JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Sonbahar ordu kurdunda başarılı germline dönüşümü, Spodoptera frugiperda, hiperaktif piggyBac transposase mRNA kullanılarak elde edildi.

Özet

Genetik kargonun transpoze edilebilir elementler kullanılarak böcek genomlarına istikrarlı bir şekilde yerleştirilmesi, fonksiyonel genomik çalışmalar ve genetik haşere yönetim stratejileri geliştirmek için güçlü bir araçtır. Böcek dönüşümünde en çok kullanılan transpoze edilebilir element piggyBacve piggyBactabanlı germline dönüşümü model böceklerde başarıyla gerçekleştirildi. Bununla birlikte, bu teknolojiyi tarım zararlılarını içeren model olmayan böceklerde çalıştırmak hala zordur. Bu makale, hiperaktif piggyBac transposase (hyPBase) kullanılarak küresel bir tarım zararlısının, sonbahar ordu kurdunun (FAW), Spodoptera frugiperda'nıngermline dönüşümini rapor ediyor.

Bu çalışmada hyPBase mRNA embriyo mikroenjeksiyonlarında yardımcı plazmid yerine üretilmiş ve kullanılmıştır. Bu değişiklik, transgenik FAW'ın başarılı bir şekilde üretilmesine yol açtı. Ayrıca transgenik hayvanların taranması, transgene yerleştirmenin PCR tabanlı hızlı tespiti ve entegrasyon sahasının termal asimetrik interlaced PCR (TAIL-PCR) tabanlı belirlenmesi yöntemleri de açıklanmıştır. Bu nedenle, bu makale FAW ve diğer lepidopteran böceklerde domuzbactabanlı transgenez kolaylaştıracak transgenik FAW üretmek için bir protokol sürmektedir.

Giriş

Sonbahar ordu kurdu (FAW), Spodoptera frugiperda, Amerika'nın tropikal ve subtropikal bölgelerine özgüdür. Şu anda, bu dünya çapında 100'den fazla ülkede yıkıcı bir böcek otobur1. FAW larvaları, bazı önemli temel gıda bitkileri de dahil olmak üzere 350'den fazla konak bitki ile beslenir2. FAW yetişkinlerinin güçlü göç yeteneği, Amerika'dan diğer yerlere hızla yayılmasına katkıda bulunur1,2. Sonuç olarak, bu böcek şimdi uluslararası gıda güvenliğini tehdit ediyor. Yeni teknolojilerin uygulanması FAW'da ileri çalışmaları kolaylaştırabilir ve bu zararlıyı yönetmek için yeni stratejiler sağlayabilir.

Böcek germline dönüşümü gen fonksiyonunu incelemek ve genetik kontrolde kullanılmak üzere transgenik böcekler üretmek için kullanılmıştır3,4. Böceklerde genetik dönüşümü sağlamak için kullanılan çeşitli yöntemler arasında, piggyBac element tabanlı yöntem en çok kullanılan yöntemdir5. Bununla birlikte, düşük transpozisyon oranı nedeniyle, model olmayan böceklerde transgenez yapmak hala zordur. Son zamanlarda, piggyBac transposase 'nin (hyPBase) hiperaktif bir sürümü geliştirildi6,7. Germline dönüşümü FAW'da yakın zamanda elde edildi8Lepidopteran böceklerinde hyPBase'i kullanan ilk rapordur. Bu raporda, transgenik FAW oluşturmada hyPBase mRNA kullanımı hakkında ayrıntılı bilgi açıklanmıştır. Burada açıklanan yöntem, diğer lepidopteran böceklerinin dönüşümini sağlamak için uygulanabilir.

Protokol

1. hyPBase mRNA'nın in vitro sentezi

NOT: HyPBase dizisinin tam kodlama dizisi sentezlendi ve bir pTD1-Cas9 vektörüne eklendi (bkz. Malzeme Tablosu)pTD1-hyPBase yapısı üretmek için, hyPBase ifade kaseti içeren, T7 promotörü: polyhedrin-5' UTR: hyPBase: polihedrin-3' UTR: poli (A). pTD1-hyPBase yapının tam sırası Tamamlayıcı Malzeme'de sağlanmıştır.

  1. In vitro sentez için şablonun hazırlanması
    1. İleri astar, 5'- atgcggtgtgaaataccgcagatgcg-3' ve ters astar 5'- tagaggccccaaggttatgctag-3', yüksek kaliteli polimeraz ve şablon olarak pTD1-hyPBase plasmid kullanarak hyPBase ifade kasetini yükseltmek için bir PCR reaksiyonu gerçekleştirin.
      NOT: PCR reaksiyonu (50 μL'lik son hacim) 5,0 μL 10x Reaksiyon tamponu içerir, 4,0 μL 10 mM deoksinükleozit trifosfat (dNTP), 1,0 μL plazmid (50 μg/μL), 1,0 μL yüksek kaliteli polimeraz, 10 μM ileri ve ters astarların her biri 1,0 μL, ve 33 μL çekirdeksiz su. Ayarlar şu şekildeydi: 3 dakika boyunca 95 °C'lik bir başlangıç inkübasyonu, ardından 10 s için 98 °C'lik 35 döngü, 15 s için 60 °C ve 2 dakika için 68 °C.
    2. PCR ürününü taze Tris-asetat-etilenediamin tetraasetik asit (TAE) tamponunda 120 V'ta %1 agarose jel üzerinde 30 dakika boyunca kontrol edin ve jel ekstraksiyon kiti ile ürünü arındırın.
      NOT: PCR ürün arıtma kitini kullanmayın. pTD1-hyPBase plazmidinin bir iz miktarı bile in vitro sentezin verimliliğini önemli ölçüde azaltır.
  2. Ticari bir kit kullanarak hyPBase mRNA'nın in vitro sentezi
    1. Donmuş reaktifleri tamamen çözün, enzimi ve 2x NTP/CAP çözeltisini buzda tutun ve çözülmüş 10x Reaksiyon tamponu oda sıcaklığında bırakın.
    2. Aşağıdaki bileşenleri ekleyerek reaksiyonun oda sıcaklığında bir araya getirilmiştir: 2x NTP/CAP çözeltisi: 10 μL; 10x Reaksiyon tamponu: 2 μL; Şablon DNA'sı: 0.1-0.2 μg; Enzim karışımı: 2 μL; 20 μL'ye kadar nükleaz içermeyen su.
    3. Karışımı hafifçe yukarı ve aşağı pipetleyarak reaktifleri iyice karıştırın ve 2-4 saat boyunca 37 °C'de kuluçkaya yatırın.
  3. Sentezlenmiş mRNA'nın lityum klorür çökeltimi ile geri kazanımı
    1. 30 μL LiCl Çökeltme Çözeltisi ekleyin, tüpü hafifçe vurarak iyice karıştırın ve ardından ≥ 30 dakika boyunca -20 ° C'de tutun.
    2. Maksimum hızda 15 dakika boyunca 4 °C'de santrifüj ve süpernatantı dikkatlice çıkarın.
    3. Peletı bir kez% 70 etanol 1 mL ile yıkayın, yeniden santrifüjlayın ve üstnatantı dikkatlice çıkarın.
    4. Peletin oda sıcaklığında 1-2 dakika kurutun ve ardından peletin 20-40 μL çekirdeksiz su ile yeniden depolayın.
    5. 1 μL mRNA çözeltisi ile 9 μL çekirdeksiz su ile seyreltin. mRNA konsantrasyonu belirlemek için 2 μL alın ve 40 dakika boyunca taze TAE tamponunda 100 V'ta% 1 agarose jel üzerinde mRNA kalitesini kontrol etmek için 8 μL kullanın.
    6. mRNA çözeltisini aliquotlayın ve bir yıla kadar -70 °C'de dondurulmuş olarak saklayın.
      NOT: mRNA peletini tamamen kurutmayın; suda eritmek daha zor olabilir.

2. Mikroenjeksiyon

  1. Yumurta koleksiyonu
    1. 15 cm x 15 cm x 10 cm'lik bir kutuya 12 erkek pupa ve 12 dişi pupa yerleştirin. Kutuyu kağıt havluyla kaplayın. Yetişkinleri beslemek için kutuya% 10 sakkaroz çözeltisi yerleştirin.
    2. 2. gün eklosyon sonrası, yetişkinleri bir gecede yoğun ışığa maruz bırakın.
    3. 3. gün eklosyon sonrası, yetişkinleri adım 2.1.2'den karanlık bir yere aktarın. Yumurtlamadan sonra embriyoları 2 saat içinde toplayın.
    4. Buz üzerinde bir Petri kabında tutulan taze yumurtalarla kağıt havlu parçasına damla su ekleyin. Yumurtaları ince bir fırça ile hafifçe cam bir kaydırağa aktarın ve cam bir kaydırağa tek tek hizalayın. Mikroenjeksiyondan önce cam slaytları hizalanmış yumurtalarla buz üzerinde tutun.
  2. Mikroenjeksiyon kurulumu
    1. Transgenik gelişmiş yeşil floresan protein (EGFP) ifade edici plazmid (200 ng/μL), pBac: hr5ie1-EGFP-SV40, hyPBase mRNA (200 ng/μL) karışımı enjekte edin ve otomatik mikroenjektörün kompanzasyon basıncını kullanarak yumurtalara steril damıtılmış su enjekte edin (bkz. Malzeme Tablosu).
    2. Enjekte edilen yumurtaları yumurtadan çıkana kadar 27 ± 1 °C, 60 ± % 10 bağıl nemde tutun.
    3. Yumurtadan çıkan larvaları yapay bir diyetle besleyin ve her larvayı erken 3rd başlangıç aşamasında (~ 6 mm uzunluğunda ve vücut rengi siyaha döner) küçük bir kaba aktarın.

3. Floresan tarama ve genetik geçiş

  1. Pupaları toplayın ve ~150 dişi pupa ve ~150 erkek pupayı 35 cm x 35 cm x 35 cm kafese yerleştirin. Yumurtaları toplamak için kafese birkaç parça kağıt havlu (~30 cm x 15 cm) asın.
  2. Kağıt havluları günlük yumurtalarla toplayın ve yumurtaları yumurtadan çıkana kadar 27 ± 1 °C, 60 ±% 10 bağıl nemde tutun.
  3. Yenidoğan larvalarını hareketsiz hale getirmek için 5 dakika boyunca 4 °C'de tutun ve ardından buz gibi bir tabağa aktarın.
  4. Hareketsiz yenidoğan larvalarını floresan stereomikroskop altında tarayın. EGFP pozitif yenidoğanları seçin, 27 ± 1 ° C'de ~ 2 hafta içinde pupal aşamasına yükseltin ve ventral karın segmentlerindeki fenotip farklılıklarına göre cinsiyete göre ayırın.
    NOT: Dişi pupa sekizinci karın segmentinde yarık benzeri bir genital açıklığa ve dokuzuncu ve onuncu segmentlerin sefalik kenar boşlukları genital açıklığa doğru kıvrılır. Erkek pupanın genital açıklığı dokuzuncu karın segmentinde hafif bir yüksekliğe sahiptir.
  5. EGFP pozitif pupaları ve karşı cinsin vahşi tip pupalarını bir erkeğe yerleştirin: bir kafese 1:1 kadın oranı. Sib- sonraki nesilleri üretmek için EGFP ifade yetişkinleri çapraz.

4. Transgenik yerleştirmenin PCR tespiti

  1. Üreticinin talimatlarını takip eden herhangi bir ticari genomik DNA ekstraksiyon kiti kullanarak vahşi tip ve EGFP pozitif bireysel larvalardan genomik DNA çıkarın.
  2. Genomik DNA'yı şablon olarak kullanarak pcr reaksiyoni gerçekleştirin; ie1 organizatör bölgesinde bulunan 5'- acgtacgctcctcggttccgttcc-3' ileri astar; ve dönüşüm vektörün EGFP bölgesinde bulunan 5'- aagcactgcacgccgtaggtcag-3' ters astar.
  3. Her PCR reaksiyonu (40 μL'lik son hacim) 20 μL polimeraz karışımı, 1,0 μL genomik DNA (40 μg/μL), 10 μM ileri ve ters astarın her biri 1,0 μL ve 17 μL çekirdeksiz su içerecek şekilde ayarlayın. Aşağıdaki ayarları kullanın: 3 dakika boyunca 95 °C'lik bir başlangıç inkübasyonu, ardından 20 s için 95 °C,20 s için 56 °C ve 40 s ayar için 68 °C'lik 35 döngü.
  4. PCR ürünlerini 30 dakika boyunca 120 V'te% 1 agarose jel üzerinde kontrol edin.

5. Transgenik ekleme bölgesinin belirlenmesi

  1. EGFP pozitif böceklerde transgene eklemenin entegrasyon alanını belirlemek için şablon olarak genomik DNA kullanarak yüksek verimli TAIL-PCR gerçekleştirin.
    1. PCR reaksiyonlarını başka bir yerde açıklanan adımları izleyerekgerçekleştirin 9.
      1. Üç astar kullanın, P1: 5'-atcagtgacacttaccgcattgacaagcacgcc-3', P2: 5'-tcacgggagctccaagcggcgactg-3', ve P3: 5'-atgtcctaaatgcagcgacggattcgcgct-3', piggyBac vektörüne özgü, 3 tur PCR reaksiyonunda.
  2. Tümleştirme sitesini belirlemek için son PCR ürünlerini sıralayın.

Sonuçlar

HyPBase içeren T7 promotörünün ifadesi için bir yapı: polihedrin-5'UTR: hyPBase: polihedrin-3'UTR: poli (A) sinyali oluşturuldu (Şekil 1A) ve hyPBase mRNA in vitro sentezlemek için ~2.2 kb PCR parçası olarak yükseltildi (Şekil 1B). Daha sonra hyPBase mRNA üretildi ve agarose jel elektroforezise tabi tutuldu. Beklenen boyuttaki mRNA (~1,1 kb bant) %1 agarose jel üzerinde tespit edildi (Şekil 1C).

Tartışmalar

Transpozisyon oranının düşük olması ve transgenik bileşenleri taze embriyolara ulaştırmanın zorluğu, özellikle sipariş olan Lepidoptera'dan gelen birçok model olmayan böcekte germline dönüşümünün başarısını sınırlar. Germline dönüşüm oranını artırmak için, en yaygın kullanılan piggyBac transposase'nin (hyPBase) hiperaktif bir sürümü geliştirildi7,10. Bugüne kadar, lepidopteran böceklerde başarılı germline dö...

Açıklamalar

Yazarlar rakip finansal çıkarları olmadığını beyan ederler.

Teşekkürler

Rapor edilen araştırma Ulusal Bilim Vakfı I/UCRC tarafından desteklenmektedir, Eklembacaklı Yönetim Teknolojileri Merkezi, Grant No IIP-1821936 ve endüstri ortakları tarafından, Tarım ve Gıda Araştırma Girişimi Rekabetçi Hibe No. 2019-67013-29351 ve Ulusal Gıda ve Tarım Enstitüsü, ABD Tarım Bakanlığı (2019-67013-29351 ve 2353057000).

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
1.5" Dental Cotton RollsPlastCare USA8542025591REARING
1 oz Souffle Cup LidsDARTPL1N
1 oz Souffle CupsDARTP100NREARING
48 oz Plastic Deli ContainersGenpackAD48REARING
Add-on Filter Set (Green)NightSea LLCSFA-BLFS-GRSCREENING
Borosilicate GlassSutter InstrumentsBF100-50-10INJECTION
Borosilicate GlassSUTTER INSTRUMENTBF-100-50-10
Dissecting ScopeNikonSMZ745TSCREENING
Featherweight ForcepsBioQuip4750REARING
Gutter GuardThermWell ProductsVX620REARING
Inverted MicroscopeOlympusIX71INJECTION
MicroinjectorNarishigeIM-300INJECTION
Micropipette PullerSutter InstrumentsP-1000INJECTION
Microscope SlidesVWR16004-22INJECTION
NightSea Full SystemNightSea LLCSFA-RB-DIMSCREENING
Nitrogen GasAWG/Scott-GrossNI 225INJECTION
Paper TowelsBounty 43217-45074REARING
Spodoptera frugiperda Artificial DietSouthland Products, IncN/A [Request Species/Quantity]REARING
Spodoptera frugiperda EggsBenzon Research, IncN/A [Request Species/Quantity]REARING
Taq MasterMixpolymerase mixture

Referanslar

  1. Gui, F., et al. Genomic and transcriptomic analysis unveils population evolution and development of pesticide resistance in fall armyworm Spodoptera frugiperda. Protein Cell. , (2020).
  2. Montezano, D. G., et al. Host plants of Spodoptera frugiperda (Lepidoptera: Noctuidae) in the Americas. African Entomology. 26 (2), 286-300 (2018).
  3. Li, Z., et al. Ectopic expression of ecdysone oxidase impairs tissue degeneration in Bombyx mori. Proceedings, Biological Sciences. 282 (1809), 20150513 (2015).
  4. Ogaugwu, C. E., Schetelig, M. F., Wimmer, E. A. Transgenic sexing system for Ceratitis capitata (Diptera: Tephritidae) based on female-specific embryonic lethality. Insect Biochemistry and Molecular Biology. 43 (1), 1-8 (2013).
  5. Gregory, M., Alphey, L., Morrison, N. I., Shimeld, S. M. Insect transformation with piggyBac: getting the number of injections just right. Insect Molecular Biology. 25 (3), 259-271 (2016).
  6. Otte, M., et al. Improving genetic transformation rates in honeybees. Scientific Reports. 8 (1), 16534 (2018).
  7. Eckermann, K. N., et al. Hyperactive piggyBac transposase improves transformation efficiency in diverse insect species. Insect Biochemistry and Molecular Biology. 98, 16-24 (2018).
  8. Chen, X., Koo, J., Gurusamy, D., Mogilicherla, K., Palli, S. R. Caenorhabditis elegans systemic RNA interference defective protein 1 enhances RNAi efficiency in a lepidopteran insect, the fall armyworm, in a tissue-specific manner. RNA Biology. , 1-9 (2020).
  9. Liu, Y. G., Chen, Y. High-efficiency thermal asymmetric interlaced PCR for amplification of unknown flanking sequences. Biotechniques. 43 (5), 649-650 (2007).
  10. Yusa, K., Zhou, L., Li, M. A., Bradley, A., Craig, N. L. A hyperactive piggyBac transposase for mammalian applications. Proceedings of the National Academy of Sciences of the Unites States of America. 108 (4), 1531-1536 (2011).
  11. Xu, H., O'Brochta, D. A. Advanced technologies for genetically manipulating the silkworm Bombyx mori, a model Lepidopteran insect. Proceedings, Biological Sciences. 282 (1810), 20150487 (2015).
  12. Wu, S. C. -. Y., et al. piggyBac is a flexible and highly active transposon as compared to sleeping beauty, Tol2, and Mos1 in mammalian cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the Unites States of America. 103 (41), 15008-15013 (2006).
  13. Tamura, T., et al. Germline transformation of the silkworm Bombyx mori L. using a piggyBac transposon-derived vector. Nature Biotechnology. 18 (1), 81-84 (2000).
  14. Handler, A. M., Harrell, R. A. Germline transformation of Drosophila melanogaster with the piggyBac transposon vector. Insect Molecular Biology. 8 (4), 449-457 (1999).
  15. Dreyfus, M., Régnier, P. The poly (A) tail of mRNAs: bodyguard in eukaryotes, scavenger in bacteria. Cell. 111 (5), 611-613 (2002).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

BiyolojiSay 175Transgenezhiperaktif piggyBac transposazmRNAembriyo mikroenjeksiyonuSpodoptera frugiperda

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır