JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Bu protokol, endometriyal kanserin indüklenebilir bir fare modelinde, brüt ve histolojik değişikliklerle korelasyonlu ultrason görüntüleme kullanarak uterusta morfolojik değişikliklerin zaman içindeki ilerlemesini izlemek için bir yöntem açıklamaktadır.

Özet

Rahim kanserleri, bu modellerde kullanım kolaylığı ve genetik manipülasyon nedeniyle farelerde incelenebilir. Bununla birlikte, bu çalışmalar genellikle farklı kohortlarda birden fazla zaman noktasında ötenazi yapılan hayvanlarda ölüm sonrası patolojiyi değerlendirmekle sınırlıdır, bu da bir çalışma için gereken fare sayısını arttırır. Uzunlamasına çalışmalarda fareleri görüntülemek, bireysel hayvanlarda hastalığın ilerlemesini izleyebilir ve ihtiyaç duyulan fare sayısını azaltabilir. Ultrason teknolojisindeki ilerlemeler, dokulardaki mikrometre seviyesindeki değişikliklerin tespit edilmesini sağlamıştır. Ultrason, yumurtalıklarda folikül olgunlaşmasını ve ksenogreft büyümesini incelemek için kullanılmıştır, ancak fare uterusundaki morfolojik değişikliklere uygulanmamıştır. Bu protokol, indüklenmiş endometriyal kanser fare modelinde patolojinin in vivo görüntüleme karşılaştırmaları ile yan yana gelmesini inceler. Ultrason ile gözlenen özellikler, brüt patoloji ve histoloji tarafından görülen değişim derecesi ile tutarlıydı. Ultrasonografinin, gözlenen patolojinin oldukça prediktif olduğu ve ultrasonografinin farelerde kanser gibi uterus hastalıklarının uzunlamasına çalışmalarına dahil edilmesini desteklediği bulunmuştur.

Giriş

Fareler üreme bozuklukları için en önemli hayvan modellerinden biri olmaya devam etmektedir 1,2,3. Yumurtalık ve rahim kanserlerinin genetiği değiştirilmiş veya indüklenmiş birkaç kemirgen modeli vardır. Bu çalışmalar tipik olarak, morfolojik ve patolojik değişikliklerdeki uzunlamasına eğilimleri yakalamak için farklı zaman noktalarında ötenazi yapılan çoklu kohortlara dayanmaktadır. Bu, tek bir farede kanser gelişimi hakkında sürekli veri elde etme yeteneğini önler. Ek olarak, bireysel fare hastalığı ilerleme durumunu bilmeden, müdahale çalışmaları, belirli bir hayvanda ilerlemenin tespiti için bireysel eşiklerden ziyade, önceden belirlenmiş zaman noktalarına ve önceki kohortların ortalama bulgularına dayanmaktadır 4,5. Bu nedenle, canlı hayvanlarda uzunlamasına değerlendirmeye izin veren görüntüleme yaklaşımları, yeni ilaçların veya bileşiklerin test edilmesi için preklinik modelleri kolaylaştırmak ve patobiyolojinin anlaşılmasını hızlandırmak ve aynı zamanda titizliği ve tekrarlanabilirliği arttırmak için gereklidir6.

Ultrason görüntüleme (US), fare rahim kanseri progresyonunun uzunlamasına izlenmesi için çekici bir yöntemdir, çünkü diğer görüntüleme yöntemlerine kıyasla nispeten kolay ve ucuzdur, gerçekleştirilmesi kolaydır ve dikkate değer bir çözünürlüğe sahip olabilir 6,7. Bu non-invaziv modalite, uyanık farelerde veya 5-10 dakikalık bir muayene kullanarak kısa sedasyon altındaki farelerde mikron ölçeğindeki özellikleri yakalayabilir. Ultrason mikroskopisi, fare yumurtalık folikülü gelişimini ölçmek için bir yöntem olarak doğrulanmıştır 8 ve implante edilmiş veya indüklenmiş neoplazinin büyümesi 9,10,11. Yüksek frekanslı US ayrıca perkütan intrauterin enjeksiyonlar12 ve östrus döngüsü13 boyunca sıçan uterus değişimini gözlemlemek için de kullanılmıştır. Yüksek frekanslı US, standartlaştırılmış konum ve basınçla yüksek çözünürlüklü görüntüler yakalamak için dönüştürücüyü/probu tutmak için bir ray sistemi kullanan özel sabit platformlarda tutulan farelerle kullanılabilir; ancak, bu ekipman tüm kurumlarda mevcut değildir. El tipi transdüser tarama yöntemleri, daha az özel ekipmanla benimsenebilir ve farelerde hem klinik teşhis hem de araştırma uygulamaları için kullanılabilir.

Soru, elde tutulan, yüksek frekanslı problarla ABD görüntülemenin birkaç hafta boyunca uterus kanseri gelişimini izlemek için kullanılıp kullanılamayacağı sorusudur. Bağırsaklara benzer şekilde, kemirgen uterusu, karın içinde çok hareketli olan ve çoklu doku derinlikleri boyunca bitişik olan ince duvarlı, ince bir yapıdır ve görüntülemeyi böbrekler gibi nispeten hareketsiz organlardan daha zor hale getirir. Bu çalışma, ultrason ve histopatoloji ile gözlenen dokular arasındaki korelasyonu belirlemeyi, fare rahminin yerini belirlemek için işaretleri tanımlamayı ve endometriyal kanserin uzunlamasına değerlendirmesinin fizibilitesini belirlemeyi amaçlamıştır. Bu çalışma, US tarafından görüntülenen uterusun görünümü ile histopatoloji arasında kalitatif bir yazışma olduğunu gösteren verilerin yanı sıra farelerin birkaç hafta boyunca seri görüntülemesini sunmaktadır. Bu sonuçlar, elde tutulan US'nin farelerde endometriyal kanser gelişimini izlemek için kullanılabileceğini ve böylece özel ekipmana ihtiyaç duymadan rahim kanserini incelemek için bireysel fare uzunlamasına verilerini toplamak için bir fırsat yarattığını göstermektedir.

Protokol

Fareleri içeren tüm prosedürler ve deneyler, Johns Hopkins Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından onaylanan protokollere göre gerçekleştirildi. Tüm prosedürler için, eldivenler ve tek kullanımlık izolasyon önlükleri de dahil olmak üzere uygun KKD giyildi. Kullanımdan hemen sonra kırmızı kutu keskin kaplara uygun şekilde atılan keskinleri kullanırken önlemler alındı. Bu protokolde kullanılan tüm malzemeler ve ekipmanlar hakkında ayrıntılar için Malzeme Tablosuna bakınız.

1. Doksisiklin ile iPAD (indüklenebilir Pten, Arid1a çift delesyon) farelerde endometriyal kanserin indüksiyonu

  1. Daha önce tarif edildiği gibi karışık bir genetik arka plan (129S, BALB / C, C57BL / 6) üzerinde 10 Pax8-Cre-Arid1a-Pten çift delesyonlu (iPAD) transgenik fareyi (Şekil 1) koruyun14.
  2. Doksisiklin tedavisinden önce her farenin yumurtalıklarının, yumurtalıklarının ve uteruslarının temel ultrason (2D) görüntülerini toplayın.
  3. Gen delesyonunu indüklemek için dişi iPAD farelerine 7-8 haftalıktan başlayarak en az 2 hafta boyunca sadece doksisiklin içeren fare chow diyetleri (625 mg / kg yemde doksisiklin hiplat) sağlayın.

2. Ekipman kurulumu

  1. Isıtma yastığını açın ve temiz bir emici ped ile örtün (hedef sıcaklık: 38 ° C).
  2. İzofluran buharlaştırıcının veO2 tankının yeterince doldurulduğunu onaylayın. İçeriği düşükse yeniden doldurun ve değiştirin.
  3. İndüksiyon odasını, burun konisini ve süpürme sistemini buharlaştırıcıya bağlayın.
  4. Ultrason makinesini kurun.
    1. Rahim veya yumurtalık görüntülemesi için sırasıyla 32-56 MHz veya 70 MHz'e kadar aralıkta bir dönüştürücü (prob) seçin.
    2. Probu takın ve makineyi açın.
    3. Sistem önyüklendikten sonra, kullanıcı kimlik bilgileriyle oturum açmak ve giriş ekranına erişmek için kontrol panelini kullanın.
    4. Ana ekrandan, Uygulamalar sekmesine gidin ve Fare (küçük) karın modunu seçin.
    5. Ana ekrana dönmek için Tara'ya tıklayın ve canlı bir görüntünün görüntülenmesini bekleyin.
    6. Sol araç çubuğundaki seçeneklerden B-Modu'nu seçin.
    7. Görüntü kazancı ve derinliği gibi görüntü iyileştirmeye yönelik ek araçları görüntülemek veya saniyedeki kare sayısı gibi klip alma ayarlarını yapmak için Diğer Denetimler'e tıklayın.
    8. Görüntü ayarları seçildikten sonra, Tara'ya tıklayarak ana ekrana dönün.
  5. O2 tankını açın, akışı indüksiyon odasına yönlendirin ve akış hızını 1 L / dak olarak ayarlayın.

3. Epilasyon da dahil olmak üzere ultrason taraması için farelerin hazırlanması

  1. İndüksiyon odasına bir fare yerleştirin. Anestezi indüksiyonu için izofluran buharlaştırıcıyı %2-3 vol/vol değerine ayarlayın.
  2. Uygun anestezi derinliğini, ayak parmağının sıkışmasına yanıt eksikliği ve 1-2 nefes / s civarında bir solunum hızı ile belirleyin.
  3. Her göze steril oftalmik kayganlaştırıcı uygulayın. Kürkü dorsumdan çıkarın ve son kaburga ile pelvis arasındaki ventrumu uygun boyutta makaslarla çıkarın.
  4. Görüntülenecek ventral ve dorsal bölgelere ince bir tüy dökücü krem tabakası uygulayın (gerekirse).
  5. Uygun anestezi derinliğini korumak için fareyi yaklaşık 3-5 dakika boyunca indüksiyon odasına geri yerleştirin, tüy dökücü krem saçları çıkarmak için çalışır. ≤4 dakika sonra, kremayı temiz ve nemli bir kağıt havluyla nazikçe silin.
    NOT: Tüy dökücü kremaya daha uzun süre maruz kalmak tahriş edicidir ve cilt lezyonlarına neden olabilir.

4. Organlar arasındaki kontrastı arttırmak için intraperitoneal sıvı enjeksiyonu

  1. Steril izotonik sıvı çözeltisi (örneğin, steril% 0.9 NaCl veya Laktasyonlu Zil Çözeltisi) ile doldurulmuş 3-10 mL'lik bir şırıngayı, birkaç dakika boyunca bir ısıtma yastığı ile emici bir ped arasına yerleştirerek 35-40 ° C'ye ısıtın. Makinenin ısıtıcısı yoksa, ısıtma yastığına bir şişe ultrason jeli yerleştirin.
  2. 20-25 g'lık bir fare için, periton boşluğuna 1-2 mL çözelti enjekte edin.
    1. Fareyi bir elinizle tırnağıyla sabitleyerek ventrumu açığa çıkarın.
    2. Fareyi ~ 20 ° 'lik bir açıyla tutun, burun yerçekimi nedeniyle organları kafatasına yönlendirmek için yere işaret etti.
    3. Küçük bir ölçü iğnesi (25 G, 5/8 uzunluğunda, tüberkülin şırıngası) kullanarak, karın kaudal sağ kadranının derisinden ve karın duvarından delin.
    4. Sıvı enjeksiyonundan önce, vaskülatür veya GI kanalına enjeksiyondan kaçınmak için, minimum basınçla geri çekin. Şırıngaya kan veya başka bir malzeme girerse, iğneyi çıkarın. Yeni bir iğne ve şırınga kullanın ve biraz farklı bir pozisyonda tekrar deneyin.
  3. Fare enjeksiyonlar sırasında uyanırsa,% 2 -% 3 hacim / hacim izofluran ile anestezi için küçük indüksiyon odasına geri yerleştirin.

5. Dorsal yaklaşımdan ultrason görüntüleme

  1. Fareyi ventral yatışta emici ped üzerinde bir ısıtma yastığının üzerine yerleştirin (Şekil 2A-C).
  2. Bir kemirgen burun konisini farenin burnuna ve namlusuna güvenli bir şekilde yerleştirin. Burun konisinden verilen izofluran ile anestezik derinliği %100O2'de %1-%2 vol/vol aralığında koruyun. Her göze gerektiğinde steril oftalmik yağlayıcı uygulayın.
  3. Anestezinin ayarlanması gerekip gerekmediğini belirtmek için fareyi düzenli bir solunum hızı (1-2 / s) ve ayak parmağı sıkışma yanıtı eksikliği açısından izleyin.
  4. Anestezi uygulanan farenin her iki tarafındaki omurgaya, son kaburga ve pelvis arasına az miktarda (~ 0.5-1 mL) önceden ısıtılmış ultrason jeli abaksiyel (lateral) yerleştirin.
  5. Ultrason probu üzerine az miktarda jel koyun.
  6. Probu omurlara paralel olarak, probun önü kraniyal tarafa gelecek şekilde yerleştirin. Doğru prob yönünü göstermek için prob kafasında bir gösterge işareti bulunur. Toplanan her yeni görüntü kümesi için günü, saati, hayvan kimliğini, prob yönünü ve hayvan tarafını (sağ, sol, dorsal, ventral) kaydedin.
  7. Ventral yatışta bir fare ile (dorsum derisi proba dokunuyor), böbrek dönüm noktası için bölgeyi yavaşça tarayın (Şekil 2B ve Şekil 3). Böbrek görünürken, böbrek tarafından kraniyo-ventral olarak ve dorso-lateral olarak dorsal karın duvarı tarafından sınırlanan çok hiperekoik bir yumurtalık yağ yastığı içinde yumurtalık - hafif hiperekoik oval ila yuvarlak bir yapıyı (Şekil 4A, B) bulmak için prob kaudalını çekin.
    NOT: Yumurtalık kaudal ve lateral basınç, yumurtalığı karın duvarına yaklaştırabilir ve bağırsağın halkalarından uzağa yönlendirebilir. Yumurtalık anatomik olarak dorsal karın duvarına karşı, sadece ventral ve lateral epaxial kaslara ve kaudal böbreğe doğru konumlandırılmıştır.
  8. Görüntü kontrastını iyileştirmek için kontrol ekranının altındaki kaydırıcıyı kullanarak sinyal kazancını ayarlayın.
  9. Böbreğin görüntülenmesini iyileştirmek için, kontralateral karın bölgesine parmağınızla basınç uygulayın. Basıncı ve açıyı omurgaya doğrudan paralelden ~ 20 ° ventral'e değiştirin.
  10. İlgilendiğiniz organ görüntülendikten sonra, Klibi Kaydet veya Kaydı Başlat'a tıklayarak bir video toplayın ve ardından görüntüleri önceden ayarlanmış sayıda karede tutmak için bittiğinde Kaydı Durdurun .
  11. Canlı bir görüntüden veya kayıttan tek kareleri Kareyi Kaydet düğmesiyle kaydedin.
  12. Uterusu görüntülemek için, yumurtalık görüş alanının en kafatası yönünde olana kadar probu kaudal olarak çekin. Rahim görünene kadar prob basıncını ve açısını değiştirin.
  13. İlgilendiğiniz her organ için video ve kare koleksiyonunu tekrarlayın.
  14. Dorsal karın duvarı boyunca uzunlamasına uzanan uterusu, lateral bacak kas sistemi de görünümde olacak şekilde bulun (Şekil 4B).
    NOT: Rahim büyüklüğü ve lümen çapı östrusun evresine ve hastalık durumuna göre değişebilir.
  15. Bağırsak halkalarını uterus sabit boynuzlarından ayırt etmek için dokuyu peristaltik hareket için izleyin.

6. Ventral yaklaşımdan görüntüler toplayın

  1. Fareyi sırt yassılığına yerleştirin ve göz yağlamasının yeterli olduğunu ve namlunun burun konisinde güvenli bir şekilde durduğunu kontrol edin (Şekil 2A).
  2. Ventral karın bölgesine az miktarda (~ 0.5-1 mL) önceden ısıtılmış ultrason jeli uygulayın ve mesaneyi hipoekoik bir dönüm noktası olarak bulmak için probu pubisin sadece kraniyalinin orta hattına uygulayın (Şekil 5).
    NOT: Mesane çok büyükse ve uterus görüntülemesini gizliyorsa, idrarı ifade etmek için alt karın bölgesine hafif basınç uygulanabilir.
  3. Uterus boynuzlarını bulmak için probu lateral mesaneye çekin. Boynuzları görüş alanına getirmek için farenin her iki tarafından veya her iki tarafından hafif dijital basınç uygulayın. Probu fareye dik tutun ve her iki boynuzun enine görünümlerini (enine kesitleri) yakalamak için karnın her iki tarafını tarayın. Sagital görünümleri yakalamak için probu döndürün.
  4. Ultrasondan sonra, fareyi bir kağıt havluyla jelden temizleyin ve iyileşmek için kafesine geri koyun. Fareler 2-5 dakika içinde tamamen uyanıktır. Tamamen uyanık ve ayakta durduğunda, fareyi hayvan odasına geri getirin.
    NOT: Geri kazanım için kafesi ısıtmak üzere kafesin altına düşük ısıda bir ısıtma yastığı yerleştirilebilir.
  5. Deneysel veya insancıl bitiş noktasında, fareyi ötenazi yapın. İdeal olarak, stresi azaltmak için fareyi ev kafesinde ötenazi yapın; Alternatif olarak, fareyi temiz bir odaya yerleştirin. Basınçlı CO2'yi , dakikada oda hacminin% 10-30'u arasında bir yer değiştirme hızında teslim edin. Görünür solunum olmadan yaklaşık 5 dakika sonra, servikal çıkık ile ölümü doğrulayın. Tümör hasadı için abdominal nekropsi ile devam edin.

Sonuçlar

Pax8-Cre-Arid1a-Pten çift delesyonlu (iPAD) transgenik fareler, daha önce tarif edildiği gibi karışık bir genetik arka plan (129S, BALB / C, C57BL / 6) üzerinde tutuldu14. Farelerin hepsi, Cre rekombinazını indüklemek için 2 hafta boyunca bir doksisiklin yemi ile beslendi. Grubumuz tarafından yapılan önceki çalışmalarda, doksisiklin gavage14 ile dozlandı; Bununla birlikte, bu güncel çalışmada, doksisiklin yem indüksiyon yöntemi veri...

Tartışmalar

Bu protokol, farelerde uterusta adenokarsinomun ilerlemesindeki uterus morfolojik değişikliklerini değerlendirmek için ultrasonun yararlılığını incelemektedir. Bu çalışmada, farelerde endometriyal kanser indüksiyonunu uzunlamasına takip ederek, ultrasonografi ile saptanan anatomik detayların kaba ve histolojik patolojinin göstergeleri olduğu bulunmuştur. Bu, farelerde rahim kanserlerinin ilerlemesini takip etmek için birden fazla zaman noktasında ultrason tarafından izlenen daha az sayıda fare ile u...

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak çıkar çatışmaları yoktur.

Teşekkürler

NCI Yumurtalık Kanseri SPORE Programı P50CA228991, doktora sonrası eğitim programı 5T32OD011089 ve Richard W. TeLinde Vakfı, Johns Hopkins Üniversitesi'nden fon sağladıkları için minnettarız. Proje ayrıca kısmen Japonya Özel Okulları için Teşvik ve Karşılıklı Yardım Kurumu'ndan Özel Yüksek Öğretim Kurumlarına yapılan cari harcamalar için sübvansiyonlarla finanse edildi.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Reagents and Equipment Used for Animal Care
Rodent Diet (2018, 625 Doxycycline)EnvigioTD.01306Mouse Feed
Reagents and Equipment Used for Ultrasound Imaging
10 mL injectable 0.9% NaCl Hospira, IncRL-7302Isotonic Fluid
Absorbent Pad with Plastic BackingDaiggerEF8313Absorbant Pads
Anesthesia Induction ChambersHarvard Apparatus75-2029Induction Chamber
Anesthetic absorber kit with absorber canister, holder, tubing, & adaptersCWE, Inc13-20000Nose Cone and Tubing
Aquasonic Clear Ultrasound Gel (0.25 Liter)Parker Laboratoies08-03Ultrasound Gel
BD Plastipak 3 mL SyringeBD Biosciences309657Syringe
F/Air Scavenger Charcoal CanisterOMNICON80120Scavenging System for Anesthesia
Isoflurane, USPVet One502017Anesthesia Agent
M1050 Non-Rebreathing Mobile Anesthesia MachineScivena ScientificM1050Anestheic Vaporizer
MX550S, 25-55 MHz Transducer, 15mm, LinearVisualSonicsMX550SUltrasound Transducer (Probe)
Nair Hair Aloe & Lanolin Hair Removal Lotion - 9.0 ozNairDepilliating Cream
Philips Norelco Multigroomer All-in-One Trimmer Series 7000Philips North AmericaMG7750Clippers
PrecisionGlide 25 G 1" NeedleBD Biosciences305125Needle
Puralube Ophthalmic OintmentDechra17033-211-38Lubricating Eye Drops
Vevo 3100 Imaging SystemVisualSonicsVevo 3100Ultrasound Machine
Vevo LAB 5.6.1VisualSonicsVevo LAB 5.6.1Ultrasound Analysis Software
Vinyl Heating Pad with cover, 12 x 15"Sunbeam731-500-000RHeating Pad
Wd Elements 2TB Basic StorageWestern Digital ElementsWDBU6Y0020BBK-WESNData Storage
Reagents and Equipment Used for Immunohistochemistry
10% w/v FormalinFischer ScientificSF98-4Tissue Fixation Buffer
Animal-Free Blocker and Diluent, R.T.U.Vector Laboratories Inc. SP5035Antibody Blocker
Charged Super Frost Plus Glass SlidesVWR4831-703Tissue Mounting Slides
Citrate BufferMilliporeSigma C9999-1000MLEpitope Retrival Buffer (pTEN)
Cytoseal – 60Thermo Scientific8310-4Resin for Slide Sealing
Gold Seal Cover GlassThermo Scientific3322Coverslide
Harris Modified HematoxylinMilliporeSigmaHHS32-1LCounterstain Buffer
Hybridization Incubator (Dual Chamber)Fischer Scientific13-247-30QOven to Melt Parraffin
ImmPACT DAB Substrate, Peroxidase (HRP)Vector Laboratories Inc.SK-4105Signal Development Substrate
ImmPRESS HRP Goat Anti-Rabbit IgG Polymer Detection Kit, PeroxidaseVector Laboratories Inc.MP-7451Secondary IHC Antibody
Oster 5712 Digital Food SteamerOster5712Vegetable Steamer for Epitope Retrival
rabbit mAB anti-ARID1aabcamab182560Primary IHC Antibody (1:1,000)
rabbit mAB anti-PTENCell Signaling9559Primary IHC Antibody (1:100)
Scotts Tap Water SubstituteMilliporeSigmaS5134-100ML"Blueing" Buffer
Tissue Path IV CassetteFischer Scientific22272416Tissue Fixation Cassette
Trilogy BufferCell Marque 920P-10Epitope Retrival Buffer (ARID1a)

Referanslar

  1. Ajayi, A. F., Akhigbe, R. E. Staging of the estrous cycle and induction of estrus in experimental rodents: an update. Fertility Research and Practice. 6, 5 (2020).
  2. Kim, S. W., Kim, Y. Y., Kim, H., Ku, S. Y. Animal models closer to intrauterine adhesive pathology. Annals of Translational Medicine. 8 (18), 1125 (2020).
  3. Shi, D., Vine, D. F. Animal models of polycystic ovary syndrome: a focused review of rodent models in relationship to clinical phenotypes and cardiometabolic risk. Fertility and Sterility. 98 (1), 185-193 (2012).
  4. Greco, A., et al. Ultrasound biomicroscopy in small animal research: applications in molecular and preclinical imaging. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2012, 519238 (2012).
  5. Palsdottir, K., et al. Interobserver agreement of transvaginal ultrasound and magnetic resonance imaging in local staging of cervical cancer. Ultrasound in Obstetrics and Gynecology. 58 (5), 773-779 (2021).
  6. Gabrielson, K., et al. In vivo imaging with confirmation by histopathology for increased rigor and reproducibility in translational research: A review of examples, options, and resources. ILAR Journal. 59 (1), 80-98 (2018).
  7. Peterson, R. A., et al. Continuing education course #1: Non-invasive imaging as a problem-solving tool and translational biomarker strategy in toxicologic pathology. Toxicologic Pathology. 39 (1), 267-272 (2011).
  8. Pfeifer, L. F., Adams, G. P., Pierson, R. A., Singh, J. Ultrasound biomicroscopy: A non-invasive approach for in vivo evaluation of oocytes and small antral follicles in mammals. Reproduction, Fertility and Development. 26 (1), 48-54 (2013).
  9. Cheung, A. M., et al. Three-dimensional ultrasound biomicroscopy for xenograft growth analysis. Ultrasound in Medicine and Biology. 31 (6), 865-870 (2005).
  10. Snyder, C. S., et al. Complementarity of ultrasound and fluorescence imaging in an orthotopic mouse model of pancreatic cancer. BMC Cancer. 9, 106 (2009).
  11. Wu, G., Wang, L., Yu, L., Wang, H., Xuan, J. W. The use of three-dimensional ultrasound micro-imaging to monitor prostate tumor development in a transgenic prostate cancer mouse model. The Tohoku Journal of Experimental Medicine. 207 (3), 181-189 (2005).
  12. Rinaldi, S. F., et al. Ultrasound-guided intrauterine injection of lipopolysaccharide as a novel model of preterm birth in the mouse. The American Journal of Pathology. 185 (5), 1201-1206 (2015).
  13. Wang, T., et al. Ultrasonography in experimental reproductive investigations on rats. Journal of Visualized Experiments. 130, e56038 (2017).
  14. Suryo Rahmanto, Y., et al. Inactivation of Arid1a in the endometrium is associated with endometrioid tumorigenesis through transcriptional reprogramming. Nature Communications. 11, 2717 (2020).
  15. Pani, F., et al. Pre-existing thyroiditis ameliorates papillary thyroid cancer: Insights from a new mouse model. Endocrinology. 162 (10), bqab144 (2021).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

RetraksiyonSay 192Ultrasonrahimendometriyal kanserendometriyal karsinomyumurtal kfareler

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır