The authors would like to acknowledge Jonathan Chou, MD for his assistance on preparation and editing of the final manuscript and Wenzhong Liu for the OCT data. We would also like to acknowledge support from the Macula Society Research Grant (AAF), support from an unrestricted grant to Northwestern University from Research to Prevent Blindness, Inc., New York, NY, USA, and support from NIH-EY019951.

Tüm hayvanlar Laboratuvar Hayvanları Bakım ve Kullanım 2013 Edition Kılavuzu uyarınca tedavi edilir, Görme ve Oftalmoloji (ARVO) Oftalmik ve Vizyon Araştırma Hayvanların Kullanım Tablosu Araştırma Derneği ve Kurumsal Hayvan tarafından onaylanmış Bakım ve Northwestern Üniversitesi için kullanın Komitesi. Not: Aşağıdaki prosedür bir operatör tamamen yapılabilir; görevler buna göre bölünmüş olan ancak çok daha verimli iki operatörleri ile yapılmaktadır. 1. Lazer ve Ön lazer Station hazırlayın <ol><li> Kolayca erişilebilir olabilir lazer ve yarık lamba yerleştirin. Lazer açın ve parametrelerini ayarlamak önceden belirlenmiş (örneğin 75 mikron spot büyüklüğü, 100 mW güç, 100 milisaniye süre). DİKKAT: emin olun operatör tüm hayvan ve lazer güvenlik, kişisel koruyucu ekipman ve ilgili lazer güvenlik işaretleri prosedür odası dışında görüntülenen giyer. <ol><li> Herhangi bir deneysel hayvan kullanmadan önce, bir kalibrasyon, deneysel olmayan fareyi kullanarak İdeal parametreler bulmak. Lazer parametreleri kullanılan lazer bağlıdır. İdeal parametreleri düzgün odaklı olduğunda sürekli &quot;balon&quot; oluşmasına neden olur düşük lazer güç ayarı tarafından belirlenir. Uygun &quot;balon&quot; oluşumu ile lezyonun örneğin videoyu izleyin. </li></ol></li><li> Anestezi, sıcak hayvan, doku mendil ve tüm göz damlaları (Tropikamid, Tetrakain ve yapay gözyaşı) operatöre ulaşılabilecek kolayca böylece ön lazer istasyonu hazırlayın. <ol><li> Hayvan sıcak olun olup anestezi kaynaklı hipotermi önlemek için ilk fare içine anestezik enjekte önce sıcaklık (37 ° C) düzeltmek için önceden ısıtılmış. </li></ol></li><li> Isı tutma ve lazer işlemi başladıktan sonra sıcak kalabilir, böylece sıcak fare sahne yerleştirin. </li></ol> 2. Fare Anestezi ve Pre-lazer Hazırlık <ol><li> Enjekte önceanestezi ing, hiçbir deformiteleri veya kornea netlik (örn katarakt) azaltmak anormallikleri vardır sağlamak için makroskopik göz inceleyin. </li><li> Fareyi tartılır. </li><li> Tutanak ağırlığı, cinsiyet, ve hayvan kimlik numarası. </li><li> 20 g bir fare için, 0.20 ml ksilazin / Ketamin Kokteyli enjekte; ağırlığı kullanılarak, anestezi, uygun miktarda hesaplamak 10 mg / kg ksilazin TD tribromoethanol 250 mg / kg (örneğin, 100 mg / kg ketamin hidroklorür kurum tarafından verilen ilkelere dayalı olarak kullanılmak üzere tribromoethanol OR 0.25 mi). Matematiksel hatalarını azaltmak amacıyla 1 g artışlarla ağırlığı başına önceden hesaplanmış dozajların bir tablo yazıldı. </li><li> Scruff fare ve enjekte anestezi intraperitoneal adımda 2.4 hesaplamalara dayalı. </li><li> Sıcak hayvan fare yerleştirin ve fare tamamen ayak tutam (yaklaşık 3-5 dakika) yoluyla pedal refleksini kontrol ederek anestezi kadar bekleyin. </li><li> Silin, bir doku Roll up ve Aspirat önlemek için farenin burun alanını korumakSıvı roll-off iyon. Rulo yan fare ve topikal anestezi için her bir göz içine tetrakain hidroklorür damla (yaklaşık 30 ul) yerleştirin. Çözelti etkili olması için 2 dakika bekleyin. </li><li> Pupil dilatasyonu topikal tropikamid bir damla adımı yineleyin 2.7. Seçenek olarak ise, dilatasyon fenilefrin hidroklorür (% 2.5) kullanımı. </li><li> Çözümler etkili olması için 2 dakika bekleyin; Bu süre boyunca sıcak üzerinde hayvan tutun. </li><li> Uygun zaman geçtikten sonra, hızlı bir şekilde fare sahnede fare koyun ve yarık lamba çene geri kalanı sahne yerleştirin. </li><li> Düşük ışık parlaklığına biyomikroskopta açın ve pupilla dilatasyonu derecesini kontrol edin. Öğrenci yeterince (yaklaşık 2,5-3 mm) dilate değilse, sıcak hayvana fare dönmek ve bekleyin. Alternatif olarak, tropikamid başka damla yönetmek. Göz yeterince dilate sonra, lazer prosedürüne devam edin. </li></ol> 3. Lazer Prosedürü Not: Diğer p emin olunersons odasında lazer korumalı yarık lamba göz parçasından uzakta koruyucu gözlük <ol><li> Bu ideal optik sinir görselleştirme (3.1.2 bakınız) konumlandırılmış böylece fare sahnede fare yerleşimini ayarlayın. <ol><li> Yatay yatıyor böylece diğer azından bir tarafında baş ve kuyruk, lamba ışın yarık dik, sahibine fare yönlendirmek. İdeal fare yerleştirme kapak kayma uygulandıktan sonra çok daha kolay optik sinir görselleştirme yapacaktır. </li><li> Daha yakın lazer operatörü baş bir ~ 170 ° &#39;lik açıyla yani hafifçe fare çevirin. </li><li> Kararlı ve nerede operatörün eli ince manipülasyon için yeterli alana sahip olacak olduğu bir pozisyonda yine lambayı yarık henüz mümkün olduğunca o fare kadar yakın olduğundan emin olun. </li></ol></li><li> Fare ideal yerleştirilmesinden sonra, bir 25 mm x 25 mm ebadındaki bir cam lamel yapay gözyaşı çözeltisi bir damla yerleştirin. <ol><li> Farenin opp suni gözyaşı çözümün bir damla yerleştirinosite göz - Bu sağlayacaktır göz sulu ve yardım gecikme katarakt olduğunu. </li></ol></li><li> Başparmak ve işaretçi parmakları arasında lamel köşesini tutun; konumu ve böylece cam iki parmak uçları arasında sıkılır. </li><li> Yavaşça destek ve el stabilizasyonu için hayvanın vücudu etrafında kalan üç parmaklarını sarın. Pozisyon eli böylece cam lamel kolayca farenin göze yerleştirilebilir. <ol><li> Bilek El titreme azaltmak için sağlam bir yüzey üzerinde stabilize olduğundan emin olun. </li></ol></li><li> Kararlı pozisyon elde edildikten sonra, dikkatle farenin gözün üzerine (hala yapışık yapay gözyaşı damla ile) cam lamel basın. <ol><li> Lamel lazer ışını yayılımını veya yansımasını önlemek amacıyla lazer ışını mümkün olduğunca dik olarak konumlandırılmış emin olun. Lamel kornea düzleştirmek için bir kontakt lens gibi davranır. </li></ol></li><li> Toggle unt odak yarık lamba ile ve serbest el ile bakmakil retina görülebilir. Retina görüntülenmiştir yere bağlı açık sarı / kırmızı renk olacak, farklı, kırmızı damarlar görünür olacaktır. </li><li> Yavaş ve dikkatli bir optik siniri görüntülenmesi kadar fare kafasını ve / veya lamel işlemek. Optik sinir o yayılan çok sayıda gemi ile, sarı renkli olacaktır. </li><li> Operatör optik sinirin görselleştirme onaylamıştır sonra, ışın odaklama lazeri açın. </li><li> Lazer ışını açıldıktan sonra, istenilen pozisyona (optik sinir yaklaşık 1 disk çapı) ışını odaklama lazer manevra. </li><li> Göz fundus RPE üzerinde lazer ışınını odaklanın. Uygun odak keskin ve net lazer ışını sahip sağlanır. Işını amaçlayan yarık lamba odak veya yeniden pozisyon cam lamel geçiş, oval ya da odak dışı görünüyorsa. </li><li> Hedefleme ışını RPE odaklanmıştır sonra, lazerin ayak tetiği kullanarak lazer yönetimini başlatmak. <ol><li> Intraoküler önlemek için retina damarları önlemek için emin olun oraji. </li></ol></li><li> Hemen lazer uygulamasından sonra bir kabarcığın görünüm için izleyin. Lazer atış hatları net ve hiçbir şekilde puslu olmamalıdır. <ol><li> Lazer atış kabarcığı oluşumuna yol açmaz ise, ya da darbe alan (genel ort başarılı etkisi net, keskin tanımlı sınırına kötü tanımlanmış dairesel kenarlıklı bulutlu bir görünüm) puslu görünüyor, ya da kanama lazer uygulamasından sonra görülürse, DEĞİL yapmak gelecek analizi için bu lezyonlar bulunur. </li></ol></li><li> Tekrarlayın istenen tüm CNV pozisyonları için 3.10-3.12 (genellikle 3&#39;te, 6, 9, ve optik sinir etrafında 00:00 pozisyonları) yineleyin. Lazer indüksiyonlar optik sinir yaklaşık aynı mesafede uygulanırsa, yeniden yoğunlaşma gerekli olmamalıdır. Ancak, retina bulunabilecek ışını refocusing ardışık lazer idareleri arasında gerekli olabilir fare göz ve küçük değişimlerin güçlü eğrilik. </li><li> Bir dizüstü konumu ve e sonucu rekorach lazer atış idaresi ve sonuç (başarılı, puslu, kanama vb.) göz için her uygulanan vurdu. Kullanılmadığı zaman stand-by modunda lazer yerleştirmek emin olun. </li><li> Gerekirse istikrar ve yeni bir lamel için ters elinizi kullanarak, fare, diğer göz için 3.1-3.14 tekrarlayın. </li><li> İstenen tüm lazer çekim uygulanır sonra lazer kapatın ve yarık-lamba. </li><li> Anestezi kurtarma için sıcak üzerinde lamel ve yer fareyi atın. Makroskobik herhangi bir yaralanma için göz kontrol ve sulandırılmış göz tutmak ve potansiyel gelecek katarakt gelişimini önlemek için yapay gözyaşı çözümün bir damla yerleştirin. Fare anestezi kurtarır sonra kafese geri döner. </li></ol><table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td></td><td> AVERTIN </td><td> AVERTIN </td><td> AVERTIN </td><td> XYL / KET </td><td> XYL / KET </td></tr><tr><td> Fare Ağırlık (g) </td><td> Doz (mg / kg) </td><td&gt; Çözelti konsantrasyonu (mg / ml) </td><td> Anestetik doz (mi) </td><td> Doz (mg / kg) </td><td> Anestetik doz (mi) </td></tr><tr><td> 15 </td><td> 250 </td><td> 20 </td><td> 0,1875 </td><td> 100 mg / kg ketamin; 10 mg / kg ksilazin </td><td> 0.15 </td></tr><tr><td> 16 </td><td> 250 </td><td> 20 </td><td> 0,2 </td><td> 100 mg / kg ketamin; 10 mg / kg ksilazin </td><td> 0.16 </td></tr><tr><td> 17 </td><td> 250 </td><td> 20 </td><td> 0,2125 </td><td> 100 mg / kg ketamin; 10 mg / kg ksilazin </td><td> 0.17 </td></tr><tr><td> 18 </td><td> 250 </td><td> 20 </td><td> 0.225 </td><td> 100 mg / kg ketamin; 10 mg / kg ksilazin </td><td> 0.18 </td></tr><tr><td> 19 </td><td> 250 </td><td> 20 </td><td> 0,2375 </td><td> 100 mg / kg ketamin; 10 mg / kg ksilazin </td><td> 0.19 </td></tr><tr><td> 20 </td><td> 250 </td><td> 20 </td><td> 0.25</td><td> 100 mg / kg ketamin; 10 mg / kg ksilazin </td><td> 0,2 </td></tr><tr><td> 21 </td><td> 250 </td><td> 20 </td><td> 0,2625 </td><td> 100 mg / kg ketamin; 10 mg / kg ksilazin </td><td> 0.21 </td></tr><tr><td> 22 </td><td> 250 </td><td> 20 </td><td> 0.275 </td><td> 100 mg / kg ketamin; 10 mg / kg ksilazin </td><td> 0.22 </td></tr><tr><td> 23 </td><td> 250 </td><td> 20 </td><td> 0,2875 </td><td> 100 mg / kg ketamin; 10 mg / kg ksilazin </td><td> 0.23 </td></tr><tr><td> 24 </td><td> 250 </td><td> 20 </td><td> 0.3 </td><td> 100 mg / kg ketamin; 10 mg / kg ksilazin </td><td> 0.24 </td></tr><tr><td> 25 </td><td> 250 </td><td> 20 </td><td> 0.3125 </td><td> 100 mg / kg ketamin; 10 mg / kg ksilazin </td><td> 0.25 </td></tr><tr><td> 26 </td><td> 250 </td><td> 20 </td><td> 0.325 </td><td> 100 mg / kg ketamin; 10 mg / kg ksilazin </td><td> 0.26 </td></tr><tr><td> 27 </td><td> 250 </td><td&gt; 20 </td><td> 0,3375 </td><td> 100 mg / kg ketamin; 10 mg / kg ksilazin </td><td> 0.27 </td></tr><tr><td> 28 </td><td> 250 </td><td> 20 </td><td> 0.35 </td><td> 100 mg / kg ketamin; 10 mg / kg ksilazin </td><td> 0.28 </td></tr><tr><td> 29 </td><td> 250 </td><td> 20 </td><td> 0,3625 </td><td> 100 mg / kg ketamin; 10 mg / kg ksilazin </td><td> 0.29 </td></tr><tr><td> 30 </td><td> 250 </td><td> 20 </td><td> 0.375 </td><td> 100 mg / kg ketamin; 10 mg / kg ksilazin </td><td> 0.3 </td></tr></tbody></table> Tablo 1: XyIKet Doz Şeması.

<ol><li>Bressler, N. M., Bressler, S. B., Fine, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Age+related+macular+degeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Surv+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Age related macular degeneration.</a> Surv Ophthalmol. 32, 375-413 (1988).</li>
<li>Congdon, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Causes+and+Prevalence+of+Visual+Impairment+Among+Adults+in+the+United+States%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Causes and Prevalence of Visual Impairment Among Adults in the United States.</a> Arch Ophthalmol. 122, 477-485 (2004).</li>
<li>Jager, R. D., Mieler, W. F., Miller, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Age-Related+Macular+Degeneration%5BTitle%5D)+AND+%22NEJM%22%5BJournal%5D)">Age-Related Macular Degeneration.</a> NEJM. 358, 2606-2617 (2008).</li>
<li>Poor, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reliability+of+the+Mouse+Model+of+Choroidal+Neovascularization+Induced+by+Laser+Photocoagulation%5BTitle%5D)+AND+%22IOVS%22%5BJournal%5D)">Reliability of the Mouse Model of Choroidal Neovascularization Induced by Laser Photocoagulation.</a> IOVS. 55, 6525-6534 (2014).</li>
<li>Ryan, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+development+of+an+experimental+model+of+subretinal+neovascularization+in+disciform+macular+degeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Trans+Am+Ophthalmol+Soc%22%5BJournal%5D)">The development of an experimental model of subretinal neovascularization in disciform macular degeneration.</a> Trans Am Ophthalmol Soc. 77, 707-745 (1979).</li>
<li>Miller, H., Miller, B., Ishibashi, T., Ryan, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathogenesis+of+laser+induced+choroidal+subretinal+neovascularization%5BTitle%5D)+AND+%22IOVS%22%5BJournal%5D)">Pathogenesis of laser induced choroidal subretinal neovascularization.</a> IOVS. 31, 899-908 (1990).</li>
<li>Pennesi, M. E., Neuringer, M., Courtney, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+age+related+macular+degeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Molr+Aspects+Mede%22%5BJournal%5D)">Animal models of age related macular degeneration.</a> Molr Aspects Mede. 33, 487-509 (2012).</li>
<li>Grossniklaus, H. E., Kang, S. J., Berglin, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+Models+of+Choroidal+and+Retinal+Neovascularization%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Retin+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Animal Models of Choroidal and Retinal Neovascularization.</a> Prog Retin Eye Res. 29, 500-519 (2010).</li>
<li>Zeiss, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((REVIEW+PAPER%3A+Animals+as+Models+of+Age+Related+Macular+Degeneration+An+Imperfect+Measure+of+the+Truth%5BTitle%5D)+AND+%22Vet+Pathol+Online%22%5BJournal%5D)">REVIEW PAPER: Animals as Models of Age Related Macular Degeneration An Imperfect Measure of the Truth.</a> Vet Pathol Online. 47, 396-413 (2010).</li>
<li>Tobe, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+Disruption+of+the+FGF2+Gene+Does+Not+Prevent+Choroidal+Neovascularization+in+a+Murine+Model%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Targeted Disruption of the FGF2 Gene Does Not Prevent Choroidal Neovascularization in a Murine Model.</a> Am J Pathol. 153, 1641-1646 (1998).</li>
<li>He, L., Marneros, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Macrophages+Are+Essential+for+the+Early+Wound+Healing+Response+and+the+Formation+of+a+Fibrovascular+Scar%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Macrophages Are Essential for the Early Wound Healing Response and the Formation of a Fibrovascular Scar.</a> Am J Pathol. 182, 2407-2417 (2013).</li>
<li>Hoerster, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+and+ex+vivo+characterization+of+laser+induced+choroidal+neovascularization+variability+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Graefes+Arch+Clin+Exp+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">In vivo and ex vivo characterization of laser induced choroidal neovascularization variability in mice.</a> Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 250, 1579-1586 (2012).</li>
<li>Jawad, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Role+of+Macrophage+Class+A+Scavenger+Receptors+in+a+Laser+Induced+Murine+Choroidal+Neovascularization+Model%5BTitle%5D)+AND+%22IOVS%22%5BJournal%5D)">The Role of Macrophage Class A Scavenger Receptors in a Laser Induced Murine Choroidal Neovascularization Model.</a> IOVS. 54, 5959-5970 (2013).</li>
<li>Lambert, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+induced+choroidal+neovascularization+model+to+study+age+related+macular+degeneration+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protocols%22%5BJournal%5D)">Laser induced choroidal neovascularization model to study age related macular degeneration in mice.</a> Nat Protocols. 8, 2197-2211 (2013).</li>
<li>Sakurai, E., Anand, A., Ambati, B. K., van Rooijen, N., Ambati, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Macrophage+Depletion+Inhibits+Experimental+Choroidal+Neovascularization%5BTitle%5D)+AND+%22IOVS%22%5BJournal%5D)">Macrophage Depletion Inhibits Experimental Choroidal Neovascularization.</a> IOVS. 44, 3578-3585 (2003).</li>
<li>Espinosa Heidmann, D. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Macrophage+Depletion+Diminishes+Lesion+Size+and+Severity+in+Experimental+Choroidal+Neovascularization%5BTitle%5D)+AND+%22IOVS%22%5BJournal%5D)">Macrophage Depletion Diminishes Lesion Size and Severity in Experimental Choroidal Neovascularization.</a> IOVS. 44, 3586-3592 (2003).</li>
<li>Giani, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+Vivo+Evaluation+of+Laser+Induced+Choroidal+Neovascularization+Using+Spectral+Domain+Optical+Coherence+Tomography%5BTitle%5D)+AND+%22IOVS%22%5BJournal%5D)">In Vivo Evaluation of Laser Induced Choroidal Neovascularization Using Spectral Domain Optical Coherence Tomography.</a> IOVS. 52, 3880-3887 (2011).</li>
<li>Kwak, N., Okamoto, N., Wood, J. M., Campochiaro, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VEGF+Is+Major+Stimulator+in+Model+of+Choroidal+Neovascularization%5BTitle%5D)+AND+%22IOVS%22%5BJournal%5D)">VEGF Is Major Stimulator in Model of Choroidal Neovascularization.</a> IOVS. 41, 3158-3164 (2000).</li>
<li>Reich, S. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+interfering+RNA+%28siRNA%29+targeting+VEGF+effectively+inhibits+ocular+neovascularization+in+a+mouse+model%5BTitle%5D)+AND+%22Molr+Vis%22%5BJournal%5D)">Small interfering RNA (siRNA) targeting VEGF effectively inhibits ocular neovascularization in a mouse model.</a> Molr Vis. 9, 210-216 (2003).</li>
<li>Baffi, J., Byrnes, G., Chan, C. C., Csaky, K. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Choroidal+Neovascularization+in+the+Rat+Induced+by+Adenovirus+Mediated+Expression+of+Vascular+Endothelial+Growth+Factor%5BTitle%5D)+AND+%22IOVS%22%5BJournal%5D)">Choroidal Neovascularization in the Rat Induced by Adenovirus Mediated Expression of Vascular Endothelial Growth Factor.</a> IOVS. 41, 3582-3589 (2000).</li>
<li>Claybon, A., Bishop, A. J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissection+of+a+Mouse+Eye+for+a+Whole+Mount+of+the+Retinal+Pigment+Epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22JoVE%22%5BJournal%5D)">Dissection of a Mouse Eye for a Whole Mount of the Retinal Pigment Epithelium.</a> JoVE. , 2563(2011).</li>
<li>Espinosa-Heidmann, D. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Age+as+an+Independent+Risk+Factor+for+Severity+of+Experimental+Choroidal+Neovascularization%5BTitle%5D)+AND+%22IOVS%22%5BJournal%5D)">Age as an Independent Risk Factor for Severity of Experimental Choroidal Neovascularization.</a> IOVS. 43, 1567-1573 (2002).</li>
<li>Zhu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improvement+and+Optimization+of+Standards+for+a+Preclinical+Animal+Test+Model+of+Laser+Induced+Choroidal+Neovascularization%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Improvement and Optimization of Standards for a Preclinical Animal Test Model of Laser Induced Choroidal Neovascularization.</a> PLoS ONE. 9, e94743(2014).</li>
<li>Weinstock, M., Stewart, H. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Occurrence+in+rodents+of+reversible+drug+induced+opacities+of+the+lens%5BTitle%5D)+AND+%22British+J+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Occurrence in rodents of reversible drug induced opacities of the lens.</a> British J Ophthalmol. 45, 408-414 (1961).</li>
<li>Ridder III, W. H., Nusinowitz, S., Heckenlively, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Causes+of+Cataract+Development+in+Anesthetized+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Causes of Cataract Development in Anesthetized Mice.</a> Exp Eye Res. 75, 365-370 (2002).</li>
</ol>

The authors declare they have no competing financial interests.

Başarılı lazer indüksiyon sonrası lazer teslimat ve sonuçtaki KNV lezyon gelişimini etkileyen birden fazla faktör vardır. Bu faktörler kontrollü ve en güvenilir sonuçlar elde etmek için standardize edilmelidir. Bu faktörlerin en uygun fare seçimi (genotipi, yaş, cinsiyet ve), anestezik seçimi, ve lazer ayarları vardır. Kullanılan özel fare modeli KNV gelişme seyri üzerinde önemli bir etkiye sahip olabilir. En yaygın olarak kullanılan genotip C57BL / 6 faredir. Hayv...

Yaşa bağlı makula dejenerasyonu (AMD) 50 1-3 yaş üstü bireylerde körlüğün önde gelen nedenlerinden biridir. AMD iki formda sınıflandırılabilir: atrofik (&quot;kurutmak&quot;) AMD ve neovasküler (&quot;ıslak&quot;) AMD. Eski ikinci sızıntı, kanama ve fibrozis neden dış retina katmanlarının içine koroid anormal damarların işgali ile karakterize edilirken, retina pigment epiteli (RPE), koriokapillaris ve fotoreseptör coğrafi atrofi ile karakterize ve sonuçta bir körlük 1,2 yol açar. İki formları, neovasküler AMD görme kaybı 1 çoğunluğu oluşturuyor. Onun atrofik muadili şu anda hiçbir tıbbi tedaviler 3 kanıtlamıştır oysa Neyse ki, bu form sayısız etkili farmakolojik tedavi seçenekleri vardır. Neovasküler formu kolaylıkla bir hayvan modelinde yeniden teslim oldu edilmiştir çünkü Ayrıca, temel A&#39;ya daha yaygın olarak erişilebilir olmuşturYeni tedaviler 4 geliştirmek için altta yatan patolojik mekanizmaların keşfetmek MD araştırma. Deneysel koroid neovaskülarizasyon (KNV) ilk hayvan modeli Ryan ve arkadaşları tarafından geliştirilmiştir. insan olmayan primatlar 5. Neovasküler AMD görülene benzer anjiyojenez ile sonuçlanan bir lokal enflamatuar bir yanıt neden olduğu lazer fotokoagülasyon ile Bruch zarının Bu model bağlı kopma. Anjiyogenez sonrası lazer indüksiyon histopatolojik ilerleme modelinin geçerliliğini 6 doğruladı neovasküler AMD, taklit bulunmuştur. Insan olmayan primatlar insanlara en çok benzeyen anatomi sunuyoruz, ama ne yazık ki, kolayca genetik manipüle edilemez, bakımı pahalı ve hastalığın ilerlemesi 7 yavaş bir zaman kursumuz var. Buna karşın bir, kemirgen modelleri çok daha düşük maliyetli sürdürmek, genetik göreli kolaylıkla manipüle edilebilir, ve cou hızlı bir çok şey varhastalık ilerlemesinin rse (deney ay karşısında haftalık bir zaman ölçeğinde yapılabilir). Bu albino hayvanlarda görselleştirmek için çok zor olduğu gibi bu deneyler sadece pigmentli kemirgenlerde yapılmalıdır. İlk sonlarında 90 en 10 Campochiaro grubu tarafından geliştirilen fare lazer kaynaklı CNV modeli, son çalışmalar 11-16 çoğunda baskın bir hayvan modeli olarak büyümüştür. Nedeniyle CNV karmaşık ve hala belirsiz patogenez, lazer modeli gelecekte insan kullanımı için yeni tedavi modaliteleri değerlendirmek için anjiyogenez sürüş moleküler mekanizmaları inceleyerek kadar ıslak AMD araştırma tüm yönleriyle uygulanmıştır. Örneğin, Sakurai ve diğ. ve Espinoza-HEIDMANN ve diğ. transgenik fareler ve farmakolojik tükenme tedavileri 15, 16 kullanılarak KNV gelişimi üzerine makrofajlar etkisini araştırmak için lazer modeli kullanılır. Giani ve ark. ve Hoerster diğ. görüntüye kullanılan optik koherens tomografi (OCT) lazer kaynaklı KNV ilerlemesini karakterize ve Ekim görüntüleme 12,17 görülen bulgulara histopatolojik bulguları karşılaştırmak için bir çaba CNV. Son olarak, anti-anjiyogenik ajanlar intravitreal enjeksiyonunu içeren çalışmalar insan denemeleri için ön koşul olarak kullanılan ve neovasküler AMD 10,18,19 yönetiminde kullanılan anti-VEGF ajanların ilk nesil gelişmekte hayati önem oylandı. Deneysel CNV için alternatif modeller KNV ikna etmek için cerrahi yöntemler kullanmaktadır. Bu prosedür, pro-anjiyojenik maddeler enjekte içerir (VEGF aşırı eksprese eden örneğin, rekombinant viral vektörler, RPE hücreleri ve / veya polistiren boncuklar subretinal enjeksiyon) anjiyojenezi 8,20 neden amacıyla, neovasküler AMD görülen artış olarak VEGF ifadesini taklit etmek. Bununla birlikte, bu yöntem, neovaskülarizasyonun büyük ölçüde düşük bir oranda verir; Bu çalışmalar, bu KNV gösterdiC57 / BL6 fareleri iki ayrı fare 8,14 aynı gerginlik lazer fotokoagülasyon yönteminde görülen ~% 70 başarı oranı karşı enjeksiyonlar 31% &#39;unda görülür. Bu nedenlerden dolayı, ve insan olmayan primatlar karşı kemirgenler kullanmanın avantajları göz önüne alındığında, lazer kaynaklı KNV&#39;ların fare modeli en neovasküler AMD çalışma deneyleri 8 KNV&#39;nin standart hayvan modeli haline gelmiştir. Fare gözü ile çalışmak için bir minik, narin bir dokudur. Retina görselleştirmek için göz Manevra zordur ve ustalık elde edilene kadar çok pratik gerektirir. Bu görev hakim ve baskın olmayan el ile öğrenmiş olmalıdır gerçeği ile karmaşık. Retina görselleştirmek için gerekli ince hareketleri öğrenmiş edildikten sonra Dahası, her iki el ve lazer işletim ayak pedalı arasındaki koordinasyon önemlidir. Bu yazıda, lazer kaynaklı KNV yordam katılan fiziksel manipülasyonlar tüm öğrenme zorlukları damıtmak çalıştıoperatörler bu model ile hızlı bir başarı elde yardımcı olacak bir rehber haline edure.

<table><tbody><tr><td>532 nm (green) argon ophthalmic laser</td><td>IRIDEX</td><td>GLx</td><td>any ophthalmic 532 nm (green) argon laser can be used</td></tr><tr><td>slit lamp</td><td>Carl Zeiss</td><td>30SL-M</td><td>any slit lamp can be used as long as it is compatible with the laser</td></tr><tr><td>tribromoethanol</td><td>Sigma</td><td>T48402-25G</td><td>used to make anesthetic</td></tr><tr><td>tert-amyl alcohol</td><td>Sigma</td><td>152463-1L</td><td>used to make anesthetic</td></tr><tr><td>amber glass vials + septa</td><td>Wheaton</td><td>WH-223696</td><td>tribromoethanol storage</td></tr><tr><td>tissue wipes</td><td>VWR</td><td>82003-820</td><td>miscellaneous&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>1% Tropicamide</td><td>Falcon Pharmaceuticals</td><td>RXD2974251</td><td>pupillary dilation</td></tr><tr><td>0.5% Tetracaine hydrochloride</td><td>Alcon</td><td>&amp;nbsp;0065-0741-12</td><td>topical anesthesia</td></tr><tr><td>artificial tears</td><td>Alcon</td><td>&amp;nbsp;58768-788-25</td><td>hydration</td></tr><tr><td>heat therapy pump (for animal warming)</td><td>Kent Scientific</td><td>HTP-1500</td><td>used to maintain animal body temp</td></tr><tr><td>warming pad</td><td>Kent Scientific</td><td>TPZ-0510EA</td><td>maintains animal body temperature</td></tr><tr><td>30 G insulin needles</td><td>BD</td><td>328418</td><td>IP anesthesia injection</td></tr><tr><td>scale</td><td>American Weigh Scale</td><td>AWS-1KG-BLK</td><td>mouse weighing</td></tr><tr><td>cover slip (25 mm x 25 mm)</td><td>VWR</td><td>48366089</td><td>flatten cornea to visualize mouse retina</td></tr><tr><td>xylazine</td><td>obtained from institution</td><td>obtained from institution</td><td>anesthesia</td></tr><tr><td>ketamine</td><td>obtained from institution</td><td>obtained from institution</td><td>anesthesia</td></tr><tr><td>Volocity</td><td>PerkinElmer</td><td></td><td>used for volumetric re-construction</td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>National Institutes of Health</td><td></td><td>used for image analysis</td></tr></tbody></table>

a mouse model for laser-induced choroidal neovascularization

The mouse laser-induced choroidal neovascularization (CNV) model has been a crucial mainstay model for neovascular age-related macular degeneration (AMD) research. By administering targeted laser injury to the RPE and Bruch&#8217;s membrane, the procedure induces angiogenesis, modeling the hallmark pathology observed in neovascular AMD. 
First developed in non-human primates, the laser-induced CNV model has come to be implemented into many other species, the most recent of which being the mouse. Mouse experiments are advantageously more cost-effective, experiments can be executed on a much faster timeline, and they allow the use of various transgenic models. The miniature size of the mouse eye, however, poses a particular challenge when performing the procedure. Manipulation of the eye to visualize the retina requires practice of fine dexterity skills as well as simultaneous hand-eye-foot coordination to operate the laser. However, once mastered, the model can be applied to study many aspects of neovascular AMD such as molecular mechanisms, the effect of genetic manipulations, and drug treatment effects. 
The laser-induced CNV model, though useful, is not a perfect model of the disease. The wild-type mouse eye is otherwise healthy, and the chorio-retinal environment does not mimic the pathologic changes in human AMD. Furthermore, injury-induced angiogenesis does not reflect the same pathways as angiogenesis occurring in an age-related and chronic disease state as in AMD.
Despite its shortcomings, the laser-induced CNV model is one of the best methods currently available to study the debilitating pathology of neovascular AMD. Its implementation has led to a deeper understanding of the pathogenesis of AMD, as well as contributing to the development of many of the AMD therapies currently available.

KNV lezyonlarının Niceleme CNV gemileri etiket immünoflüoresans boyama kullanarak düz monte choroids analizi yoluyla yapılabilir. Doku hazırlık iki en sık kullanılan yöntemler hemen endotel hücre işaretleyici ile hayvan kurban, ya da ölüm sonrası immün boyama önce perfüzyon yoluyla yapılan FITC-dekstran etiketleme vardır. Bu yöntemlerin ikisi de detaylı 13,14,21 daha önce tarif edilmiştir, sırasıyla her biri 1 ve 2 örneklerini gös...

Watch this Scientific Journal Video about A Mouse Model for Laser-induced Choroidal Neovascularization at JoVE.com

A Mouse Model for Laser-induced Choroidal Neovascularization

Here, we present the mouse laser-induced choroidal neovascularization (CNV) protocol, an experimental model that re-creates the vascular hallmarks of neovascular age-related macular degeneration (AMD). Once mastered, it can reliably and effectively induce CNV as a model system to test various experimental measures.

Lazer kaynaklı Koroid Neovaskülarizasyonlarında A Fare Modeli

The mouse laser-induced choroidal neovascularization (CNV) model has been a crucial mainstay model for neovascular age-related macular degeneration (AMD) ...

a-mouse-model-for-laser-induced-choroidal-neovascularization

Research

JoVE Journal

Medicine

17.6K Görüntüleme.  Northwestern University Feinberg School of Medicine. Here, we present the mouse laser-induced choroidal neovascularization (CNV) protocol, an experimental model that re-creates the vascular hallmarks of neovascular age-related macular degeneration (AMD). Once mastered, it can reliably and effectively induce CNV as a model system to test various experimental measures.

Video: A Mouse Model for Laser-induced Choroidal Neovascularization

Laser-Induced Chronic Ocular Hypertension Model on SD Rats

Glaucoma is one of the major causes of blindness in the world. Elevated intraocular pressure is a major risk factor. Laser photocoagulation induced ocular hypertension is one of the well established animal models. This video demonstrates how to induce ocular hypertension by Argon laser photocoagulation in rat.

Glaucoma is one of the major causes of blindness in the world. Elevated intraocular pressure is a major risk factor. Laser photocoagulation induced ocular hypertension is one of the well established animal models. This video demonstrates how to induce ocular hypertension by Argon laser photocoagulation in rat.

Lazer Kaynaklı SD Sıçanlarda Kronik Oküler Hipertansiyon Modeli

Glaucoma is one of the major causes of blindness in the world. Elevated intraocular pressure is a major risk factor. Laser photocoagulation induced ocular ...

Biyoloji

A Laser-induced Mouse Model of Chronic Ocular Hypertension to Characterize Visual Defects

Glaucoma, frequently associated with elevated intraocular pressure (IOP), is one of the leading causes of blindness. We sought to establish a mouse model of ocular hypertension to mimic human high-tension glaucoma. Here laser illumination is applied to the corneal limbus to photocoagulate the aqueous outflow, inducing angle closure. The changes of IOP are monitored using a rebound tonometer before and after the laser treatment. An optomotor behavioral test is used to measure corresponding changes in visual capacity. The representative result from one mouse which developed sustained IOP elevation after laser illumination is shown. A decreased visual acuity and contrast sensitivity is observed in this ocular hypertensive mouse. Together, our study introduces a valuable model system to investigate neuronal degeneration and the underlying molecular mechanisms in glaucomatous mice.

Chronic ocular hypertension is induced using laser photocoagulation of the trabecular meshwork in mouse eyes. The intraocular pressure (IOP) is elevated for several months after laser treatment. The decrease of visual acuity and contrast sensitivity of experimental animals are monitored using the optomotor test.

Görme Kusurları karakterize Kronik Oküler Hipertansiyon bir Lazer-kaynaklı Fare Modeli

Glaucoma, frequently associated with elevated intraocular pressure (IOP), is one of the leading causes of blindness. We sought to establish a mouse model ...

Tıp

An Alkali-burn Injury Model of Corneal Neovascularization in the Mouse

Under normal conditions, the cornea is avascular, and this transparency is essential for maintaining good visual acuity. Neovascularization (NV) of the cornea, which can be caused by trauma, keratoplasty or infectious disease, breaks down the so called &lsquo;angiogenic privilege' of the cornea and forms the basis of multiple visual pathologies that may even lead to blindness. Although there are several treatment options available, the fundamental medical need presented by corneal neovascular pathologies remains unmet. In order to develop safe, effective, and targeted therapies, a reliable model of corneal NV and pharmacological intervention is required. Here, we describe an alkali-burn injury corneal neovascularization model in the mouse. This protocol provides a method for the application of a controlled alkali-burn injury to the cornea, administration of a pharmacological compound of interest, and visualization of the result. This method could prove instrumental for studying the mechanisms and opportunities for intervention in corneal NV and other neovascular disorders.

Neovascularization (NV) of the cornea can complicate multiple visual pathologies. Utilizing a controlled, alkali-burn injury model, a quantifiable level of corneal NV can be produced for mechanistic study of corneal NV and evaluation of potential therapies for neovascular disorders.

Fare Kornea Neovaskülarizasyonunun bir Alkali-yanık Yaralanma Modeli

Under normal conditions, the cornea is avascular, and this transparency is essential for maintaining good visual acuity. Neovascularization (NV) of the ...

Implantation and Evaluation of Melanoma in the Murine Choroid via Optical Coherence Tomography

Establishing experimental choroidal melanoma models is challenging in terms of the ability to induce tumors at the correct localization. In addition, difficulties in observing posterior choroidal melanoma in vivo limit tumor location and growth evaluation in real-time. The approach described here optimizes techniques for establishing choroidal melanoma in mice via a multi-step sub-choroidal B16LS9 cell injection procedure. To enable precision in injecting into the small dimensions of the mouse uvea, the complete procedure is performed under a microscope. First, a conjunctival peritomy is formed in the dorsal-temporal area of the eye. Then, a tract into the sub-choroidal space is created by inserting a needle through the exposed sclera. This is followed by the insertion of a blunt needle into the tract and the injection of melanoma cells into the choroid. Immediately after injection, noninvasive optical coherence tomography (OCT) imaging is utilized to determine tumor location and progress. Retinal detachment is evaluated as a predictor of tumor site and size. The presented method enables the reproducible induction of choroid-localized melanoma in mice and the live imaging of tumor growth evaluation. As such, it provides a valuable tool for studying intraocular tumors.

Implantation and Evaluation of Melanoma in the Murine Choroid via Optical Coherence Tomography

The present protocol describes the implantation and evaluation of melanoma in the murine choroid utilizing optical coherence tomography.

Murin Koroidinde Melanomun İmplantasyonu ve Optik Koherens Tomografi ile Değerlendirilmesi

Establishing experimental choroidal melanoma models is challenging in terms of the ability to induce tumors at the correct localization. In addition, ...

Kanser Araştırmaları

In Vivo Multimodal Imaging and Analysis of Mouse Laser-Induced Choroidal Neovascularization Model

Laser-induced choroidal neovascularization (CNV) is a well-established model to mimic the wet form of age-related macular degeneration (AMD). In this protocol, we aim to guide the reader not simply through the technical considerations of generating laser-induced lesions to trigger neovascular processes, but rather focus on the powerful information that can be obtained from multimodal longitudinal in vivo imaging throughout the follow-up period.
The laser-induced mouse CNV model was generated by a diode laser administration. Multimodal in vivo imaging techniques were used to monitor CNV induction, progression and regression. First, spectral domain optical coherence tomography (SD-OCT) was performed immediately after the lasering to verify a break of Bruch&#39;s membrane. Subsequent in vivo imaging using fluorescein angiography (FA) confirmed successful damage of Bruch&#39;s membrane from serial images acquired at the choroidal level. Longitudinal follow-up of CNV proliferation and regression on days 5, 10, and 14 after the lasering was performed using both SD-OCT and FA. Simple and reliable grading of leaky CNV leasions from FA images is&#160;presented. Automated segmentation for measurement of total retinal thickness, combined with manual caliber application for measurement of retinal thickness at CNV sites, allow unbiased evaluation of the presence of edema. Finally, histological verification of CNV is performed using isolectin GS-IB4 staining on choroidal flatmounts. The staining is thresholded, and the isolectin-positive area is calculated with ImageJ.
This protocol is especially useful in therapeutics studies requiring high-throughput-like screening of CNV pathology as it allows fast, multimodal, and reliable classification of CNV pathology and retinal edema. In addition, high resolution SD-OCT enables the recording of other pathological hallmarks, such as the accumulation of subretinal or intraretinal fluid. However, this method does not provide a possibility to automate CNV volume analysis from SD-OCT images, which has to be performed manually.

In Vivo Multimodal Imaging and Analysis of Mouse Laser-Induced Choroidal Neovascularization Model

Here, we present the usefulness of longitudinal in vivo imaging in the follow-up of morphological changes of laser-induced choroidal neovascularization in mice.

Vivo Multimodal görüntüleme ve fare lazer kaynaklı Choroidal neovaskülarizasyon Model analizi

Laser-induced choroidal neovascularization (CNV) is a well-established model to mimic the wet form of age-related macular degeneration (AMD). In this ...

Nörobilim

Optimization of the Retinal Vein Occlusion Mouse Model to Limit Variability

Mouse models of retinal vein occlusion (RVO) are often used in ophthalmology to study hypoxic-ischemic injury in the neural retina. In this report, a detailed method pointing out critical steps is provided with recommendations for optimization to achieve consistently successful occlusion rates across different genetically modified mouse strains. The RVO mouse model consists primarily of the intravenous administration of a photosensitizer dye followed by laser photocoagulation using a retinal imaging microscope attached to an ophthalmic guided laser. Three variables were identified as determinants of occlusion consistency. By adjusting the wait time after rose bengal administration and balancing the baseline and experimental laser output, the variability across experiments can be limited and a higher success rate of occlusions achieved. This method can be used to study retinal diseases that are characterized by retinal edema and hypoxic-ischemic injury. Additionally, as this model induces vascular injury, it can also be applied to study the neurovasculature, neuronal death, and inflammation.

Here, we describe an optimized protocol for retinal vein occlusion using rose bengal and a laser-guided retinal imaging microscope system with recommendations to maximize its reproducibility in genetically modified strains.

Değişkenliği Sınırlamak için Retinal Ven Tıkanıklığı Fare Modelinin Optimizasyonu

Mouse models of retinal vein occlusion (RVO) are often used in ophthalmology to study hypoxic-ischemic injury in the neural retina. In this report, a ...

Application of Optical Coherence Tomography to a Mouse Model of Retinopathy

Optical coherence tomography (OCT) offers a noninvasive method for the diagnosis of retinopathy. The OCT machine can capture retinal crosssectional images from which the retinal thickness can be calculated. Although OCT is widely used in clinical practice, its application in basic research is not as prevalent, especially in small animals such as mice. Because of the small size of their eyeballs, it is challenging to conduct fundus imaging examinations in mice. Therefore, a specialized retinal imaging system is required to accommodate OCT imaging on small animals. This article demonstrates a small-animal-specific system for OCT examination procedures and a detailed method for image analysis. The results of retinal OCT examination of very-low-density lipoprotein receptor (Vldlr) knockout mice and C57BL/6J mice are presented. The OCT images of C57BL/6J mice showed retinal layers, while those of Vldlr knockout mice showed subretinal neovascularization and retinal thinning. In summary, OCT examination could facilitate the noninvasive detection and measurement of retinopathy in mouse models.

Here, we describe an in vivo imaging technique using optical coherence tomography to facilitate the diagnosis and quantitative measurement of retinopathy in mice.

Optik Koherens Tomografinin Retinopatinin Bir Fare Modeline Uygulanması

Optical coherence tomography (OCT) offers a noninvasive method for the diagnosis of retinopathy. The OCT machine can capture retinal crosssectional images ...

Image-Guided Optical Coherence Tomography to Assess Structural Changes in Rodent Retinas

Ocular diseases, such as age-related macular degeneration, glaucoma, retinitis pigmentosa, and uveitis, are always accompanied by retinal structural changes. These diseases affecting the fundus always exhibit typical abnormalities in certain cell types in the retina, including photoreceptor cells, retinal ganglion cells, cells in the retinal blood vessels, and cells in the choroidal vascular cells. Noninvasive, highly efficient, and adaptable imaging techniques are required for both clinical practice and basic research. Image-guided optical coherence tomography (OCT) satisfies these requirements because it combines fundus photography and high-resolution OCT, providing an accurate diagnosis of tiny lesions as well as important changes in the retinal architecture. This study details the procedures of data collection and data analysis for image-guided OCT and demonstrates its application in rodent models of choroidal neovascularization (CNV), optic nerve crush (ONC), light-induced retinal degeneration, and experimental autoimmune uveitis (EAU). This technique helps researchers in the eye field to identify rodent retinal structural changes conveniently, reliably, and tractably.

<meta charset="utf8"></head><body>Kemirgen Retinalarındaki Yapısal Değişiklikleri Değerlendirmek için Görüntü Kılavuzluğunda Optik Koherens Tomografi

The protocol presented here details the procedures of data collection and data analysis for image-guided optical coherence tomography (OCT) and demonstrates its application in multiple rodent models of ocular diseases.

Kemirgen Retinalarındaki Yapısal Değişiklikleri Değerlendirmek için Görüntü Kılavuzluğunda Optik Koherens Tomografi

Ocular diseases, such as age-related macular degeneration, glaucoma, retinitis pigmentosa, and uveitis, are always accompanied by retinal structural ...

Farede Lazer ile İndüklenen CNV'nin Farklı Lezyon Tiplerinin Karakterizasyonu

Characterization of Vascular Morphology of Neovascular Age-Related Macular Degeneration by Indocyanine Green Angiography

Age-related macular degeneration (AMD) is a leading cause of blindness among older individuals, and its prevalence is rapidly increasing due to the aging population. Choroidal neovascularization (CNV) or wet AMD, which accounts for 10%-20% of all AMD cases, is responsible for an alarming 80%-90% of AMD-related blindness. Current anti-VEGF therapies show suboptimal responses in approximately 50% of patients. Resistance to anti-VEGF treatment in CNV patients is often associated with arteriolar CNV, while responders tend to have capillary CNV. While fluorescein angiography (FA) is commonly used to assess leakage patterns in wet AMD patients and animal models, it does not provide information about CNV vascular morphology (arteriolar CNV vs. capillary CNV). This protocol introduces the use of indocyanine green angiography (ICGA) to characterize lesion types in laser-induced CNV mouse models. This method is crucial for investigating the mechanisms and treatment strategies for anti-VEGF resistance in wet AMD. It is recommended to incorporate ICGA alongside FA for comprehensive assessment of both leakage and vascular features of CNV in mechanistic and therapeutic studies.

Yazar Spotlight: Koroidal Neovaskülarizasyonda İleri Vasküler Morfoloji Değerlendirmesi Yoluyla Anti-VEGF Direncinin Üstesinden Gelmek

Currently, fluorescein angiography (FA) is the preferred method for identifying leakage patterns in animal models of choroidal neovascularization (CNV). However, FA does not provide information about vascular morphology. This protocol outlines the use of indocyanine green angiography (ICGA) to characterize different lesion types of laser-induced CNV in mouse models.

Neovasküler Yaşa Bağlı Makula Dejenerasyonunun Vasküler Morfolojisinin İndosiyanin Yeşili Anjiyografi ile Karakterizasyonu

Age-related macular degeneration (AMD) is a leading cause of blindness among older individuals, and its prevalence is rapidly increasing due to the aging ...

Lazer kaynaklı Koroid Neovaskülarizasyonlarında A Fare Modeli

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Lazer Kaynaklı SD Sıçanlarda Kronik Oküler Hipertansiyon Modeli

Görme Kusurları karakterize Kronik Oküler Hipertansiyon bir Lazer-kaynaklı Fare Modeli

Fare Kornea Neovaskülarizasyonunun bir Alkali-yanık Yaralanma Modeli

Murin Koroidinde Melanomun İmplantasyonu ve Optik Koherens Tomografi ile Değerlendirilmesi

Vivo Multimodal görüntüleme ve fare lazer kaynaklı Choroidal neovaskülarizasyon Model analizi

Değişkenliği Sınırlamak için Retinal Ven Tıkanıklığı Fare Modelinin Optimizasyonu

Optik Koherens Tomografinin Retinopatinin Bir Fare Modeline Uygulanması

Kemirgen Retinalarındaki Yapısal Değişiklikleri Değerlendirmek için Görüntü Kılavuzluğunda Optik Koherens Tomografi

Kemirgen Retinalarındaki Yapısal Değişiklikleri Değerlendirmek için Görüntü Kılavuzluğunda Optik Koherens Tomografi

Neovasküler Yaşa Bağlı Makula Dejenerasyonunun Vasküler Morfolojisinin İndosiyanin Yeşili Anjiyografi ile Karakterizasyonu