Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Hidradenitis Suppurativa hastalarından eksize edilen dokulardaki kutanöz sinüs yollarından (tüneller) titiz ve anaerobik organizmaları başarılı bir şekilde izole etmek için bir yöntem sergiliyoruz.

Özet

Hidradenitis Suppurativa (HS), ağrılı nodüller ve apseler ile kendini gösteren, cildin dermal katmanları içindeki sinüs yollarına (tünellere) ilerleyen, yaşam kalitesini ciddi şekilde azaltan önemli rahatsızlığa, kötü kokulu akıntıya, şekil bozukluğuna, kontraktürlere ve yara izlerine neden olan zayıflatıcı bir durumdur. HS, cilt mikrobiyomundaki değişikliklerle ilişkilidir, bağışıklık düzenlemesini ve cildin zararlı bakterilere karşı savunmasını etkiler. Yaygınlığına rağmen, HS mikrobiyomunun hastalık patolojisine katkısı ve tedaviye sınırlı yanıtı büyük ölçüde bilinmemektedir. Bugüne kadar, HS dokusu üzerinde yapılan çoklu 16S rRNA dizileme çalışmaları, Gram-negatif anaeroblarda bir artış ve cilt kommensallerinde bir azalma tanımlayarak yalnızca cins düzeyinde granülerlik elde etmiştir. HS'li bireylerde mikrobiyal disbiyozun daha derin bir şekilde anlaşılması, tedavi stratejilerini optimize etmek için esastır. Bu, HS mikrobiyomunu değerlendirmek için, cilt bozukluklarına odaklanan translasyonel çalışmalarda genellikle yeterince kullanılmayan bakteri türlerinin izolasyonu da dahil olmak üzere iki yönlü bir yaklaşım gerektirir. HS dokusundan tek tek mikroorganizmaların izole edilmesi, bakterilerin HS patogenezindeki rolünü aydınlatmak için çok önemlidir. Burada, anaerobik patojenleri HS tünel dokusundan başarılı bir şekilde izole etmek için tekrarlanabilir yöntemleri vurguluyor ve HS'deki bakteri rolünü anlamada ilk ve en kritik adımı sağlıyoruz. Bu yöntem, HS'ye mikrobiyal katkılara yönelik hedefli araştırmaların ve bu kronik durumun karmaşık mikrobiyal yükünü ele alan daha etkili, kişiselleştirilmiş tedavi stratejilerinin geliştirilmesinin yolunu açmaktadır.

Giriş

Hidradenitis Suppurativa (HS), cildin dermal ve deri altı katmanlarında oluşan sinüs yollarına (tüneller) ilerleyen, belirgin ağrıya neden olan, pürülan akıntı, şekil bozukluğu ve zayıflatıcı psikososyal sekellere neden olan nodüller ve apseler ile karakterize yaygın bir dermatolojik durumdur 1,2. HS, tipik olarak geç ergenlik veya erken yetişkinlik döneminde ortaya çıkan renkli tenli kadınları ve bireyleri orantısız bir şekilde etkiler2. Durumun şiddetli fiziksel semptomları, yaşam kalitesini ciddi şekilde azaltabilen depresyon, anksiyete ve sosyal izolasyon dahil olmak üzere derin psikososyal etkisi ile birleşir3. İlerlemiş hastalık evresinde oluşan HS tünelleri, hastaların şu anda onaylanmış biyolojik tedaviye yanıt verme olasılığını önemli ölçüde azaltmaktadır ve cerrahi eksizyon tek tedavi yaklaşımı olmaya devam etmektedir 4,5.

Çok sayıda çalışma, HS tünelleri ile ilişkili mikrobiyomu karakterize etmiş, anaerobik patojenlerin prevalansını ve kutanöz kommensallerin bolluğunun azaldığını göstermiştir 6,7,8, son çalışmalar Porphyromonas spp. (tip I) ve Prevotella spp. (IV) diğer cinslerin yanı sıratünellerde 9. Başka bir çalışma, doku örneklemesinin derinliğine göre HS mikrobiyomunda varyasyon buldu ve tünel dokusundaki mikrobiyal bileşimin benzersizliğini doğruladı10. Ek olarak, disbiyozun HS'deki bağışıklık tepkisini etkilediği gösterilmiştirve bu da hastalık patogenezinde mikropların rolünü daha da etkilemektedir 11,12,13,14. Klindamisin, rifampisin ve tetrasiklinlerle uzun süreli sistemik antibiyotik tedavisi kullanımda olmasına ve etkilenen hastalarda drenaj tünellerinin sayısında bir azalma göstermesinerağmen 15,16, HS'deki antibiyotiğe dirençli anaerobik patojenler hakkındaki veriler bilinmemektedir. Şimdiye kadar, HS tünellerinden bakteri suşlarının izole edilmesi rapor edilmemiştir, bu da yeni antimikrobiyal tedaviler üzerine yapılan çalışmaları ve patojenlerin HS hastalık patogenezine katkısının derinlemesine değerlendirilmesini sınırlamaktadır. Patojenlerin izolasyonu için yöntemlerin standardizasyonu, yalnızca HS'nin patogenezindeki bakteri rolüne ilişkin gerçek içgörüleri kolaylaştırmakla kalmayacak, aynı zamanda daha hedefli ve gelişmiş müdahalelere doğru çeviriye de izin verecektir.

Burada, mikroorganizmaları HS tünel dokusundan başarılı bir şekilde izole etmek için bir yöntemi vurguluyoruz. Tek tek bakteri türlerini izole etmek, HS patolojisindeki rollerini anlamada çok önemli bir ilk adımdır. Bu yöntem, HS'ye mikrobiyal katkılara yönelik hedefli araştırmaların ve bu kronik durumda bakteriyel patojenleri ele alan daha etkili, kişiselleştirilmiş tedavi stratejilerinin geliştirilmesinin yolunu açmaktadır.

Protokol

Bu protokol, Miami Üniversitesi'ndeki Kurumsal İnceleme Kurulu (IRB) tarafından onaylanmıştır (protokol #20200187). Bilgilendirilmiş onam, HS tüneli teşhisi konan hastalardan (n = 18, ortalama yaş ± standart sapma = 30.9 ± 9.4, 12 kadın, 6 erkek) ve/veya yasal vasi(ler)inden işlem öncesinde herhangi bir endişe veya sorunun ele alınmasına izin vermek için alınır.

1. Hasta numunesi toplama

  1. Eksize edilen dokuyu işlemeden önce, kontaminasyon riskini en aza indirmek için sıkı steril önlemler alın. Dokuyu tutan kişi bir laboratuvar önlüğü, yüz maskesi ve cerrahi başlık giymeli ve dokuyu tutmak için steril eldivenler ve steril aletler kullanmalıdır.
  2. Sterilite kontrolü için, dokuyu işlemeden önce önceden otoklavlanmış forsepsleri anaerobik taşıma şişesine batırın (Malzeme Tablosu).
  3. HS tünelleri teşhisi konan hastaların etkilenen bölgelerinden bir neşter veya CO2 lazeri ile cerrahi olarak rezeke edilen cilt dokusunu toplayın ve daha sonraki işlemler için steril forseps kullanarak hemen steril bir Petri kabına yerleştirin.
  4. Ameliyat merkezinde veya poliklinik ofisindeyken, Şekil 1A'da gösterildiği gibi, önceden otoklavlanmış forsepslerle cildi inceleyerek eksize edilen doku içindeki tünelleri tanımlayın.
  5. Doku eksizyonundan hemen sonra tanımlanan tünelin tam kalınlıktaki derisinden 6 mm'lik punch biyopsileri alın ve daha ileri analizler için anaerobik bakteri türlerinin hayatta kalmasını optimize etmek için anaerobik sistem taşıma cam şişelerinde indirgeyici ajanlarla yarı katı tamponlu ortama daldırın.
  6. Anaerobik şişelerdeki tünel dokusunu buz üzerindeki laboratuvara taşıyın.
  7. Örnek belgeleri aşağıda açıklandığı gibi gerçekleştirin.
    1. İşlem gününde, herhangi bir kişisel tanımlayıcı olmadan demografik özellikler, yaş, kendi bildirdiği etnik köken/ırk ve mevcut ilaçlar dahil olmak üzere hasta bilgilerini toplayın. Rezeke edilen dokunun vücut bölgeleri bir vücut çizelgesine eşlik eder, çünkü HS tünelleri birden fazla vücut bölgesinde oluşabilir. Doku işlemeden önce ve sonra numunenin her iki tarafından eksize edilen dokunun fotoğraflarını çekin ve bir tünelden oluşturulan biyopsinin yerini belgeleyin. Laboratuvara vardıklarında kodlanmış doku örneklerini herhangi bir kişisel tanımlayıcı olmadan elektronik ve güvenli bir veri tabanına kaydeder.

2. HS cilt işleme

  1. Kurulum ve kaplama
    1. Laboratuvar önlüğü ve eldiven giyin ve kontaminasyonu önlemek için saçları bağlayın. Kanamisin ve Vankomisin (LKV) agarlı Laked Brucella Kan agarı, Triptikaz Soya agar (TSA II) %5 Koyun Kanı (SB) agar, Beyin Kalp İnfüzyonu (BHI) ve Feniletil alkol agar (PEA) dahil olmak üzere önceden ısıtılmış kan agar plakaları% 5 SB agar ile 37 ° C'ye kadar bir inkübatörde 10 dakika. Mendil işlemeden önce biyogüvenlik kabinini %70 etanol ile temizleyin.
    2. Agar plakaları ısıtıldıktan sonra, plakanın tabanını veya yan tarafını kodlanmış numune adı ve tarihi ile etiketleyin. Otoklavlanmış forsepsleri, neşterleri, önceden sterilize edilmiş aşılama halkalarını ve agar plakalarını biyogüvenlik kabinine yerleştirin.
    3. 6 mm'lik punch biyopsisini, forsepsleri ortama batırarak steril forseps ile anaerobik taşıma şişesinden çıkarın. Steril bir neşter kullanarak dokuyu her biri yaklaşık 1 mm2 olan küçük parçalar halinde hızlıca doğrayın. Dokuyu 500 μL Güçlendirilmiş Clostridial ortam (RCM) içeren steril bir mikrosantrifüj tüpüne yerleştirin ve kısaca girdap yapın.
      NOT: Numuneler uzun süre aerobik ortama maruz kalacağı için homojenizasyon kullanılmamıştır, bu da işlem sırasında ek havalandırmaya ve potansiyel anaerobik bakteri kaybına yol açabilirdi.
    4. Yeni bir steril döngü kullanarak, bakteriyel organizmalar içeren doku süspansiyonunun TSA II %5 SB, LKV, %5 SB ile bezelye ve BHI agar plakaları üzerine tekrarlanan kadran çizgisini gerçekleştirin.
    5. Kalan doğranmış doku süspansiyonunu kullanarak, bir kriyotüpe %20 v/v steril gliserol ve %80 v/v doku süspansiyonu ekleyerek gliserol stokları yapın. Gliserol stoklarını 80 °C'de saklayın. İzole edilen bakterilerin sınırlı canlılığı durumunda, izolasyonu tekrarlamak için doku stokları kullanılabilir.
    6. Tüm plakaları 37 °C'de bir CO2 paketi ile çevrili anaerobik bir odaya inkübatöre yerleştirin. Plakaları her 2-3 günde bir kontrol edin, kaplamadan 7-14 gün sonra anaerobların büyümesini bekleyin. Plakaları fotoğraflayarak koloni morfolojilerini belgeleyin.
  2. Doku bankacılığı
    1. Daha büyük bir doku örneğinin tam tüneli yakalama olasılığı daha yüksek olduğundan, Formalin Sabit Parafin Gömülü (FFPE) örneği ve histolojik değerlendirme için tünelden ve tünelden uzakta ek tam kalınlıkta deri örnekleri toplamak için 8 mm'lik bir punch biyopsisi kullanın.
    2. DNA (snap dondurulmuş), RNA (daha sonra RNA'da) ve protein izolasyonu (snap frozen) için ek 6 mm'lik punch biyopsilerini koruyun.
  3. Koloni bakımı
    1. Orijinal plakalarda koloniler gözlemlendikten sonra, plakaları fotoğraflayın ve farklı koloni morfolojisini not edin17. Genel olarak, 10-15 farklı koloni morfolojisi tahmin edin (bkz. Şekil 1).
    2. %5 SB ve TSA II %5 SB agar plakaları ile önceden ısıtılmış LKV, BHI, PEA hazırlayın (Malzeme Tablosu). Her plaka etiketini numune kimliği, biyopsinin yeri ve tarih ile etiketleyin.
    3. Steril bir pipet ucu kullanarak, tek bir koloniyi alın ve tespit edildiği aynı tip plaka üzerinde zikzak hareketlerle çizin. Ardından, 16s rDNA PCR amplifikasyonu için bir şablon olarak koloni ile aynı pipet ucunu kullanarak aşağıdaki adımları izleyin.
    4. Yeni bir steril pipet ucu ve orijinal plakadan farklı morfolojiye sahip farklı bir tekil koloni ile tüm agar plakalarından seçilen kolonileri kullanarak adım 2.3.3'ü tekrarlayın. Yine, çizgilemeden hemen sonra, PCR amplifikasyonu için bir şablon sağlayacağından, pipet ucunu kalan koloniyle birlikte özel bir PCR plakası kuyusuna daldırmak için kullanın.
    5. Her bir farklı koloni için 2.3.3-2.3.4 adlarını, dört tip agar plakasının tümünde spesifik morfolojilere sahip tüm koloniler çizilene ve karşılık gelen PCR kuyucukları aynı anda aşılanana kadar tekrarlayın.
    6. Yeni kaplanmış agar plakalarını inkübatörde 37 °C'de bir CO2 paketi ile çevrili anaerobik bir odada saklayın. Koloniler büyüdükten sonra, bakteri stoklarını korumadan önce izole edilen koloninin saflığından emin olun (aşağıya bakınız). Kaplanmış kolonilerde homojenlik yoksa, adım 2.3.3'ü tekrarlayın. Koloni büyümesine bağlı olarak, koloniler görünüşte homojen olana kadar her 4-5 günde bir yeniden kaplama işlemini gerçekleştirin.
  4. 16s rDNA koloni amplikon dizilimi ile bakteri türlerinin tanımlanması
    1. Koloni başına toplam 25 μL hacim için oyuk başına 2,5 μL 10 μM 16S rDNA V1-V3 ileri (5' AGAGTTTGATTCCTGGCTCAG-3') ve ters primerler (5' AGAGTTTGATTCCTGGCTCAG-3'; 10 μM), 12,5 μL 2x Master Mix polimeraz ve 10 μL mikrobiyal DNA içermeyen sudan oluşan bir ana karışıma sahip bir PCR plakası hazırlayın.
    2. Seçilen tüm kolonilerden, negatif kontrolden (şablon yok) ve pozitif kontrolden amplifikasyon için gereken bir PCR ana karışımının hacmini hesaplayın - herhangi bir laboratuvar suşu kullanılabilir; yaygın olarak Staphylococcus aureus USA300 kullanıyoruz.
    3. Kontaminasyonu önlemek için biyogüvenlik kabinine kuyuları kaplayan bir PCR plakası getirin. Kaplama için steril bir pipet ucundan tek bir koloni kullanın. Önceden doldurulmuş ana karışım ile belirlenen kuyucuğa titiz bir şekilde girerek koloniyi hemen yeniden askıya alın. PCR için hem alt kültürleme hem de numune alma için aynı pipet ucunu kullanın.
    4. Tüm tekil HS kolonileri ve pozitif kontrol için adım 2.4.3'ü tekrarlayın.
    5. PCR'yi aşağıdaki protokolle çalıştırın: Seçilen koloniyi parçalamak için gereken ilk denatürasyon için 5 dakika boyunca 95 °C, ardından 15 saniye boyunca 95 °C'lik 40 döngü, 1 dakika boyunca 54 °C, son 4 °C döngünün kullanımı isteğe bağlıdır. Aynı program ayarlarıyla bir termosiklatör de kullanılabilir.
    6. 311 bp olması beklenen amplikonun boyutunu doğrulamak için amplifiye edilmiş qPCR ürünleri ile jel elektroforezi çalıştırın (Şekil 2). Üreticinin talimatlarına göre PCR saflaştırma kiti ile başarılı bir şekilde amplifiye edilmiş 16s rDNA fragmanını saflaştırın.
    7. 16S rDNA V1-V3 ileri ve geri primerleri kullanarak 16S ribozomal RNA Sanger dizilimi için saflaştırılmış PCR ürününü gönderin.
  5. Bakteri stokları
    NOT: Titiz anaeroblar, agar plakaları üzerindeki sınırlı canlılıkları ile bilinir.
    1. Tür kimliğini doğrulayacak sıralama sonuçlarını elde etmeden önce suş korumasını sağlamak için, tek bir koloniden agar plakaları oluşturun ve stoklar oluşturmak için saflığı onaylayın. Sıvı ortamdaki büyüme koşullarının optimizasyonuna paralel olarak doğrudan agar plakasından stoklar oluşturun.
    2. Stoku adım 2.3'te oluşturulan plakadan hazırlamak için, mümkün olduğunca çok sayıda homojen koloni almak için 6 mm'lik bir steril aşılama halkası kullanın. Daha sonra, kriyotüplerde %20 steril gliserol ile 800 μL RCM'de bakterileri kuvvetlice yeniden süspanse edin ve bir bakteri stoğu oluşturmak için -80 °C'de saklayın.
      NOT: Bu adım, verileri dizileyerek karakterizasyon elde etmeden önce titiz patojenlerin zamanında korunmasını sağlar.
    3. Suşun sınıflandırması onaylandıktan sonra sıvı kültürdeki büyümenin optimizasyonunu ve tek bir koloniden stok üretimini gerçekleştirin.

Sonuçlar

Bu çalışmada, HS tünellerinden anaerobik bakterilerin izolasyonu ve karakterizasyonu için bir protokol tanımlanmıştır. Bu protokol, HS'nin patogenezine mikrobiyal katkıyı anlamamızı artırmak için in vitro, ex vivo ve in vivo cilt enfeksiyonu modellerini kullanarak bu bakterilerin işlevini ve virülansını test etme potansiyeli yaratması açısından yeni ve dikkate değerdir. İlk olarak, rezeke edilmiş deriden tüneller steril forseps ile in...

Tartışmalar

Bu çalışmada, HS tünellerinde bakteri kolonize eden bakterilerin izole edilmesi ve bakımı için yeni bir yöntem sunulmaktadır. Bu tekrarlanabilir yöntem, sadece bu patolojik yapılarda bulunan suşların derinlemesine karakterizasyonuna izin vermekle kalmayacak, aynı zamanda HS patogenezinde spesifik mikropların rolünü araştıran sonraki fonksiyonel çalışmaları da mümkün kılacaktır. Protokolün kritik adımları, HS tünellerinden canlı titiz mikroorganizmaların k...

Açıklamalar

Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması bildirmemektedir.

Teşekkürler

Bu çalışma R01AR083385 (IP, MTC, HLT), P50MD017347 (TG, IP, HLT) ve HS Foundation Danby araştırma bursu (TG) tarafından desteklenmiştir. Bu çalışma ayrıca Miami Üniversitesi Miller Tıp Fakültesi Analitik Görüntüleme Çekirdek Tesisi'ndeki VS120 Slayt Tarayıcı evi için NIH hibesi 1S1OD023579-01 ile desteklenmiştir.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
6mm punch biospyINTEGRA33-36Other suppliers can be used
8mm punch biospyINTEGRA33-37Other suppliers can be used
Agarose Sigma AldrichA9539Other suppliers can be used
Anaerobic Chambers BD260672
Anaerobic Transport MediaAnaerobic SystemsAS-911
Brain heart Infusion AgarAnaerobic SystemsAS-6426
CO2 gaspakBD260678
Difco Reinforced Clostridial MediumBD218081
GlycerolSIGMAG5516-1LOther suppliers can be used
Hard shell PCR platesBIO-RADHSP9601Other suppliers can be used
Incubator VWRSymphonyAny callibrated incubator can be used
Inoculation loopsVWR76544-926Other suppliers can be used
LKV agarHARDY DiagnosticsA60
Microbial DNA-Free WaterQiagen338132
Nunc CryoTubeThermo scientific 377267Other suppliers can be used
PCR (CFX Connect Real Time System)BIO-RADCFX Connect Optics Module Regular Themocycler can be used 
PEA agar HARDY DiagnosticsA93
Q5 High Fidelity 2X Master MixBioLabsM0492S
QIAquick PCR Purification KitQIAGEN28104
Reinforced clostridia mediaBD218081
Thin ForcepsMillipore SigmaF4017Other suppliers can be used
Trypticase Soy Agar (TSA II) with 5% sheep bloodThermo scientific221261

Referanslar

  1. Gonzalez-Lopez, M. A. Hidradenitis suppurativa. Med Clin. 162 (4), 182-189 (2024).
  2. Revankar, R., Murrell, D. F., Murase, J. E. Shedding light on the impact of hidradenitis suppurativa on women and their families: A focus of the international journal of women's dermatology. Int J Womens Dermatol. 7 (5Part B), 661-663 (2021).
  3. Gooderham, M., Papp, K. The psychosocial impact of hidradenitis suppurativa. J Am Acad Dermatol. 73 (5 Suppl 1), S19-S22 (2015).
  4. Frew, J. W., et al. Clinical response rates, placebo response rates, and significantly associated covariates are dependent on choice of outcome measure in hidradenitis suppurativa: A post hoc analysis of pioneer 1 and 2 individual patient data. J Am Acad Dermatol. 82 (5), 1150-1157 (2020).
  5. Bechara, F. G., et al. Efficacy and safety of adalimumab in conjunction with surgery in moderate to severe hidradenitis suppurativa: The sharps randomized clinical trial. JAMA Surg. 156 (11), 1001-1009 (2021).
  6. Williams, S. C., Frew, J. W., Krueger, J. G. A systematic review and critical appraisal of metagenomic and culture studies in hidradenitis suppurativa. Exp Dermatol. 30 (10), 1388-1397 (2021).
  7. Guet-Revillet, H., et al. The microbiological landscape of anaerobic infections in hidradenitis suppurativa: A prospective metagenomic study. Clin Infect Dis. 65 (2), 282-291 (2017).
  8. Riverain-Gillet, E., et al. The surface microbiome of clinically unaffected skinfolds in hidradenitis suppurativa: A cross-sectional culture-based and 16s rrna gene amplicon sequencing study in 60 patients. J Invest Dermatol. 140 (9), 1847-1855.e6 (2020).
  9. Ring, H. C., et al. The microbiome of tunnels in hidradenitis suppurativa patients. J Eur Acad Dermatol Venereol. 33 (9), 1775-1780 (2019).
  10. Pardo, L. M., et al. Bacterial microbiota composition in hidradenitis suppurativa differs per skin layer. J Invest Dermatol. 144 (2), 426-430.e5 (2024).
  11. Jiang, S. W., Whitley, M. J., Mariottoni, P., Jaleel, T., Macleod, A. S. Hidradenitis suppurativa: Host-microbe and immune pathogenesis underlie important future directions. JID Innov. 1 (1), 100001 (2021).
  12. Navrazhina, K., et al. Epithelialized tunnels are a source of inflammation in hidradenitis suppurativa. J Allergy Clin Immunol. 147 (6), 2213-2224 (2021).
  13. Williams, S. C., et al. Gram-negative anaerobes elicit a robust keratinocytes immune response with potential insights into hs pathogenesis. Exp Dermatol. 33 (5), e15087 (2024).
  14. Chopra, D., et al. Innate immunity and microbial dysbiosis in hidradenitis suppurativa - vicious cycle of chronic inflammation. Front Immunol. 13, 960488 (2022).
  15. Van Straalen, K. R., et al. External validation of the ihs4-55 in a european antibiotic-treated hidradenitis suppurativa cohort. Dermatology. 239 (3), 362-367 (2023).
  16. Molinelli, E., et al. Systemic antibiotic therapy in hidradenitis suppurativa: A review on treatment landscape and current issues. Antibiotics. 12 (6), 978 (2023).
  17. Andersson, T., Lood, R. 16S rRNA sequencing: A PCR-based technique to identify bacterial species. JoVE Sci Edu Database Microbiol. , e10510 (2023).
  18. Nebo, I. D., Frew, J. W., Gudjonsson, J. E., Petukhova, L. Tissue comparability and bias in hidradenitis suppurativa transcriptomic studies. Proc Natl Acad Sci. 121 (23), e2404503121 (2024).
  19. Naik, H. B., Piguet, V. Standardizing hidradenitis suppurativa skin microbiome research: The methods matter. J Invest Dermatol. 140 (9), 1688-1690 (2020).
  20. Ocker, L., Abu Rached, N., Seifert, C., Scheel, C., Bechara, F. C. Current medical and surgical treatment of hidradenitis suppurativa-a comprehensive review. J Clin Med. 11 (23), 7240 (2022).
  21. Zouboulis, C. C., Hou, X., Von Waldthausen, H., Zouboulis, K. C., Hossini, A. M. Hs 3d-seboskin model enables the preclinical exploration of therapeutic candidates for hidradenitis suppurativa/acne inversa. Pharmaceutics. 15 (2), 619 (2023).
  22. Koumaki, D., et al. Antimicrobial resistance trends in hidradenitis suppurativa lesions. J Clin Med. 13 (14), 4246 (2024).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Hidradenitis SuppurativaHS MikrobiyomMikrobiyal zolasyonBakteri T rleriDisbiyozGram negatif AnaeroblarDeri Mikrobiyomumm n Reg lasyonTranslasyonel al malarAnaerobik PatojenlerTedavi StratejileriKronik DurumDeri Hastal klar

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır