRNA synthetases. Nature Chemical Biology. 13 (12), 1253-1260 (2017).
  27. Guo, J., Melancon, C. E., Lee, H. S., Groff, D., Schultz, P. G. Evolution of amber suppressor tRNAs for efficient bacterial production of proteins containing nonnatural amino acids. Angewandte Chemie International Edition. 48 (48), 9148-9151 (2009).
  28. Lee, S., et al. A facile strategy for selective phosphoserine incorporation in histones. Angewandte Chemie International Edition. 52 (22), 5771-5775 (2013).
  29. Neumann, H., Wang, K., Davis, L., Garcia-Alai, M., Chin, J. W. Encoding multiple unnatural amino acids via evolution of a quadruplet-decoding ribosome. Nature. 464 (7287), 441-444 (2010).
  30. Lang, K., Chin, J. W. Bioorthogonal reactions for labeling proteins. ACS Chemical Biology. 9 (1), 16-20 (2014).
  31. Lang, K., Chin, J. W. Cellular Incorporation of unnatural amino acids and bioorthogonal labeling of proteins. Chemical Reviews. 114 (9), 4764-4806 (2014).
  32. Plass, T., Milles, S., Koehler, C., Schultz, C., Lemke, E. A. Genetically encoded copper-free click chemistry. Angewandte Chemie International Edition. 50 (17), 3878-3881 (2011).
  33. Seitchik, J. L., et al. Genetically encoded tetrazine amino acid directs rapid site-specific in vivo bioorthogonal ligation with trans-cyclooctenes. Journal of the American Chemical Society. 134 (6), 2898-2901 (2012).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Biyokimyasay 138bas nc ngenetik birle mebiyosenteziTirozin fenol liyazprotein konj gasyonzorlanma terfi oksidasyon kontroll cyclooctyne 12 quinone SPOCQ cycloaddition

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır