Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Amaç, sıvı fazlı izoelektrik odaklama (IEF) yöntemini çalıştırarak biyoaktif küçük molekülleri, kompleks bitki özünden peptitleri ve patojen mikroplardan proteinleri fraksiyonetmek ve izole etmektir. Ayrıca ayrılan moleküller tespit edildi ve biyoaktiviteleri doğrulandı.

Özet

Bitkilerden ve mikroplardan elde edilen doğal ürünler zengin bir biyoaktif molekül kaynağıdır. Kullanımlarından önce, karmaşık ekstrelerden aktif moleküller downstream uygulamaları için saflaştırılmalıdır. Bu amaç için çeşitli kromatografik yöntemler mevcuttur ancak tüm laboratuvarlar yüksek performanslı yöntemler göze alamaz ve karmaşık biyolojik örneklerden izolasyon zor olabilir. Burada, preparatif sıvı fazizoelektrik odaklamanın (IEF) molekülleri, küçük moleküller ve peptidler de dahil olmak üzere karmaşık bitki özlerinden, izoelektrik noktalarına (pI) göre ayırabildiğimizi gösteriyoruz. Bu yöntemi karmaşık biyolojik numune fraksiyonu ve karakterizasyonu için kullandık. Kavramın bir kanıtı olarak, biz bir Gymnema sylvestre bitki ekstresi fraksiyone, terpenoid saponin küçük moleküller ve bir peptit bir aile izole. Ayrıca candida albicans mantarını model sistem olarak kullanarak etkili mikrobiyal protein ayrıştırma larını gösterdik.

Giriş

Biyomoleküllerin karmaşık biyolojik numunelerden arındırışı biyolojik deneylerde önemli ve çoğu zaman zor bir adımdır1. İzoelektrik odaklama (IEF), taşıyıcı amperatların yüklerine göre seyahat ettikleri ve bir elektrik alanında pH gradyanı nın oluşturuldukları karmaşık biyomoleküllerin yüksek çözünürlüklü ayrımı için uygundur3. IEF için ilk ticari taşıyıcı ampholyte Olof Vesterberg tarafından 1964 yılında geliştirilen ve patentli4,5. Taşıyıcı amperatlar alifatik oligo-amino oligo-karboksilik asit molekülleri değişen uzunluk ve dallanma6. Daha sonra, Vesterberg ve diğerleribiyomolekülleriayıran genişletilmiş kullanım için taşıyıcı ampholytes geliştirilmiş 6,7.

Biyomolekülleri ayırma yöntemleri arasında agarose ve poliakrilamid jel elektroforezi, iki boyutlu jel elektroforezi (2-DE), izoelektrik odaklama, kapiller elektroforez, izotachophorez ve diğer kromatografik teknikler (örn. TLC, FPLC, HPLC)2sayılabilir. "Rotofor" adı verilen bir enstrümanda gerçekleştirilen sıvı fazI IEF, Milan Bier8tarafından icat edilmiştir. Bu enstrümanın konseptine ve tasarımına öncülük etmiş ve elektroforetik göç teorisine büyük katkıda bulunmuştur. Ekibi ayrıca bilgisayar simülasyonları için elektroforetik ayırma sürecinin matematiksel bir model geliştirdi9.

Sıvı fazlı IEF aparatı, 20 gözenekli bölmeye bölünmüş bir naylon çekirdek ve sirkülasyon suyu soğutma seramik çubuktan oluşan yatay olarak dönen silindirik bir hücredir. Gözenekli bölmeler, moleküllerin elektrotlar arasındaki sulu fazdan geçmesine izin verir ve fraksiyonlarda vakum altında saflaştırılmış numunelerin toplanmasına izin verir. Bu arıtma sistemi,[lt;4 saat içinde belirli bir molekülün 1000 kata kadar saflaştırılmasını sağlayabilir. Bu aletin değerli bir özelliği, karmaşık bir karışımdan arınma için ilk adım olarak veya saflık10elde etmek için son bir adım olarak uygulanabilir olmasıdır. Eğer ilgi molekülü bir proteinise, bir diğer avantajı da ayrılma sırasında doğal konformasyonunun korunmasıdır.

Sıvı fazı IEF kullanımı proteinler, enzimler ve antikor saflaştırma6,10,11,,12,13,14için yaygın olarak bildirilmiştir. Burada tıbbi bitki Gymnema sylvestreküçük molekül ve peptidler ayıran ve arındırıcı için bu yaklaşımın kullanımını açıklar. Bu protokol, araştırmacıların düşük maliyetle aşağı akım uygulamaları için bir bitki özü aktif küçük molekülleri konsantre ve arındırmak yardımcı olacaktır. Buna ek olarak, bu IEF tabanlı sistemde Candida albicans mantar15 karmaşık bir protein ekstresinden proteinlerin zenginleştirme ikinci bir örnek olarak göstermektedir.

Protokol

1. Standart sıvı fazlı IEF ünitesinin kurulumu ve ön çalıştırımı

  1. Sıvı fazlı IEF elektrotlarını (ano-kırmızı düğme ve katot-siyah düğme) kullanım kılavuzuna göre kendi değişim membranları ile birleştirin (bkz. Malzeme Tablosu). Yeni membranlar kullanıldığında anyon değişim membranlarını 0,1 M NaOH ve 0,1 M H3PO4 ile katyon değişim membranlarını en az 16 saat e-posta ile dengeleyin.
    1. Membranları elektrolitlerde (0,1 M NaOH veya 0,1 M H3PO4)çalışır ve kurumasını bekleyin.
  2. İyon değişimi contalarında üç dikdörtgen deliği hizalayarak elektrotun iç ve dış kısmını birleştirin. Membranların kurumasını önlemek için elektrotları ilgili elektrolitlerle (~25-30 mL) doldurun.
    1. Elektrot içinde basınç oluşturup sızıntıya neden olabilecek fazlalık (elektrot odasıhacminin 1/3'ünden fazla) elektrolit eklemeyin.
  3. Numune toplama bağlantı noktalarını, alet montaj parçalarıyla birlikte gelen sızdırmazlık bandıyla kapatın (bkz. Malzeme Tablosu). Örnek toplama bağlantı noktaları tarafı, iki dikey metal hizalama pimi ile tanımlanabilir. Alternatif olarak, bağlantı noktalarını kapatmak için standart sızdırmazlık bandı kullanın.
  4. Seramik soğutma parmağı üzerinde odaklama odası montajının tüm parçalarını sırayla (anot elektrodu, naylon membran çekirdeği, odaklama odası ve katot elektrodu) birleştirin.
  5. 50 mL şırınga kullanarak odaklama odasını önceden soğutulmuş distile suyla (standart IEF hücresi için toplam 60 mL hacim) doldurun.
  6. Sıvı fazlı IEF cihazını 4 ºC'de sirkülasyonlu bir soğutma suyuna bağlayın ve üniteyi 15 W ve 3.000 V'da 3-5 dk veya gerilim dengeleyene kadar önceden çalıştırın.
    NOT: Genellikle, bir dakika içinde, gerilim maksimum ayar değerlerine ulaşacaktır. Distile su ile prerunning odaklama odası ve naylon membran çekirdek artık iyonları kaldırmak için yardımcı olur.
  7. Güç kaynağını kapatın ve fraksiyon toplayıcısını kullanarak hücreden suyu çıkarın. Toplama bağlantı noktalarını sızdırmazlık bandıyla yeniden kapatın.
    NOT: Şimdi cihaz adım 2.4 kullanıma hazırdır.

2. Gymnema sylvestre ekstresinden küçük molekül ve peptidlerin ayrılması ve saflaştırılması

  1. Bitki ekstresinin 0,6 g'ını ölçün ve distile suda (60 mL) 5 dakika boyunca bir rulo tüpe karıştırılarak çözün.
    NOT: Çözünür ve tuzsuz herhangi bir biyolojik numune bu IEF cihazı kullanılarak ayırma ve arıtma için kullanılabilir. 10 mM'ye kadar tamponlama tuz konsantrasyonu olan numuneler hafif çözünürlükte kullanılabilir. Biz triterpenoid bileşiklerin saponin aile ilgileniyoruz, jimnastik asitleri, G. sylvestre bitki kendi benzersiz antifungal özellikleri için16.
  2. Çözünmez parçacıkları kaldırmak için 5 dk için 10.000 x g çözünür bitki ekstresi santrifüj.
  3. Supernatant'ı (~60 mL) 80 mL'lik bir santrifüj tüpüne aktarın ve 0,6 mL amperat (pH 3-10) ile %1(v/v) ile karıştırın.
  4. Sıvı fazlı IEF ünitesini hazırlamak için 1.1 – 1.7 adımlarını izleyin. Oda şimdi numuneyi yüklemeye hazır.
  5. 1-1/2 inç 19 G künt uç iğnesi (aletle birlikte gelir) ile 50 mL şırınga kullanın ve hazırlanan numuneyi numune toplama bağlantı noktalarından hücreye ampholyte (toplam 60 mL) yükleyin.
  6. Odakhücreyi standdan çıkararak ve kabarcıkları çıkarmak için elektrot odasına dokunarak örnek hücreden hava kabarcıklarını çıkarın. Hava kabarcıklarının varlığı gerilim ve akım dalgalanmalarına neden olur ve koşmayı etkiler.
  7. Üniteyi su soğutucuya (4 °C) bağlayın ve sabit 15 W'lık güç kaynağıyla fraksiyona başlayın.
  8. Cihazı 3 saat veya voltaj sabit bir değere ulaşana kadar çalıştırın.
    NOT: Numune netlenmeye başladığında, gerilim sabit bir değere ulaşıncaya kadar kademeli olarak tırmanmaya başlar.
  9. Koşudan sonra, IEF ünitesinde hasat düğmesine basarak vakum pompasına bağlı hasat kutusundaki kesirleri (20 plastik tüp, 12 mm x 75 mm, 5-6 mL hacim içeren) toplamaya hazırolun.
  10. 20 toplama pimlerini, bantla mühürlenmiş odak hücrenin 20 toplama bağlantı noktalarıyla hizalayın.
  11. Toplama pimlerini sızdırmazlık bandına itin ve vakum pompasını aynı anda Açın (Bkz. Şekil 2B, 2C & 2D).
    NOT: Her odadan yaklaşık 3 mL kesir her defası tüplere toplanır. Kesirler sonraki downstream uygulamaları için kullanılabilir (Peptit niceleme için SDS-PAGE, TLC ve küçük moleküller için biyoassay).

3. Proteinlerin C. albicanlardan ayrılması ve saflaştırılması

  1. Maya-peptone-dekstroz (YPD) suyu16 30 °C'de bir gecede sallayarak (200 rpm) C. albicans tek koloni büyümek.
  2. Mayan hücreleri santrifüj (5 dk için 10.000 x g) toplayın.
  3. % 1 (v/v) beta-mercaptoetanol (β-ME) (kültür hacminin 1/10'u) içeren amonyum karbonat (1.89 g/L) tampondaki C. albicans maya hücrelerini askıya alın ve 5 °C15'te1 saat silindir tüpünde döndürün.
  4. Maya hücrelerini santrifüj (5 dk için 10.000 x g) çıkarın ve protein ekstresini 0,45 μm'lik bir filtreden filtreleyin.
    NOT: C. albicans sitosol, membran veya hücre duvarından alınan protein örnekleri IEF fraksiyonu için hazırlanabilir ve kullanılabilir. Benzer şekilde, bakteri veya diğer biyolojik örneklerden (hayvan dokusu ekstresi) proteinler uygun yöntemlerle(örneğin,diyaliz veya tuzsuzsütunlar kullanılarak) herhangi bir tuz çıkarıldıktan sonra kullanılabilir.
  5. 4 °C'de 15 saat boyunca bir diyaliz tüpünde (3.500 MWCO) protein ekstresini 15 saat boyunca diyaliz tüpünde diyalize alın. Standart17olarak gama globulin kullanarak Bradford boya bağlama yöntemi ile protein konsantrasyonu tahmin .
  6. Fraksiyonu için %1 (v/v) amper (pH 5-8) içeren 60 mL suda toplam proteinin 500 mg'ını kullanın.
    NOT: Geniş menzilli bir ampholyte (pH 3-10) C. albicans bazı non-glucan bağlı hücre duvarı proteinleri zenginleştirmek olmadığından, dar aralıklı (pH 5-8) ampholyte kullanın. Örnek protein konsantrasyonu 2 mg/mL'den fazla ise %2'ye varan bir amper konsantrasyonu kullanılabilir; bu odaklama sırasında protein toplama en aza indirir. Örnekleri, amperleri ve suyu her zaman buzüzerinde bekletin.
  7. IEF ünitesini hazırlamak için 1.1- 1.7 adımlarını tekrarlayın ve protein çözeltisini 3.6 adımdan iEF hücresine yüklemek için kullanın.
  8. Sabit bir 15 W odaklanarak 4 saat sonra, hasat protein fraksiyonları (1-20) yukarıda açıklandığı gibi (adım 2.9-2.11) ve protein örnekleri azaltarak ve kaynatıldıktan sonra% 12.5 SDS-PAGE analiz18.
  9. SDS-PAGE jelini Coomassie mavi boya (%0.01) ile boyanarak çözünmüş proteinleri lekeleyin bir rocker üzerinde oda sıcaklığında 2-3 saat için çözelti. Jel destain ve jel görüntüleyici kullanarak jel görüntü kaydedin.
    NOT: Coomassie mavi boya (%0.01) %40 metanol ve %10 asetik asit içeren bir destaining çözeltisi içinde 0.01 g Coomassie mavisi tozu karıştırılarak hazırlanabilir.

4. Bitki özü Gymnema sylvestre saflaştırılmış küçük moleküllerin biyoaktivite

  1. Adım 3.1 gibi maya hücrelerinde C. albicans grow.
  2. Hücre süspansiyon hazırlamak için, C. albicans maya hücreleri (1/1000 seyreltme) yeni bir RPMI hücre kültürü orta 50 mM glikoz ile takviye içine bir gecede kültür seyreltmek.
    NOT: C. albicans hyphal indükleme koşulları altında (RPMI 37 °C) altında maya büyüme hyphae dönüştürür. Jimnastikasit küçük moleküllerhypha indükleyici koşullar altında hyphae içine maya hücrelerinin dönüşümü inhibe gösterilmiştir16. Sıvı faz-IEF ayrılmış G. sylvestre ekstresinin bu biyoaktif molekülleri içerip içermediğini belirlemeyi amaçladık.
  3. Hazırlanan hücre süspansiyonundan, 96 kuyulu plakanın her kuyuya 90°L ekleyin.
  4. Her fraksiyondan (Sıvı faz IEF'den elde edilen G. sylvestre ekstresinin 1-20 kesirleri, Şekil 4),yukarıdaki hücre süspansiyonunun 90 μL'si ile kuyulara 10°L ekleyin (adım 4.2). Tayini triplicate olarak gerçekleştirin.
  5. Ampholyte içeren 10 μL su ekleyin (%1) 90 μL C. albicans maya hücre süspansiyon u negatif kontrol olarak ayrı kuyulara.
    NOT: Amperatlar biyoaktivite potansiyeline sahiptir ve bu nedenle herhangi bir biyoassay yaparken bir amfide kontrol dahil etmek esastır19.
  6. 96 kuyulu plakayı 37 °C'de 12 saat kuluçkaya yatırın ve C. albicans mayadan hypha'ya inhibisyonu mikroskop16altında gözlemleyin. Ayrıca, maya-hypha dönüşüm inhibisyonu yüzdesini belirlemek.

Sonuçlar

Gymnema sylvestre bitki ekstresinden küçük molekül ve peptidlerin ayrılması ve saflaştırılması
Preparatif sıvı fazI IEF yöntemini kullanarak, tıbbi bitki özleri ve hücre yüzey proteinleri bir insan patojenik mantar, C. albicans. Bu kesirasyon protokollerinin şeması Şekil 1'degösterilmiştir.

Sıvı fazLı IEF'den elde edilen G. sylvestre ekstresinin 20 fraksiyonundan, koyu renkli moleküllerin (te...

Tartışmalar

Doğal ürün kaynaklarından (örneğin, bitkiler) gelen küçük moleküller, kimyasal yapı olarak oldukça çeşitli karmaşık ikincil metabolitleri içerir. Onlar bitki savunma mekanizmaları dahil olduğuna inanılmaktadır. Buna ek olarak, polipeptidler de bitki dokularında mevcuttur22. Bu doğal ürün küçük moleküller ilaç keşif ve geliştirme için test moleküllerinin zengin kaynaklarıdır. Ancak, izolasyon ve arınma için gerekli zor ve sıkıcı yöntemler terapötik uygulam...

Açıklamalar

Yazarlar hiçbir rakip mali çıkarları beyan etmek istiyorum.

Teşekkürler

Biz Biyoloji Bölümü ve Johnson Kanser Araştırma Merkezi BRIEF ve IRA ödülleri için, sırasıyla GV için finansman kaynakları için müteşekkiriz. Ayrıca RV için K-INBRE doktora sonrası ödül teşekkür ederiz. Bu çalışma kısmen P20 GM103418 hibe numarası altında Ulusal Sağlık Enstitüleri Genel Tıp Bilimleri Enstitüsü'nden Kurumsal Gelişim Ödülü (IDeA) tarafından desteklenmiştir. İçerik sadece yazarların sorumluluğundadır ve Ulusal Genel Tıp Bilimleri Enstitüsü'nün veya Ulusal Sağlık Enstitüleri'nin resmi görüşlerini temsil etmek zorunda değildir. Biz yararlı yorumlar için anonim yorumcular teşekkür ederiz.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
0.45 µm syringe filterFisher scientfic09-720-004
2-MercaptoethanolSigmaM3148
Ammonium carbonateSigma-Aldrich207861-500
Bio-Lyte 3/10 AmpholyteBio-Rad163-1113
Bio-Lyte 5/8 AmpholyteBio-Rad163-1192
Compact low temperature thermostatLauda -BrinkmannRM 6TSet water cooling to 4 oC and it can be run even at 0 oC as when it passes through the Rotofor cooling core, the circulating water temperature will be around 5 or more depending on the voltage.
Coomassie Brilliant Blue RSigma-AldrichB7920
Dialysis tubing (3,500 MWCO)Spectrum Spectra/Por132112T
Gymnema plant leaf extract powder (>25% Gymnemic acids)Suan Farma, NJ USA
IncubatorLab companionSI 300R
MicroscopeLeicaDM 6B
Mini protean electrophoresisBio-Rad
pH meterMettler ToledoS20Useful to determine the pH of the Rotofor (liquid-phase IEF) fractions
RotoforBio-Rad170-2972http://www.bio-rad.com/webroot/web/pdf/lsr/literature/M1702950E.pdf (Rotofor Instruction manual for assembling the unit)
RPMI-1640 MediumHyCloneDH30255.01
Sealing tapeBio-Rad170-2960Scotch tape may also be used.
Sorvall legend micro 17 centrifugeThermo scientific75002432
TPP tissue culture plate -96 well flat bottomTPPTP92696

Referanslar

  1. Jankowska, U., et al. Optimized procedure of extraction, purification and proteomic analysis of nuclear proteins from mouse brain. Journal of Neuroscience Methods. 261, 1-9 (2016).
  2. Pergande, M. R., Cologna, S. M. Isoelectric Point Separations of Peptides and Proteins. Proteomes. 5 (1), (2017).
  3. Stoyanov, A. IEF-based multidimensional applications in proteomics: toward higher resolution. Electrophoresis. 33 (22), 3281-3290 (2012).
  4. Vesterberg, O. A. Y. . Method of Isoelectric Fractionation. , (1964).
  5. Vesterberg, O., Svensson, H. Isoelectric fractionation, analysis, and characterization of ampholytes in natural pH gradients. IV. Further studies on the resolving power in connection with separation of myoglobins. Acta Chemica Scandinavica. 20 (3), 820-834 (1966).
  6. Righetti, P. G. . Isoelectric Focusing: Theory, Methodology and Applications. , 1 (1983).
  7. Vesterberg, O. Synthesis and Isoelectric Fractionation of Carrier Ampholytes. Acta Chemica Scandinavica. 23, 2653-2666 (1969).
  8. Bier, M. Recycling isoelectric focusing and isotachophoresis. Electrophoresis. 19 (7), 1057-1063 (1998).
  9. Bier, M., Palusinski, O. A., Mosher, R. A., Saville, D. A. Electrophoresis: mathematical modeling and computer simulation. Science. 219 (4590), 1281-1287 (1983).
  10. Ayala, A., Parrado, J., Machado, A. Use of Rotofor preparative isoelectrofocusing cell in protein purification procedure. Applied Biochemistry and Biotechnology. 69 (1), 11-16 (1998).
  11. Wagner, L., et al. Isolation of dipeptidyl peptidase IV (DP 4) isoforms from porcine kidney by preparative isoelectric focusing to improve crystallization. Biological Chemistry. 392 (7), 665-677 (2011).
  12. Hosken, B. D., Li, C., Mullappally, B., Co, C., Zhang, B. Isolation and Characterization of Monoclonal Antibody Charge Variants by Free Flow Isoelectric Focusing. Analytical Chemistry. 88 (11), 5662-5669 (2016).
  13. Yu, J. J., et al. Francisella tularensis T-cell antigen identification using humanized HLA-DR4 transgenic mice. Clinical Vaccine Immunology. 17 (2), 215-222 (2010).
  14. Riyong, D., et al. Size and charge antigens of Dirofilaria immitis adult worm for IgG-ELISA diagnosis of bancroftian filariasis. Southeast Asian Journal of Tropical Medicine and Public Health. 41 (2), 285-297 (2010).
  15. Vediyappan, G., Bikandi, J., Braley, R., Chaffin, W. L. Cell surface proteins of Candida albicans: preparation of extracts and improved detection of proteins. Electrophoresis. 21 (5), 956-961 (2000).
  16. Vediyappan, G., Dumontet, V., Pelissier, F., d'Enfert, C. Gymnemic acids inhibit hyphal growth and virulence in Candida albicans. PLoS One. 8 (9), 74189 (2013).
  17. Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry. 72, 248-254 (1976).
  18. Laemmli, U. K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 227 (5259), 680-685 (1970).
  19. Riazi, S., Dover, S., Turovskiy, Y., Chikindas, M. L. Commercial ampholytes used for isoelectric focusing may interfere with bioactivity based purification of antimicrobial peptides. Journal of Microbiological Methods. 71 (1), 87-89 (2007).
  20. Kamei, K., Takano, R., Miyasaka, A., Imoto, T., Hara, S. Amino-Acid-Sequence of Sweet-Taste-Suppressing Peptide (Gurmarin) from the Leaves of Gymnema-Sylvestre. Journal of Biochemistry. 111 (1), 109-112 (1992).
  21. Craik, D. J. Chemistry. Seamless proteins tie up their loose ends. Science. 311 (5767), 1563-1564 (2006).
  22. Craik, D. J., Daly, N. L., Bond, T., Waine, C. Plant cyclotides: A unique family of cyclic and knotted proteins that defines the cyclic cystine knot structural motif. Journal of Molecular Biology. 294 (5), 1327-1336 (1999).
  23. Stoecklin, W. Chemistry and physiological properties of gymnemic acid, the antisaccharine principle of the leaves of Gymnema sylvestre. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 17 (4), 704-708 (1969).
  24. Liu, H. M., Kiuchi, F., Tsuda, Y. Isolation and structure elucidation of gymnemic acids, antisweet principles of Gymnema sylvestre. Chemical & Pharmaceutical Bulletin (Tokyo). 40 (6), 1366-1375 (1992).
  25. Veerapandian, R., Vediyappan, G. Gymnemic Acids Inhibit Adhesive Nanofibrillar Mediated Streptococcus gordonii-Candida albicans Mono-Species and Dual-Species Biofilms. Frontiers in Microbiology. 10, 2328 (2019).
  26. Chaffin, W. L. Candida albicans cell wall proteins. Microbiology and Molecular Biology Reviews. 72 (3), 495-544 (2008).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

mm noloji ve EnfeksiyonSay 160Candida albicansk k molek llerGurmarin PeptidGymnema sylvestredo al r n ar tmabiyomolek ller ay rmaizoelektrik odaklama IEFince tabaka kromatografi

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır