Intramural NIH program supported the development of this model. Publication support was provided by Harvard Apparatus Inc. and ADInstruments Inc. The work by the authors was done as part of US government&#8211;funded research; however, the opinions expressed are not necessarily those of the National Institutes of Health.

Aşağıda açıklanan prosedürler Ulusal Sağlık Enstitüleri Klinik Merkezi Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu tarafından onaylanan protokol kapsamında gerçekleştirildi. Cerrahi için 1. Hazırlık <ol><li> Gaz kateterler ve aletleri sterilize. </li></ol> 2. Balon hazırlayın <ol><li> Açıklığını sağlamak ve sızıntıyı önlemek için heparinli gliserol (250 IU heparin / 1 ml gliserol) ile kateterler yıkayın. Heparinli gliserol korumak için bir metal durdurucu (20 ga, 15 mm) ile kateterin ucunu takın. </li></ol> 3. Aseptik Workstation hazırlayın <ol><li> Iş istasyonu ve cihaz tepsileri sprey% 70 alkol kullanın. Tepsiye işletim masa ve alet tepsileri ve yer araçlarını kapsayacak şekilde steril örtüyü kullanın. </li></ol> 4. Cerrahi Rats hazırlayın <ol><li> Yer sıçan tek bir Lucite odasında ve bir anestezik maruz; izofluran (% 3-5) karışımıBilinçsiz kadar oksijen ile ed. Odasından sıçan çıkarın ve boyun anterior ve posterior alanlarından kürk tıraş. Gözleri yağ merhemi sürün. </li></ol> 5. Kateter Yerleştirilmesi <ol><li> Ventral pozisyonda ısıtılmış cerrahi masaya anestezi sıçan (ayak tutam tarafından teyit) yerleştirin; (;% 3.5 izofluran) spontan solunum frekanslarında ile anestezi korumak için burun konisi içine burnunu yerleştirin. Yavaşça cerrahi alanı Betadine ve% 70 alkol kullanımını alternatif 3 kez fırçalayın. Cerrahi makas kullanarak scapulalar arasında 0,5 cm&#39;lik orta hat cilt kesi olun. </li><li> Sırtüstü sıçan yerleştirin; yavaşça lastik bantlar kullanarak masanın her tarafında bacaklarını dizginlemek; anestezi korumak. Biraz daha iyi poz için aşırı esneterek boyun altında iki haddelenmiş steril gazlı bez 4x4 yerleştirin. Bir neşter kullanılarak klavikula düzeyinde boyun orta hatta 2 cm ventral servikal cilt kesi sağ olun. </li></ol> 6. SağJuguler Ven Kateterizasyon <ol><li> Bir hemostat kullanarak, açık açık, sağ juguler ven incelemek görselleştirmek ve geminin 5 mm bölümünü izole etmek tükürük ve lenfatik dokular ayırmak. 4-0 ipek sütür kullanarak, geminin en üst düzeye çıkarmak geminin hem kranial ve kaudal ucunda gevşek kravat yerleştirin. Bir mikro cerrahi makas yeterince bir kesi büyük yapmak kullanarak iki bitişik harfler arasındaki geminin doğrultusunda, kateter geçmek ve geminin etrafında kranial bitişik harfleri kravat. </li><li> Mikro diseksiyon kanca ve forseps yardımı ile kalbe doğru kabın içine venöz kateter yerleştirin ve PU 3F segmentinde tüm kap içinde olduğu kadar kateter ilerlemek. Kabına deriye tespit için kafatası ve kuyruk uçlarından bitişik harfler kullanın. </li></ol> 7. Sol Karotis Arter Kateterizasyon <ol><li> Bir hemostat kullanarak, açık açık sol karotis arter ortaya çıkarmak için uzunlamasına omohyoid kas incelemek ve benkabın 5 mm bölümü solate. Tamamen arterden ayrılır (beyaz renkte) vagus siniri emin olun. Özen parçalamak veya sinir kırmak için değil. </li><li> 4-0 ipek sütür kullanarak, geminin kaudal ucunda gevşek kravat yerleştirin geminin kranial ucunu kapalı kravat ve kesi aşağıdaki kan akışını durdurmak için dikiş üzerinde kaudal bir bulldog kelepçe yerleştirin. Bir mikro cerrahi makas kullanarak, yeterince büyük bir kesi, iki bitişik harfler arasındaki geminin doğrultusunda, kateter geçmek olun. Mikro diseksiyon kanca ve forseps yardımı ile kalbe doğru arteriyel kateter yerleştirin. </li><li> Sıkı bulldog kelepçesini çıkarmadan önce geminin içindeki kateter bölümünü tutmak için kilit olmadan pürüzsüz bir iğne tutucu kullanın. Kateterin tüm PU 2F segmentinde kadar yavaş yavaş iğne tutucu gevşeterek kabında ise forseps bir çift ile kateter Advance. Sabitlemek için kateter ve geminin etrafında gevşek kaudal bitişik harfleri Kravat, ama çok tigh değilt, kateter tıkanması için. </li></ol> 8. Tünel geri deri altına Kulak arkasında ve scapulalar arasındaki Kesiden ile 5 cm Tüp, bir düz hemostatın kullanma. Tüp yoluyla Balon exteriorize ve Tüp çıkarın. 9. Yerinde dışarıya Balon Güvenli 4-0 İpek Sütürlerin Üç Paslanmaz Çelik Yara Klipler ventral kesi ve dorsal insizyon kapatın. 10. Post-cerrahi Monitör ve Bakım <ol><li> Kateterizasyon sonrasında, anestezi sonlandırmak ve selüloz yatak ile bir kafeste lateral dekübit pozisyonunda sıçan kurtarmak. Daha sonra günde bir kez en az 4 saat veya ağrı belirtisi gösteren kadar 2 saat aralıklarla sıçan gözlemleyin ve. Sıçan ağrı veya sıkıntı belirtileri gösteriyorsa ketoprofenin [5 mg / kg, deri altı enjeksiyon (SQ)] ver hemen prosedürü ve her 12 saat sonrası. Bizim tecrübelerimize göre, hiçbir sıçan inisiyatif aşağıdaki ağrı için ek analjezi gerektirmiştirl enjeksiyonu. Analjezi ek dozlar için dikkate ortaya istiyorum gözlenen Özellikler ancak sınırlı içerir; anormal duruş; artış solunum hızı, insizyon sitenin savurgan / ungroomed, enfeksiyon / inflamasyon, göz akıntısı, piloerection / azalış (&quot;kirpi haircoat&quot;), sesli veya dokunsal uyaranlara yanıt olarak aktivitesinde azalma. NOT: Sıçanlar çalışmaya alındı ​​edilecek öncesi kateterizasyon ağırlığı&gt; 10 g kazanç 72 saat kurtarıldı. </li></ol> Hemodinamik Sistemine 11. Bağlantı <ol><li> Kurtarma ardından, çalışmada sağlıklı fareler (kilo&gt; 10g) kayıt. Lucite bölme sıçan yerleştirin ve daha önce anlatıldığı gibi anestetize. </li><li> Steril hemostata, mikro forseps, ekli künt iğne ile 1 ml şırınga ile cerrahi masaya steril örtüyü yerleştirin. NOT: hemostatı ipuçları kateter zarar görmesini önlemek için kauçuk ile kaplanmış olmalıdır. Cerrahi üzerinde anestezi sıçan yerleştirinburun konisi içine ventral konumu ve yeri burun tablo kendiliğinden respirations ile anestezi (% 3-5) korumak için. </li><li> Kelepçe arteriyel ve sadece metal fiş pimleri altındaki lastik kaplı hemostatlarla bir çift kullanarak venöz kateterler. Kateterin ucuna metal pimi çıkarın ve bağlı bir kör iğne ile heparin tuzlu su ile dolu bir 1 ml şırınga bağlamak için bir çift forseps kullanır. Buna karşılık, hemostat kaldırmak ve kateterler, patent sağlamak için 0.1 ml çekme. </li><li> , Kateterler yeniden kelepçe iğneyi çıkarın ve ayakkabı kutusu kafesinin üstüne (heparin tuzlu su ile önceden boşaltılan) bir döner bağlı oluyor ve gergin bir uzun kateter bu ucunu. Veri toplama ve kayıt, örnekleme, veya infüzyon için dönüştürücüler bu kateterler bağlayın. NOT: Tüm kateterler kendi kafesine hareket bir hayvanın dizi yetecek kadar uzun sarmal yay kanalları ile korunmaktadır. </li><li> Kateter bağlantısı, anestezi sonlandırmak takiben veselüloz yatak takımları ile bir kafes içinde sternum pozisyonda hayvanları kurtarmak. Elle 0.05 ml heparin tuzlu (50 IU / ml) hayvanların düzenli değerlendirmeler denk 24 saat her 1 saat ile satırları yıkayın, arteriyel kateter açıklığını korumak için. </li></ol> 12. Kan Örnekleme, Basıncı İzleme ve İlaç İdaresi <ol><li> Boş şırınga takın kateter arteriyel ve 0.6 ml satır içi floş çekme bağlı musluğunu için. Örnek şırınga takın örnek almak, ve 0.7 ml heparinli serum fizyolojik floş ardından 0.6 ml satır içi floş dönün. </li><li> Kullanım veri toplama donanım ve yazılım kayıt MAP ve kalp hızı sürekli ölçmek ve. </li><li> Venöz kateter için otomatik ilaç verme sistemi (ADDS) bağlayın. NOT: ADDS vazopressör infüzyon hızı normal fizyolojik aralığında muhafaza baskılara tespit MAP dayalı (yüksek, düşük, ya da 0 doz) ayarlar. </li></ol>

<ol>
	<li>Buckingham, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Indwelling+catheters+for+direct+recording+of+arterial+blood+pressure+and+intravenous+injection+of+drugs+in+the+conscious+rat.">Indwelling catheters for direct recording of arterial blood pressure and intravenous injection of drugs in the conscious rat.</a> J Pharm. Pharmacol. 28 (5), 459-461 (1976).</li><li>Buckle, J. W., Nathaniels, P. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Proceedings:+A+dual+catheter+system+for+the+simultaneous+infusion+and+sampling+of+the+vascular+system+of+the+unrestrained+rat.">Proceedings: A dual catheter system for the simultaneous infusion and sampling of the vascular system of the unrestrained rat.</a> J. Physiol. 242 (2), 55P-56P (1974).</li><li>Solomon, S. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effective+dosing+of+lipid+A+analogue+E5564+in+rats+depends+on+the+timing+of+treatment+and+the+route+of+Escherichia+coli+infection.">Effective dosing of lipid A analogue E5564 in rats depends on the timing of treatment and the route of Escherichia coli infection.</a> J. Infect. Dis. 193 (5), 634-644 (2006).</li><li>Cui, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bacillus+anthracis+cell+wall+produces+injurious+inflammation+but+paradoxically+decreases+the+lethality+of+anthrax+lethal+toxin+in+a+rat+model.">Bacillus anthracis cell wall produces injurious inflammation but paradoxically decreases the lethality of anthrax lethal toxin in a rat model.</a> Intensive Care Med. 36 (1), 148-156 (2010).</li><li>Quezado, Z. M., Natanson, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Systemic+hemodynamic+abnormalities+and+vasopressor+therapy+in+sepsis+and+septic+shock.">Systemic hemodynamic abnormalities and vasopressor therapy in sepsis and septic shock.</a> Am. J. Kidney Dis. 20 (3), 214-222 (1992).</li><li>Perdue, P. W., Kazarian, K. K., Nevola, J., Law, W. R., Williams, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+use+of+local+and+systemic+antibiotics+in+rat+fecal+peritonitis.">The use of local and systemic antibiotics in rat fecal peritonitis.</a> J. Surg. Res. 57 (3), 360-365 (1994).</li><li>Qiu, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+individual+survival+benefits+of+tumor+necrosis+factor+soluble+receptor+and+fluid+administration+are+not+additive+in+a+rat+sepsis+model.">The individual survival benefits of tumor necrosis factor soluble receptor and fluid administration are not additive in a rat sepsis model.</a> Intensive Care Med. 37 (10), 1688-1695 (2011).</li><li>Cui, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Severity+of+sepsis+alters+the+effects+of+superoxide+anion+inhibition+in+a+rat+sepsis+model.">Severity of sepsis alters the effects of superoxide anion inhibition in a rat sepsis model.</a> J. Appl. Physiol. 97 (4), 1349-1357 (2004).</li><li>Karzai, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protection+with+antibody+to+tumor+necrosis+factor+differs+with+similarly+lethal+Escherichia+coli+versus+Staphylococcus+aureus+pneumonia+in+rats.">Protection with antibody to tumor necrosis factor differs with similarly lethal Escherichia coli versus Staphylococcus aureus pneumonia in rats.</a> Anesthesiology. 99 (1), 81-89 (2003).</li><li>Jespersen, B., Knupp, L., Northcott, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Femoral+Arterial+and+Venous+Catheterization+for+Blood+Sampling,+Drug+Administration+and+Conscious+Blood+Pressure+and+Heart+Rate+Measurements.">Femoral Arterial and Venous Catheterization for Blood Sampling, Drug Administration and Conscious Blood Pressure and Heart Rate Measurements.</a> J. Vis. Exp. (59), e3496 (2012).</li></ol>

The authors have no potential conflicts of interest.

<html> Doğru, böylece damar erişim gerektiren, hemodinamik izleme gerçekleştirmek için yeteneği hastalığın klinik modeline tedavi yaklaşımları zorunlu kılmaktadır incelenmesi. Sepsis Bizim modelinde, arteriyel kateterizasyon sistemik basınç izleme sağlar ve venöz kateterizasyon, standart klinik tedavinin uygulanması için izin verir. Sepsis için standart tedavi antibiyotik infüzyon istenen aralığında arter basıncı korumak için bakteriyel enfeksiyon ve sıvıların ve vazopresörlerin infüzyon tedavi içerir. Her iki kateterler, kan örneği almak için kullanılır. Bu tasarımda, programlanabilir infüzyon uygulaması arter basınçları ortalama gerçek zamanlı dayalı vazopressör infüzyon hızının otomatik tetikleme ile pompaları sağlık personeli tarafından ve klinik öncesi ayar yapar manuel titrasyon gerektiren klinik ortamda üzerinden bir ilerlemedir Hayvanların çok sayıda eğitim mümkün bu tedavi yönteminin kullanın. . Bir içine juguler venöz kateter kaybolmaması,; e_content &quot;&gt; Bazı komplikasyonlar modelinin geliştirilmesinde erken yaşanmış Bu kısmi arteriyel ve sıkılaştırılması yerinden venöz kateterler, PU2 ve PU3 bileşenleri bağları, (% 1-2), hem tıkanıklığı dahil 2 L / dk O 2 debi ile izofluran konsantrasyonuna 2-3.5% tutarak çözüldü kurtarma (pulmoner trombüs veya diğer organ hasarı belirgin) sonra açıklanamayan ani ölüm, (% 1-2), küçük dal, (&lt;% 1) . kanama, lokal enfeksiyon ve öz-hasarın Diğer sık ​​görülen cerrahi komplikasyon gözlenmemiştir. Bir kez cerrahi yeterlilik elde edilir, her bir işlem en fazla 15 dakika içinde tamamlanması gerekir. Sağlıklı kurtarma olarak ölçülen başarı oranı ve Patent kateterler, içinde &quot;olabilir başarısız bir kateter için veri kaybı ve gerekli hayvan sayısını ve hesabı en aza indirmek için bir kez tam eğitimli. Bir ek hayvan, her çalışmaya dahil 90% aşması bekleniyor olabilirkomplikasyonları nedeniyle sadece füzyon &quot;ya da ölüm. Bu prosedür en kritik adım, kateter tasarımı ve yerleşimi olduğunu. malzemeler çok kolay sıkma yapmadan damar duvarını delmek şekilde değil ucundaki yumuşak olması gerekiyor. kateter gövdesi sert yeterince kabına ilerlemek mümkün ve yerine tespit edilmelidir (ucu hariç) olmalıdır. 1 bağlantılı arteriyel kateter ve 2 farklı çap boru için bağlanan boru çapları 3 göstermektedir venöz kateter için. Bu bileşenler ucundaki kateter çapını azaltmak için birbirlerine arasında kaydırılır ve muhafaza kap veya kalp kateteri yerleştirilmesini temin etmek için ilave dübel ile birbirine yapıştırılır. Bir kez iyileşti ve döner ve sabrının bağlı, MAP ve CVP dalga Şekil 2&#39;de gösterilen verilere benzer görünmelidir. Arteriyel kateter patenc korumak içinizleme sırasında y saatlik heparin tuz akışı (0.05 mi) yapılmalıdır. Sürekli infüzyon venöz kateter açıklığını korur. Hat bağlantısı ve floş sırasında, yakın ilgi hattında hava kabarcığı vardır sigortalamak için ödenmelidir. ≥0.1ml bir hava kabarcığı, akciğer, beyin ve diğer organlarda bir embolisine neden olabilir. Hemodinamik dalga kaydedilir ve çalışma boyunca analiz edilmiştir. X ekseni zaman sıkıştırarak olduğunda, Şekil 3, 1 saat boyunca MAP ve CVP değişiklikleri ve aynı zamanda kuru ve vazopresör infüzyon etkideki değişiklikleri gösterir. prosedür birkaç potansiyel sınırlamalar vardır. Bizim çalışmalarda, kateterler kadar 11 gün süreyle patent kalır. Bu kateterler Bu dönemde ötesinde patent kalacağını ne kadar bilinmemektedir. Tarif edildiği gibi kateterler sığdırmak için, kabaca, kemirgen ağırlığı ile ilişkilidir az vasküler boyutu vardır, bu çalışmaya dahil hayvanlar gerektiren daha büyük olduğu200 gr. daha küçük bir kateter çapına kullanımı açıklığını azaltarak akış dirençleri artmasına neden olur. Santral venöz basınç önlemleri Kavuşturulması çalışma döneminde büyüklüğü ve büyüme için hesaba yeterli atrium kesin kateter yerleştirilmesi gerekir ve bir meydan okuma olabilir. Bir kez hakim, arteriyel ve vasküler kateterizasyon enstrümantasyon sırasında herhangi bir ağrı ve sıkıntı minimize veya bir kez kurtarıldı tutarken sıvıların veya tedavilerin hemodinamik izleme, kan örneklemesi ve infüzyon gerektiren kemirgen modellerinde geniş bir yelpazede için temel sağlayabilir. Aslında, femoral ven önceki JOVE yayın 10 anlatan kateterizasyon ile birlikte, başarıyla 3 implante kateter ile bu modeli gerçekleştirdik.

Sıçanların Arteriyel ve venöz kateterizasyon uzun laboratuvar araştırmalarında kullanılmıştır. 1, 2 Kateterizasyon sistolik, diyastolik ve ortalama arter basıncı (OAB), kalp atım hızı (KAH) ve santral venöz basınç dahil olmak üzere hemodinamik parametrelerin izlenmesi için kullanılabilir (CVP) . 3,4 Buna ek olarak, bu kateter standart tedavi veya potansiyel tedaviler enfüzyon ve kan örneklemesi ayrıca, bir hastalık ya da tedavi altında yatan mekanizma analizine izin verir. Bu nedenle, küçük bir hayvan modelinde damar yolu olan klinik performansı önlemler ve tedavi etkilerinin araştırılması için kritik önem taşır. Kritik hastalık altında yatan nedenleri araştırmak için, ilk insan durumunu simüle etmek için bir model geliştirilmesi önemlidir. Bakteri bilinen bir miktarda içi trakeal aşılama başarıyla pnömoni patogenezi, daha sonra sepsis içine gelişen ciddi pulmoner enfeksiyon üretmek için kullanılır olmuştur.3, 5 hemodinamik önlemler İzleme ve standart klinik tedavi sağlayan rutin destekleyici bakım simüle etmek çok önemlidir. Standart klinik tedavi altta yatan enfeksiyon ve sıvı ve vazopresörlerin yönetimini temizleyerek yardımcı olur antibiyotik infüzyon içerir, iki terapiler kan basıncını korumak için septik hastalarda kullanılan. 5-7 Vasküler erişim, biz çalışma zaman özellikle patent kateterler implantasyon özellikle önemlidir sepsis için araştırma tedaviler. Uzun yıllar boyunca, kemirgenler için standart klinik tedavi yönetmek yeteneği implante kateter ve doğru zamanla küçük hacimli sunmak için infüzyon teknolojisi yeteneğini oluşturmak için gerekli özelliklere sahip malzemelerin mevcudiyeti ile sınırlı kalmıştır. Buna ek olarak, belirli bir hemodinamik ölçüm sürekli izlenmesi yanıt olarak bir infüzyon tetiklemek için yeteneği, tutarlı ve tekrarlanabilir bir stand için izin verirDaha büyük örneği kullanılarak kemirgen çalışmaları tipik boyutları ard tedavi modeli. 8, 9 Bu teknolojik sınırlamalar malzeme ve hassas donanım hemodinamik parametreleri izlerken aynı anda rutin tedaviler sağlamak için ama üstesinden edilmiş, arteriyel ve venöz damar yolu hem mevcut olmalıdır. Video bir anestezi sıçan karotis arter ve juguler ven kateteri sık yerleştirilmesi için cerrahi teknik detayları. 72 saat geri kazanma periyodunu takiben, hayvanlar yeniden anestezi ve hemodinamik izleme sistemine takılan kateterlerin bağlamak için kullanılan kemirgen muhafazaya bağlı bir bağlayıcı ve döner kurulum bağlı. Çalışma sırasında, sistem, bir sıvı infüzyon için izin veren, belirli bir infüzyon hızında belirli bir ses seviyesini sağlayan veya belirli bir basınç aralığını korumak için tespit edilen ortalama arter basıncı üzerinde bağlı bir enfüzyon hızı sağlar otomatik bir sistem ya göre. Sıvı infüzyon sistemiprogramlanabilir şırınga veri toplama sisteminin dijital çıkışlı bu arayüz pompaları ve MAP izleme yazılımı tarafından kontrol edilir kullanır. , basınçları izleme sıvıları ve vazopressörler beslerken, ve hayvanları işlemek zorunda kalmadan kan örnekleme yaparken halata ve döner kurulum çalışma sırasında sıçan serbest dolaşımını sağlar. 24 Araçlı hayvanları izleme genişletilebilir donanım ile (bizim kurulumunda) 2 kateter her ile 12 enstrümante hayvanların eş zamanlı izlenmesi, her deneyde birden tabakalı grupları incelemek için esneklik büyük bir olanak. Bu kateterizasyon prosedürü kadar 11 gün süreyle izlenmesi, örnekleme ve tedavi için damar yolu gerektiren benzer kemirgen modelleri kullanmak araştırma olanakları için yararlı olabilir. Bu prosedürü dikkate araştırma tesisi daha sonra bu hayvanların bakımını developin için kemirgenler ile deneyim ve uygun destek yapıya sahipseg Bu beceriler (naif sıçan, kateter bileşenleri ve teknik masraflar dahil) az $ 50 dolardan fazla 180 Kateterize sıçan başına toplam maliyeti azaltarak ve zamanlama esnekliği artırarak, önemli bir maliyet tasarrufu sağlayabilir (naif sıçan şirketi teslimat takvimi vs kolayca kullanılabilir arasında) sıçanları implante. Bu prosedürün başarısı kateterizasyon gerçekleştiren kişinin becerilerine bağlıdır. Bu prosedür yetkin olmak için gerekli eğitim hayvanlar&gt;% 90 Elde edilen kateter açıklık oranı ile 20 40 sıçanlardan değişmektedir.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="715">
	<tbody>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:299px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:131px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:167px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">straight micro dissecting forceps</td>
			<td>Roboz</td>
			<td style="width:119px;">RS-8102</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">delicate straight hemostatic forceps</td>
			<td>Roboz</td>
			<td style="width:119px;">RS-7114</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">delicate curved hemostatic forceps</td>
			<td>Miltex</td>
			<td style="width:119px;">&#160;7-4</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">serrefine curved, very delicate micro clamp</td>
			<td>Roboz</td>
			<td style="width:119px;">RS-5471</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">micro dissecting hook</td>
			<td>Miltex</td>
			<td style="width:119px;">19-220</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">angled on edge micro dissecting spring scissor</td>
			<td>Roboz</td>
			<td style="width:119px;">RS-5618</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">light operating scissor</td>
			<td>Roboz</td>
			<td style="width:119px;">RS-6750</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">scalpel handle and blade (#10)</td>
			<td>Cincinnati Surgical</td>
			<td style="width:119px;">RS-9843</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">pack of 4-0 silk suture with curved needle</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td style="width:119px;">FS-2</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">straight micro suturing needle holder</td>
			<td>Roboz</td>
			<td style="width:119px;">RS-6410</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">wound clip</td>
			<td>Stoelting</td>
			<td style="width:119px;">59027</td>
			<td>surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">sterile gauze 2&#34;x2&#34;&#160;</td>
			<td>Dynarex</td>
			<td style="width:119px;">3362</td>
			<td>consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">gauze 4&#34;x4&#34;&#160;</td>
			<td>Covidien</td>
			<td style="width:119px;">2556</td>
			<td>consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Anesthesia vaporizer</td>
			<td>Surgivet</td>
			<td style="width:119px;">V703001</td>
			<td>equipment</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">lucite box</td>
			<td>Custom</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>equipment</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">isoflurane</td>
			<td>Baxter</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>equipment</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">downdraft Table</td>
			<td>Airscience</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>equipment</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">table top surgical platform</td>
			<td>Custom</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>equipment</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">arterial Catheter</td>
			<td>Custom</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">venous Catheter</td>
			<td>Custom</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>consumable</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Data Acquisition System</td>
			<td style="width:131px;">ADInstruments</td>
			<td style="width:119px;">Powerlab 16/30</td>
			<td>equipment</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">Data Analysis software</td>
			<td style="width:131px;">ADInstruments</td>
			<td style="width:119px;">LabChart v7.3</td>
			<td>equipment</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:299px;">Programmable infusion pumps</td>
			<td style="width:131px;">Harvard Apparatus</td>
			<td style="width:119px;">PHD Ultra</td>
			<td>equipment</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

catheterization of the carotid artery and jugular vein to perform hemodynamic measures, infusions and blood sampling in a conscious rat model

Kritik hastalık incelemek için küçük bir hayvan modelinin başarısı, kısmen, insan durumunu simüle etmek modelin yeteneğine bağlıdır. Bakteri bilinen bir miktarda içi trakeal aşılama başarıyla sonra sepsis içine geliştirir pnömoni patogenezi yeniden oluşturmak için kullanılır olmuştur. Hemodinamik parametreleri İzleme ve antibiyotikler, sıvı ve kan basıncını korumak için uyuşturucu yapmak ama bu modelde rutin destekleyici bakım taklit için kritik infüzyonu dahil olmak üzere standart klinik tedavi sağlayarak böylece arteriyel ve venöz damar erişim gerektirir. Video bir anestezi sıçan karotis arter ve juguler ven kateteri sık yerleştirilmesi için cerrahi teknik detayları. 72 saat geri kazanma periyodunu takiben, hayvanlar yeniden anestezi ve hemodinamik izleme sistemine takılan kateterlerin bağlayan kemirgen muhafazaya bağlı bir bağlayıcı ve döner kurulum bağlı. Bu kurulum serbest hareketine izin verirsürekli sıvı ve ilaç beslerken, baskılar izleme (antibiyotikler, vazopressörler) ve kan örneklemesi yapılırken çalışma sırasında sıçan.

Damar basıncı değişikliği hemodinamik dalga formları ile temsil edilen elektrik sinyalleri haline dönüştürür sıvı dolu, kateter yolu ile (Şekil 1) iletilir ve dönüştürülür (Şekil 2, 3). Vasküler erişim olmadan, bu önlemlerin yapılamadı. Dalga Gerçek zamanlı streaming temelini yenmek için bir ritmi değişikliklere (Şekil 2) tespiti ve analizi için izin verir. Dalga zaman ölçeğini Sıkıştırma uzun süre (gün dakika) üzerinde meydana gelen değişiklikleri vazopressör infüzyon oranlarındaki değişikliklerle ilişkili olabilir (Şekil 3, üst 4 dalga) (Şekil 3, düşük 4 dalga) ölçülmesi için izin verir. <img alt="Şekil 1," src="/files/ftp_upload/51881/51881fig1.jpg" /> Şekil 1. Kateter Tasarım: arteriyel ve venöz kateter PU, poliüretan bileşenlerinin Detayları;. PE, polietilen (segment uzunluğu) <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51881/51881fig1highres.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="Şekil 2," src="/files/ftp_upload/51881/51881fig2.jpg" /> Şekil 7 sn boyunca 4 tipik kemirgenler 7 gün sonrası kateterizasyon 2. Gerçek zamanlı MAP dalga. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51881/51881fig2highres.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="Şekil 3," src="/files/ftp_upload/51881/51881fig3.jpg" /> 1 saat boyunca 4 tipik kemirgenler (üst 4 dalga) 7 gün sonrası kateterizasyon Şekil 3. Zaman-sıkıştırılmış MAP dalga. MAP (düşük 4 dalga formları) ortalama zaman, bu değer tetik için kullanılır KATIYOR yüksek (&lt;90 mmHg) düşük (&lt;100 mmHg) veya stop (&gt; 110) infüzyon pompası akış yanıtı. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51881/51881fig3highres.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Catheterization of the Carotid Artery and Jugular Vein to Perform Hemodynamic Measures, Infusions and Blood Sampling in a Conscious Rat Model at JoVE.com

Catheterization of the Carotid Artery and Jugular Vein to Perform Hemodynamic Measures, Infusions and Blood Sampling in a Conscious Rat Model

Vascular accesses to measure hemodynamics, provide fluids and perform blood sampling are important to any small animal model study. We present a technique for implanting catheters into the carotid artery and the common jugular vein in an anesthetized rat for connecting to a system to perform monitoring, infusions and sampling.

Karotis Arter ve Ven Juguler kateterizasyon bir Bilinçli Rat Modelinde, İnfüzyonları ve Kan Örnekleme hemodinamik Tedbirleri Gerçekleştirme

The success of a small animal model to study critical illness is, in part, dependent on the ability of the model to simulate the human condition. ...

catheterization-carotid-artery-jugular-vein-to-perform-hemodynamic

Research

JoVE Journal

Medicine

71.0K Görüntüleme.  National Institutes of Health. Vascular accesses to measure hemodynamics, provide fluids and perform blood sampling are important to any small animal model study. We present a technique for implanting catheters into the carotid artery and the common jugular vein in an anesthetized rat for connecting to a system to perform monitoring, infusions and sampling.

Video: Catheterization of the Carotid Artery and Jugular Vein to Perform Hemodynamic Measures, Infusions and Blood Sampling in a Conscious Rat Model

Femoral Arterial and Venous Catheterization for Blood Sampling, Drug Administration and Conscious Blood Pressure and Heart Rate Measurements

In multiple fields of study, access to the circulatory system in laboratory studies is necessary. Pharmacological studies in rats using chronically implanted catheters permit a researcher to effectively and humanely administer substances, perform repeated blood sampling and assists in conscious direct measurements of blood pressure and heart rate. Once the catheter is implanted long-term sampling is possible. Patency and catheter life depends on multiple factors including the lock solution used, flushing regimen and catheter material. This video will demonstrate the methodology of femoral artery and venous catheterization of the rat. In addition the video will demonstrate the use of the femoral venous and arterial catheters for blood sampling, drug administration and use of the arterial catheter in taking measurements of blood pressure and heart rate in a conscious freely-moving rat. A tether and harness attached to a swivel system will allow the animal to be housed and have samples taken by the researcher with minimal disruption to the animal. To maintain patency of the catheter, careful daily maintenance of the catheter is required using lock solution (100 U/ml heparinized saline), machine-ground blunt tip syringe needles and the use of syringe filters to minimize potential contamination. With careful aseptic surgical techniques, proper catheter materials and careful catheter maintenance techniques, it is possible to sustain patent catheters and healthy animals for long periods of time (several weeks).

Chronic catheterization of blood vessels in the rat is often required for administration of substances, obtain blood sample over a period of time or for direct conscious blood pressure measurements. Femoral arterial catheterization of the rat and corresponding measurements of blood pressure in the conscious animal will be demonstrated.

Kan Örnekleme, İlaç İdaresi ve Bilinçli Kan Basıncı ve Nabız ölçümleri Femoral Arter ve Venöz Kateterizasyon

In multiple fields of study, access to the circulatory system in laboratory studies is necessary. Pharmacological studies in rats using chronically ...

Tıp

Training a Sophisticated Microsurgical Technique: Interposition of External Jugular Vein Graft in the Common Carotid Artery in Rats

Neointimal hyperplasia is one the primary causes of stenosis in arterialized veins that are of great importance in arterial coronary bypass surgery, in peripheral arterial bypass surgery as well as in arteriovenous fistulas.1-5 The experimental procedure of vein graft interposition in the common carotid artery by using the cuff-technique has been applied in several research projects to examine the aetiology of neointimal hyperplasia and therapeutic options to address it. 6-8 The cuff prevents vessel anastomotic remodeling and induces turbulence within the graft and thereby the development of neointimal hyperplasia.
Using the superior caval vein graft is an established small-animal model for venous arterialization experiment.9-11 This current protocol refers to an established jugular vein graft interposition technique first described by Zou et al., 9 as well as others.12-14 Nevertheless, these cited small animal protocols are complicated.
To simplify the procedure and to minimize the number of experimental animals needed, a detailed operation protocol by video training is presented. This video should help the novice surgeon to learn both the cuff-technique and the vein graft interposition. Hereby, the right external jugular vein was grafted in cuff-technique in the common carotid artery of 21 female Sprague Dawley rats categorized in three equal groups that were sacrificed on day 21, 42 and 84, respectively. Notably, no donor animals were needed, because auto-transplantations were performed. The survival rate was 100 % at the time point of sacrifice. In addition, the graft patency rate was 60 % for the first 10 operated animals and 82 % for the remaining 11 animals. The blood flow at the time of sacrifice was 8&plusmn;3 ml/min. In conclusion, this surgical protocol considerably simplifies, optimizes and standardizes this complicated procedure. It gives novice surgeons easy, step-by-step instruction, explaining possible pitfalls, thereby helping them to gain expertise fast and avoid useless sacrifice of experimental animals.

Neointimal hyperplasia is the primary cause of stenosis in arterialized veins. We propose a new protocol whereby the right external jugular vein is grafted using the cuff technique in the common carotid artery of Sprague Dawley rats. The survival rate was 100 % at the time point of sacrifice.

Sıçanlarda Common Karotid Arter interpozisyon Harici Juguler Ven Greft: Gelişmiş Mikrocerrahi Tekniği Eğitimi

Neointimal hyperplasia is one the primary causes of stenosis in arterialized veins that are of great importance in arterial coronary bypass surgery, in ...

A Murine Model of Stent Implantation in the Carotid Artery for the Study of Restenosis

Despite the considerable progress made in the stent development in the last decades, cardiovascular diseases remain the main cause of death in western countries. Beside the benefits offered by the development of different drug-eluting stents, the coronary revascularization bears also the life-threatening risks of in-stent thrombosis and restenosis. Research on new therapeutic strategies is impaired by the lack of appropriate methods to study stent implantation and restenosis processes. Here, we describe a rapid and accessible procedure of stent implantation in mouse carotid artery, which offers the possibility to study in a convenient way the molecular mechanisms of vessel remodeling and the effects of different drug coatings.

A model of stent implantation in mouse carotid artery is described. Compared to other similar methods, this procedure is very rapid, simple and accessible, offering the possibility to study in a convenient way the vascular wall reaction to different drug-eluting stents and the molecular mechanisms of restenosis.

Restenoz Çalışmaları Karotis Arter Stent İmplantasyonu bir murin Modeli

Despite  the considerable progress made in the stent development in the last decades,  cardiovascular diseases remain the main cause of death in western ...

Adult Mouse Venous Hypertension Model: Common Carotid Artery to External Jugular Vein Anastomosis.

The understanding of the pathophysiology of brain arteriovenous malformations and arteriovenous fistulas has improved thanks to animal models. A rat model creating an artificial fistula between the common carotid artery (CCA) and the external jugular vein (EJV) has been widely described and proved technically feasible. This construct provokes a consistent cerebral venous hypertension (CVH), and therefore has helped studying the contribution of venous hypertension to formation, clinical symptoms, and prognosis of brain AVMs and dural AVFs. Equivalent mice models have been only scarcely described and have shown trouble with stenosis of the fistula. An established murine model would allow the study of not only pathophysiology but also potential genetic therapies for these cerebrovascular diseases.
We present a model of arteriovenous fistula that produces a durable intracranial venous hypertension in the mouse. Microsurgical anastomosis of the murine CCA and EJV can be difficult due to diminutive anatomy and frequently result in a non-patent fistula. In this step-by-step protocol we address all the important challenges encountered during this procedure. Avoiding excessive retraction of the vein during the exposure, using 11-0 sutures instead of 10-0, and making a carefully planned end-to-side anastomosis are some of the critical steps. Although this method requires advanced microsurgical skills and a longer learning curve that the equivalent in the rat, it can be consistently developed.
This novel model has been designed to integrate transgenic mouse techniques with a previously well-established experimental system that has proved useful to study brain AVMs and dural AVFs. By opening the possibility of using transgenic mice, a broader spectrum of valid models can be achieved and genetic treatments can also be tested. The experimental construct could also be further adapted to the study of other cerebrovascular diseases related with venous hypertension such as migraine, transient global amnesia, transient monocular blindness, etc.

We describe a method for creating a reliable model of cerebral venous hypertension in the adult mouse. This model has been widely described and tested in the rat. This new counterpart in the mice opens the possibility of using genetic modified animals and thereby broadens the applications of the model.

Yetişkin Fare Venöz Hipertansiyon Modeli: Dış Boyun Ven Anastomoza Ortak Karotis Arter.

The understanding of the pathophysiology of brain arteriovenous malformations and arteriovenous fistulas has improved thanks to animal models. A rat model ...

Carotid Artery Infusions for Pharmacokinetic and Pharmacodynamic Analysis of Taxanes in Mice

When proposing the use of a drug, drug combination, or drug delivery into a novel system, one must assess the pharmacokinetics of the drug in the study model. As the use of mouse models are often a vital step in preclinical drug discovery and drug development1-8, it is necessary to design a system to introduce drugs into mice in a uniform, reproducible manner. Ideally, the system should permit the collection of blood samples at regular intervals over a set time course. The ability to measure drug concentrations by mass-spectrometry, has allowed investigators to follow the changes in plasma drug levels over time in individual mice1, 9, 10. In this study, paclitaxel was introduced into transgenic mice as a continuous arterial infusion over three hours, while blood samples were simultaneously taken by retro-orbital bleeds at set time points. Carotid artery infusions are a potential alternative to jugular vein infusions, when factors such as mammary tumors or other obstructions make jugular infusions impractical. Using this technique, paclitaxel concentrations in plasma and tissue achieved similar levels as compared to jugular infusion. In this tutorial, we will demonstrate how to successfully catheterize the carotid artery by preparing an optimized catheter for the individual mouse model, then show how to insert and secure the catheter into the mouse carotid artery, thread the end of the catheter out through the back of the mouse&#8217;s neck, and hook the mouse to a pump to deliver a controlled rate of drug influx. Multiple low volume retro-orbital bleeds allow for analysis of plasma drug concentrations over time.

This method was developed with the goal of delivering a steady drug solution via the carotid artery, to assess the pharmacokinetics of novel drugs in mouse models.

Farelerde Taksanlar Farmakokinetik ve Farmakodinamik Analiz Karotis Arter İnfüzyonlar

When proposing the use of a drug, drug combination, or drug delivery into a novel system, one must assess the pharmacokinetics of the drug in the study ...

Vascular Balloon Injury and Intraluminal Administration in Rat Carotid Artery

The carotid artery balloon injury model in rats has been well established for over two decades. It remains an important method to study the molecular and cellular mechanisms involved in vascular smooth muscle dedifferentiation, neointima formation and vascular remodeling. Male Sprague-Dawley rats are the most frequently employed animals for this model. Female rats are not preferred as female hormones are protective against vascular diseases and thus introduce a variation into this procedure. The left carotid is typically injured with the right carotid serving as a negative control. Left carotid injury is caused by the inflated balloon that denudes the endothelium and distends the vessel wall. Following injury, potential therapeutic strategies such as the use of pharmacological compounds and either gene or shRNA transfer can be evaluated. Typically for gene or shRNA transfer, the injured section of the vessel lumen is locally transduced for 30 min with viral particles encoding either a protein or shRNA for delivery and expression in the injured vessel wall. Neointimal thickening representing proliferative vascular smooth muscle cells usually peaks at 2 weeks after injury. Vessels are mostly harvested at this time point for cellular and molecular analysis of cell signaling pathways as well as gene and protein expression. Vessels can also be harvested at earlier time points to determine the onset of expression and/or activation of a specific protein or pathway, depending on the experimental aims intended. Vessels can be characterized and evaluated using histological staining, immunohistochemistry, protein/mRNA assays, and activity assays. The intact right carotid artery from the same animal is an ideal internal control. Injury-induced changes in molecular and cellular parameters can be evaluated by comparing the injured artery to the internal right control artery. Likewise, therapeutic modalities can be evaluated by comparing the injured and treated artery to the control injured only artery.

This protocol uses a balloon catheter to cause an intraluminal injury on the rat carotid artery and henceforth elicit neointimal hyperplasia. This is a well-established model for studying the mechanisms of vascular remodeling in response to injury. It is also widely used to determine the validity of potential therapeutic approaches.

Sıçan Karotis Arter Vasküler Balon Yaralanma ve intraluminal İdaresi

The carotid artery balloon injury model in rats has been well established for over two decades. It remains an important method to study the molecular and ...

A Rabbit Model of Durable Transgene Expression in Jugular Vein to Common Carotid Artery Interposition Grafts

Vein graft bypass surgery is a common treatment for occlusive arterial disease; however, long-term success is limited by graft failure due to thrombosis, intimal hyperplasia, and atherosclerosis. The goal of this article is to demonstrate a method for placing bilateral venous interposition grafts in a rabbit, then transducing the grafts with a gene transfer vector that achieves durable transgene expression. The method allows the investigation of the biological roles of genes and their protein products in normal vein graft homeostasis. It also allows the testing of transgenes for the activities that could prevent vein graft failure, e.g., whether the expression of a transgene prevents the neointimal growth, reduces the vascular inflammation, or reduces atherosclerosis in rabbits fed with a high-fat diet. During an initial survival surgery, the segments of right and left external jugular vein are excised and placed bilaterally as reversed end-to-side common carotid artery interposition grafts. During a second survival surgery, performed 28 days later, each of the grafts is isolated from the circulation with vascular clips and the lumens are filled (via an arteriotomy) with a solution containing a helper-dependent adenoviral (HDAd) vector. After a 20-min incubation, the vector solution is aspirated, the arteriotomy is repaired, and flow is restored. The veins are harvested at time points dictated by individual experimental protocols. The 28-day delay between the graft placement and the transduction is necessary to ensure the adaptation of the vein graft to the arterial circulation. This adaptation avoids rapid loss of transgene expression that occurs in vein grafts transduced before or immediately after grafting. The method is unique in its ability to achieve durable, stable transgene expression in grafted veins. Compared to other large animal vein graft models, rabbits have advantages of low cost and easy handling. Compared to rodent vein graft models, rabbits have larger and easier-to-manipulate blood vessels that provide abundant tissue for analysis.

This method describes the placement of interposition vein grafts in rabbits, the transduction of the grafts, and the achievement of durable transgene expression. This allows the investigation of physiological and pathological roles of transgenes and their protein products in grafted veins, and testing of gene therapies for vein graft disease.

Tavşan manken dayanıklı Transgene ifade juguler ven ortak karotid arter interpozisyonu Greftler için

Vein graft bypass surgery is a common treatment for occlusive arterial disease; however, long-term success is limited by graft failure due to thrombosis, ...

Phase Contrast Magnetic Resonance Imaging in the Rat Common Carotid Artery

Phase contrast magnetic resonance imaging (PC-MRI) is a noninvasive approach that can quantify flow-related parameters such as blood flow. Previous studies have shown that abnormal blood flow may be associated with systemic vascular risk. Thus, PC-MRI can facilitate the translation of data obtained from animal models of cardiovascular diseases to pertinent clinical investigations. In this report, we describe the procedure for measuring blood flow in the common carotid artery (CCA) of rats using cine-gated PC-MRI and discuss relevant analysis methods. This procedure can be performed in a live, anesthetized animal and does not require euthanasia after the procedure. The proposed scanning parameters yield repeatable measurements for blood flow, indicating excellent reproducibility of the results. The PC-MRI procedure described in this article can be used for pharmacological testing, pathophysiological assessment, and cerebral hemodynamics evaluation.

The overall goal of this procedure is to measure the blood flow in the rat common carotid artery by using noninvasive phase contrast magnetic resonance imaging.

Faz kontrast manyetik rezonans görüntüleme sıçan ortak karotis arter

Phase contrast magnetic resonance imaging (PC-MRI) is a noninvasive approach that can quantify flow-related parameters such as blood flow. Previous ...

Microsurgical Skills of Establishing Permanent Jugular Vein Cannulation in Rats for Serial Blood Sampling of Orally Administered Drug

Blood sampling in small laboratory animals is necessary for pharmaceutical lead optimization but can cause great harm and stress to experimental animals, which could potentially affect results. The jugular vein cannulation (JVC) in rats is a widely used model for repeated blood collection but requires adequate training of surgery skills and animal care. This article details the microsurgical procedures for establishing and maintaining a permanent JVC rat model with specific focus on the placement and sealing of the jugular cannula. The importance of monitoring physiological (e.g., body weight, food, and water intake) and hematological parameters, was highlighted with results presented for 6 days post-surgery during the rat&#39;s recovery. The drug-plasma concentration-time profile of orally administered natural phenol ellagic acid was determined in the JVC rat model.

Detailed microsurgical techniques are demonstrated to establish a longer-term jugular vein cannulation rat model for sequential blood collection in the same animal. Physiological and hematological parameters have been monitored during the rat's recovery phase. This model has been applied to study pharmacokinetics of orally administered polyphenol without inducing animal stress.

Oral Yoldan Verilen İlacın Seri Kan Örneklemesi için Sıçanlarda Kalıcı Juguler Ven Kanülasyonu Oluşturma Mikrocerrahi Becerileri

Blood sampling in small laboratory animals is necessary for pharmaceutical lead optimization but can cause great harm and stress to experimental animals, ...

Repetitive Blood Sampling from the Subclavian Vein of Conscious Rat

Rats are widely used in pharmacokinetics (PK) and toxicokinetic (TK) studies that need to collect a certain amount of blood at specific time points to detect drug exposure. The rat blood sampling method determines the quality of the plasma and further affects the precision of the test results. The subclavian vein blood collection method described in this protocol collects blood samples repeatedly in the conscious state of animals to meet the needs of PK and TK tests. The skills of restraint handling and appropriate procedure of needle incision ensure the success rate of blood collection. It is easy to operate while ensuring the quality of plasma and at the same time catering to animal welfare. However, this method requires skilled operation, and an improper one may cause animal weakness, pain, lameness, and even mortality. The current method has been used in the testing facility for a 4-week oral toxicity study in Sprague Dawley (SD) rats with TK. The maximum amount of blood collected within 24 h did not exceed 20% of the animal's total blood. The animals' body weight was more than 200 g for males and females. The data showed that the animals' bodyweight increased steadily every week, and the clinical observation was normal after repetitive sample collection.

The present protocol describes a simple and efficient method for collecting blood from the subclavian vein in rats. It enables rapid, timely, and easily identifiable sampling without anesthesia and obtains high-quality blood through repetitive sample collection.

Bilinçli Sıçan Subklaviyen Veninden Tekrarlayan Kan Örneklemesi

Rats are widely used in pharmacokinetics (PK) and toxicokinetic (TK) studies that need to collect a certain amount of blood at specific time points to ...