Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Lipid yüklü hepatositler karaciğer rejenerasyonuna özgüdür, ancak genellikle yoğunluk gradyan santrifüjleme ile kaybolurlar. Burada, steatotik hepatositleri tutan ve farelerde parsiyel hepatektomi sonrası rejenere hepatositlerin temsili popülasyonlarını veren optimize edilmiş bir hücre izolasyon protokolü sunuyoruz.

Özet

Parsiyel hepatektomi, farelerde karaciğer rejenerasyonunu araştırmak için yaygın olarak kullanılmaktadır, ancak aşağı akış tek hücreli uygulamalar için yüksek verimli hepatositlerin izolasyonu zordur. Farelerde normal karaciğer rejenerasyonunun ilk 2 günü boyunca rejenere hepatositler içinde belirgin bir lipit birikimi gözlenir. Geçici rejenerasyonla ilişkili steatoz (TRAS) olarak adlandırılan bu durum geçicidir ancak majör proliferatif faz ile kısmen örtüşür. Yoğunluk-gradyan saflaştırma, primer hepatositlerin izolasyonu için mevcut protokollerin çoğunun bel kemiğidir. Gradyan saflaştırma, hücrelerin yoğunluğuna ve boyutuna dayandığından, steatotik olmayanları steatotik hepatosit popülasyonlarından ayırır. Bu nedenle, yağlı hepatositler sıklıkla kaybolur ve temsili olmayan hepatosit fraksiyonları ortaya çıkar.

Sunulan protokol, lipid içeriğinden bağımsız olarak rejenere hepatositlerin in vivo izolasyonu için kolay ve güvenilir bir yöntem tanımlamaktadır. Erkek C57BL/6 farelerden alınan hepatositler, hepatektomiden 24-48 saat sonra klasik iki aşamalı kollajenaz perfüzyon yaklaşımı ile izole edilir. Standart bir peristaltik pompa, portal venden çıkışlı retrograd bir perfüzyon tekniği kullanarak, kateterize inferior vena kava yoluyla ısıtılmış çözeltileri kalıntıya yönlendirir. Hepatositler, Glisson kapsülünden salınmaları için kollajenaz ile ayrışır. Yıkama ve dikkatli santrifüjlemeden sonra, hepatositler herhangi bir aşağı akış analizi için kullanılabilir. Sonuç olarak, bu yazıda farelerde parsiyel hepatektomi sonrası temsili bir rejenere hepatosit popülasyonunun izolasyonu için basit ve tekrarlanabilir bir teknik anlatılmaktadır. Yöntem ayrıca yağlı karaciğer hastalığının çalışmasına da yardımcı olabilir.

Giriş

Karaciğer, büyük doku kaybından sonra bile kendini yenileyebilir. Bu eşsiz rejeneratif kapasite, ilk olarak 1931'de Higgins ve Anderson tarafından sıçanlarda tanımlanan kısmi (% 70) hepatektominin deneysel modeli ile açıkça gösterilmiştir1. Bu modelde, karaciğerin% 70'i daha büyük karaciğer loblarını keserek hayvanlardan cerrahi olarak çıkarılır. Kalan loblar daha sonra orijinal karaciğer mimarisinin restorasyonu olmadan da olsa, ameliyattan yaklaşık 1 hafta sonra orijinal karaciğer kütlesini geri yüklemek için telafi edici hipertrofi yoluyla büyür 2,3. Karaciğer kalıntısının iyileşmek ....

Protokol

Tüm hayvan deneyleri İsviçre Federal Hayvan Yönetmeliklerine uygundur ve Zürih Veterinerlik Ofisi (n° 007/2017, 156/2019) tarafından onaylanmıştır. 10-12 haftalık erkek C57BL / 6 fareleri, yiyecek ve suya serbest erişimi olan 12 saatlik bir gündüz / gece döngüsünde tutuldu. Her deney grubu altı ila sekiz hayvandan oluşuyordu. Bu protokolde kullanılan tüm malzemeler, ekipmanlar ve reaktiflerle ilgili ayrıntılar için Malzeme Tablosu'na bakın.

1. Farelerde parsiyel hepatektomi

  1. Standart hepatektomi için (%70), sol lateral lobu, medyan lobun sağ kısmını ve median lobun sol kısmını ligate ve rezeke edin....

Sonuçlar

RAS, hepatektomi sonrası 16 saatte zirve yapar ve standart hepatektomiden 32-48 saat sonra yavaş yavaş kaybolur, ancak genişletilmiş hepatektomiden sonra 48 saatin üzerinde devam eder. Makroskopik olarak, TRAS karaciğer kalıntısının soluk bir teni olarak kolayca görülebilir (Şekil 1F) ve ameliyattan sonra 16 saat ile 48 saat arasında hepatetomize farelerde görülebilir.

Tahmini nihai verim, farelerde %70 hepatektomi sonrası 10-15 × 10 6 hepatosit.......

Tartışmalar

Yayınlanan protokol, tek hücreli aşağı akış analizleri veya FACS sıralamayı takiben hücrelerin toplu analizi için yüksek miktarda normal ve steatotik murin hepatositlerini izole etmek için güvenilir ve basit bir yöntem sağlar. Yoğunluk gradyanı saflaştırmaya göre belirgin avantaj, hücresel lipit içeriğinin hepatositlerin etkili verimi üzerinde esasen hiçbir etkisi olmamasıdır. Böylece, steatotik hepatositlerin fraksiyonu korunacak ve aşağı akış analizlerine dahil edilecektir. Bu sadece s.......

Açıklamalar

Yazarlar, rakip çıkarları olmadığını beyan ederler.

Teşekkürler

Bu çalışma İsviçre Ulusal Fonud (proje hibesi 310030_189262) tarafından desteklenmiştir.

....

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Reagents
Alexa Fluor 488 Zombie greenBioLegend423111Amine-reactive viability dye
Attane Isoflurane ad us. vet. 99.9%Provet AGQN01AB06CAUTION: needs ventilation
EDTA solutionSigma-AldrichE8008-100ML-
EthanolSigma-AldrichV001229Dilute with water to 70%
Fetal bovine serum (FCS)GibcoA5256701-
Hanks' Balanced Salt Solution (HBSS), Ca2+, Mg2+, phenol redSigma-AldrichH9269-6x600MLFor digestion/preservation
Hanks' Balanced Salt solution (HBSS), w/o Ca2+, w/o Mg2+, no phenol redSigma-AldrichH6648-6x500MLFor perfusion buffer
HEPES solution, 1 MSigma-Aldrich83264-100ML-F-
Histoacryl tissue adhesive (butyl-2-cyanoacrylate)B. Braun1050052For stabilization of cannulation site
Hoechst 33258 Staining Dye SolutionAbcamab228550-
Liberase Research GradeRoche5401119001Lyophilized collagenases I/II
NaCl 0.9% 500 mL EcotainerB. Braun123-
Paralube Vet OintmentDechra17033-211-38-
Phosphate buffered saline (PBS)GibcoA1286301-
Sudan IV – Lipid stainingSigma-AldrichV001423-
Temgesic (Buprenorphine hydrochloride), Solution for Injection 0.3 mg/mLIndivior Europe Ltd.345928Narcotics. Store securely.
Trypan blue, 0.4%, sterile-filteredSigma-AldrichT8154For cell counting
Williams’ Medium ESigma-AldrichW4128-500ML-
Materials
25 mL serological pipette, Greiner CellstarMerckP7865-
50 mL Falcon tubesTPP--
BD Neoflon, Pro IV Catheter 26 GBD Falcon391349-
Cell scraper, rotating blade width 25 mmTPP99004-
Falcon Cell Strainer 100 µm NylonBD Falcon352360-
Fenestrated sterile surgical drape--Reusable cloth material
Filling nozzle for size 16# tubing (ID 3.1 mm)DriftonFILLINGNOZZLE#16To go into the tubes
Flow cytometry tubes, 5 mLBD Falcon352008-
Male Luer to Barb, Tubing ID 3.2 mmDriftonLM41Connection tube to syringe
Petri dishes, 96 x 21 mmTPP93100-
Prolene 5-0Ethicon8614HTo retract the sternum
Prolene 6-0Ethicon8695HFor skin suture
Prolene 8-0EthiconEH7470ELigature gall bladder
Tube 16#, WT 1.6 mm, ID 3.2 mm, OD 6.4 mmDriftonSC0374TPerfusion tube
Equipment
BD LSRFortessa Cell Analyzer Flow CytometerBD--
Isis rodent shaverAesculapGT421-
Isofluran stationProvet--
Low-speed centrifuge – Scanspeed 416Labogene--
Neubauer-improved counting chamberMarienfeld--
Oxygen concentrator – EverFloPhilips 10200070 – 5 L/min
Pipetboy – Pipettor Turbo-FixTPP94700-
Shenchen perfusion pump – YZ1515xShenchenYZ1515x-
Surgical microscope – SZX9Olympus--
ThermoLux warming matThermo Lux--
Vortex Genie 2, 2700 UpMNeoLab7-0092-
Water bath – Precision GP 02Thermo scientific-Adjust to 42 °C

Referanslar

  1. Higgins, G., Anderson, R. Experimental pathology of liver. I. Restoration of liver of white rat following partial surgical removal. Archives of Pathology & Laboratory Medicine. 12, 186-202 (1931).
  2. Taub, R.

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

T pSay 190

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır