Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

This article describes a rat model of electrically-induced ventricular fibrillation and resuscitation by chest compression, ventilation, and delivery of electrical shocks that simulates an episode of sudden cardiac arrest and conventional cardiopulmonary resuscitation. The model enables gathering insights on the pathophysiology of cardiac arrest and exploration of new resuscitation strategies.

Abstract

A rat model of electrically-induced ventricular fibrillation followed by cardiac resuscitation using a closed chest technique that incorporates the basic components of cardiopulmonary resuscitation in humans is herein described. The model was developed in 1988 and has been used in approximately 70 peer-reviewed publications examining a myriad of resuscitation aspects including its physiology and pathophysiology, determinants of resuscitability, pharmacologic interventions, and even the effects of cell therapies. The model featured in this presentation includes: (1) vascular catheterization to measure aortic and right atrial pressures, to measure cardiac output by thermodilution, and to electrically induce ventricular fibrillation; and (2) tracheal intubation for positive pressure ventilation with oxygen enriched gas and assessment of the end-tidal CO2. A typical sequence of intervention entails: (1) electrical induction of ventricular fibrillation, (2) chest compression using a mechanical piston device concomitantly with positive pressure ventilation delivering oxygen-enriched gas, (3) electrical shocks to terminate ventricular fibrillation and reestablish cardiac activity, (4) assessment of post-resuscitation hemodynamic and metabolic function, and (5) assessment of survival and recovery of organ function. A robust inventory of measurements is available that includes – but is not limited to – hemodynamic, metabolic, and tissue measurements. The model has been highly effective in developing new resuscitation concepts and examining novel therapeutic interventions before their testing in larger and translationally more relevant animal models of cardiac arrest and resuscitation.

Introduction

بالقرب من 360،000 شخص في الولايات المتحدة 1 وغيرها الكثير في جميع أنحاء العالم يعانون 2 حلقة من سكتة قلبية مفاجئة كل عام. محاولات لإعادة الحياة تتطلب لا يمكن منع فقط أن النشاط القلبي يتم إعادة تأسيس ولكن هذا الضرر إلى الأعضاء الحيوية، التقليل أو عكسه. تقنيات الإنعاش القلبي الحالية تسفر عن معدل الإنعاش الأولي من حوالي 30٪. ومع ذلك، البقاء على قيد الحياة إلى الخروج من المستشفى ليست سوى 5٪ 1. ضعف عضلة القلب، خلل عصبي، التهاب النظامية، والأمراض داغل، أو أن يحدث خلطا يحدث الاعتبار ما بعد الإنعاش لنسبة كبيرة من المرضى الذين يموتون على الرغم من عودة الأولية من التداول. وبالتالي، هناك حاجة إلى فهم أكبر لالفيزيولوجيا المرضية والإنعاش رواية النهج الأساسية على وجه السرعة لزيادة معدل الإنعاش الأولي والبقاء على قيد الحياة لاحق مع وظيفة الجهاز سليمة.

وضع الحيوانليرة سورية من السكتة القلبية تلعب دورا حاسما في تطوير علاجات جديدة الإنعاش من خلال توفير رؤى على الفيزيولوجيا المرضية للسكتة قلبية والإنعاش وتقديم الوسائل العملية لوضع تصور واختبار تدخلات جديدة قبل أن يتم اختباره على البشر 3. نموذج الفئران من الصدر مغلقة الإنعاش القلبي الرئوي (CPR) وصفت هنا قد لعبت دورا هاما. وقد تم تطوير هذا النموذج في عام 1988 من قبل إيرين فون بلانتا - زميل باحث في ذلك الوقت - ومعاونيها 4 في مختبر البروفيسور الراحل هاري ماكس ويل MD، دكتوراه في جامعة العلوم الصحية (التي أعيدت تسميتها روزاليند فرانكلين جامعة الطب والعلوم في عام 2004)، وقد استخدمت على نطاق واسع في مجال الإنعاش في الغالب من قبل زملاء البروفيسور ويل والمتدربين.

نموذج يحاكي حلقة من سكتة قلبية مفاجئة مع الإنعاش حاول من خلال تقنيات CPR التقليدية، وبالتالي يشمل جندأيون من الرجفان البطيني (VF) من خلال توفير تيار كهربائي إلى اليمين البطانة البطين وتوفير CPR الصدر المغلق بواسطة جهاز المكبس مدفوعة هوائيا بينما كان يلقى بالتزامن التهوية بالضغط الإيجابي مع غاز الأكسجين التخصيب. ويتم إنجاز إنهاء VF قبل تسليم عبر الصدر الصدمات الكهربائية. نموذج الفئران توازنا بين النماذج المتقدمة في الحيوانات الكبيرة (على سبيل المثال، والخنازير) ونماذج المتقدمة في الحيوانات الصغيرة (مثل الفئران) مما يتيح استكشاف مفاهيم جديدة للبحث بطريقة جيدة موحدة، قابلة للتكرار، وكفاءة مع الوصول إلى قوية جرد من القياسات ذات الصلة. هذا النموذج هو مفيدة بشكل خاص في المراحل الأولى من البحث لاستكشاف مفاهيم جديدة ودراسة آثار الإرباك قبل إجراء الدراسات في النماذج الحيوانية الكبيرة التي هي أكثر تكلفة، ولكن من تأثير أكبر متعدية.

بحث ميدلاين لجميع المواد لاستعراض الأقران الإبلاغ كمانموذج الفئران imilar وجود VF كآلية من السكتة القلبية، ونوعا من الإنعاش الصدر مغلقة كشف ما مجموعه 69 دراسات إضافية الأصلية باستخدام نموذج منذ نشر لأول مرة في عام 1988 (4). وتشمل مجالات البحوث الجوانب المرضية في جسم المريض لإنعاش 5-17، العوامل المؤثرة على النتائج 18-30، ودور التدخلات الدوائية فحص وكلاء الرافعة للضغط 31-43، وكلاء عازلة 44، وكلاء مؤثر في التقلص العضلي 45، وكلاء تهدف إلى عضلة القلب أو حماية الدماغية 46-70، وأيضا تأثيرات الخلايا الجذعية الوسيطة 71-73.

ويجري حاليا استخدام نموذج وبروتوكول الموضحة في هذه المقالة في معهد الإنعاش. ومع ذلك، وهناك فرص متعددة ل"تخصيص" نموذج يقوم على الإمكانات المتاحة للمحققين الفردية وأهداف الدراسات.

Protocol

ملاحظة: تمت الموافقة على البروتوكول من قبل لجنة رعاية واستخدام الحيوان المؤسسي في روزاليند فرانكلين جامعة الطب والعلوم. وكانت جميع الإجراءات وفقا لدليل لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية نشرت من قبل المجلس القومي للبحوث.

1. الإعداد التجريبي والتخدير

  1. أداء المعايرة من إشارات مختلفة ليتم القبض على استخدام نظام الحصول على البيانات (الضغوط، ودرجة الحرارة، مكبس التشريد، الكهربائي [ECG]، capnography، وما إلى ذلك).
  2. تعقيم الأدوات والقسطرة (على سبيل المثال، في الأوتوكلاف لأدوات وأكسيد الإيثيلين معقمة لالقسطرة) وتشغيل gowned ويرتدي قناع، وكأب، والقفازات المعقمة إذا كانت التجربة تتضمن الجراحة البقاء على قيد الحياة. الأدوات الجراحية والقسطرة نظيفة ولكن ليس هناك حاجة إلى أن تكون معقمة لعملية جراحية غير البقاء على قيد الحياة.
  3. تحضير القسطرة المبينة أدناه وصورت في فايجوري 1 لفأر وزنها بين 0.45 كجم و 0.55 كغم.
    1. علامة على 2F T-نوع الحرارية القسطرة، حجم 0.6 مم OD (2F)، في 3 و 5 و 8 سم من الحافة مع علامة دائمة، من أجل التقدم في الشريان الأورطي الصدري. استخدام هذا قسطرة لقياس درجة الحرارة والنتاج القلبي.
    2. قطع أنابيب البولي ايثيلين، وحجم 0.46 ملم ID و0.91 مم OD (PE25) ≈ 25 سم في الطول، واحدة للتقدم في الصدر الأبهر وآخر للتقدم في الأذين الأيمن.
    3. قطع نهاية كل PE25 قسطرة طرف لإدراجها في الإناء في زاوية 90 درجة.
      ملاحظة: نصائح مشطوف في زاوية 45 درجة قد يسبب ثقب السفينة عند استخدام PE أنابيب. ومع ذلك، فإن الطرف مشطوف ويمكن خفض إلى أسفل مع الصنفرة للحد من حدته.
    4. إرفاق قياس 26 بالتركيبة الإناث محول كعب إلى نهاية القريبة من كل القسطرة PE25.
    5. بمناسبة قسطرة الشريان الأبهر في 3 و 5 و 8 سم والقسطرة الأذيني الصحيحة في 3 و 5 و 8 و 10 و 12 سم من الحافة. استخدام AOقسطرة rtic لقياس الضغط الأبهري ولأخذ عينات الدم. استخدام القسطرة الأذيني الصحيحة لقياس ضغط الأذين الأيمن.
    6. نعلق كل محول بالتركيبة كعب لمحول الضغط مزودة محبس 3-الطريقة.
    7. قطع غيض من القسطرة الوريدية 3F البولي لدى الأطفال، وحجم 0.6 ملم ID و 1.0 مم OD (3F)، في زاوية 45 درجة للتقدم إلى الأذين الأيمن.
    8. بمناسبة 3F قسطرة الوريد الخارجية في 4 سم من الحافة. استخدام هذا القسطرة لدفع سلك دليل إلى البطين الأيمن لتحريض الكهربائي للVF مع خيار لاحقا لاستخدامها لتوصيل الدواء وأخذ عينات الدم. إرفاق محبس 3-الطريق إلى القسطرة.
      ملاحظة: العلامات المحرز في القسطرة هي لتوجيه الجراح كما هي متقدمة القسطرة. علامة في 3 سم على القسطرة تقدمت من خلال التنبيهات السفن الفخذ الجراح من منطقة المقاومة المحتملة الناتجة عن السفن بداية لمنحنى يصل نحو منطقة الصدر. 8 سم مارسKS على القسطرة الأبهر والحرارية قسطرة تشير إلى طرف في الشريان الأورطي الصدري تنازلي. و12 سم علامة على القسطرة الأذيني الأيمن تشير إلى طرف في الأذين الأيمن. علامات المؤقتة هي أدلة كما هي متقدمة القسطرة. 4 سم علامة على الحق القسطرة الوداجي الخارجية تشير إلى طرف في الأذين الأيمن.
    9. رئيس كل القسطرة مع المياه المالحة التي تحتوي على 10 وحدة دولية / مل من الهيبارين (لضمان المباح بهم) وتحويل الصمامات المقابلة لموقف مغلقة.
    10. قطع 5F المفلورة الإيثيلين البروبيلين قنية، وحجم 1.1 ملم و 1.6 ملم ID OD (5F) التي شنت على stylette، لتكون ≈ 8 سم في الطول خلق طرف اضعافها. استخدام هذا قنية للتقدم إلى القصبة الهوائية وضع ≈ طرفها 2 سم من كارينا للتهوية بالضغط الإيجابي أثناء وبعد إنعاش القلب.
      ملاحظة: stylette المعدني للقنية تحتاج إلى أن تكون عازمة على 145 درجة زاوية ≈ 3 سم من الحافة للمساعدة في التقدم إلى القصبة الهوائية.
  4. تحضير الفئران لأجهزة القياس الجراحي.
    1. تخدير الفئران عن طريق الحقن داخل الصفاق من بنتوباربيتال الصوديوم (45 ملغ / كلغ). إذا لزم الأمر، وإعطاء جرعات إضافية (10 ملغ / كلغ) عن طريق الوريد كل 30 دقيقة (بعد إنشاء الوصول الى الاوعية الدموية) للحفاظ على الطائرة من التخدير الجراحي.
      ملاحظة: معظم الدراسات قد استخدمت الذكور مربي متقاعد الفئران سبراغ داولي.
    2. مقطع الشعر من المناطق والمناطق الجراحية حيث سيتم تسليم الصدمات الكهربائية؛ التي تشمل على ظهري منطقة الصدر والفخذ الأيسر والأيمن، الرقبة، والسطح الأمامي من القفص الصدري.
    3. إدارة 0.02 مغ / كغ (1 مل / كغ) البوبرينورفين تحت الجلد لتسكين الألم.
    4. إصلاح الفئران في موقف ضعيف على لوحة العمليات الجراحية عن طريق تسجيل الجبهة وهند أطرافه على زاوية 45 درجة من خط الوسط.
    5. المناطق شق فرك مع بتدين فرك جاءت بنسبة 70٪ من الإيثانول 3 مرات.
    6. تطبيق طبقة رقيقة من مرهم للعين مضادة للجراثيم لقرنية العين.
    7. إدراج الثرمستور ≈ المستقيم 4 سم في المستقيم وتأمين الثرمستور إلى لوحة الجراحي.
    8. الحفاظ على درجة حرارة الجسم الأساسية بين 36.5 درجة مئوية و 37.5 درجة مئوية باستخدام مصباح التدفئة وهاج في كافة مراحل التجربة.
    9. الإبر مكان ECG تحت الجلد على الطرف العلوي الأيمن، ترك الطرف العلوي، والطرف الخلفي الأيمن، وتسجل ECG في كافة مراحل التجربة.

2. الأوعية الدموية Cannulations

2.1) يسار الشريان الفخذي للنهوض T-نوع الحرارية قسطرة في الشريان الأورطي الصدري تنازلي

  1. جعل 2 سم شق على المنطقة الأربية اليسرى في زاوية 90 درجة ونسبة إلى بستان به.
  2. فضح الأوعية الفخذية والعصبية من قبل تشريح حادة من النسيج الضام المحيطة باستخدام زوج من المرقأة.
  3. فضح غمد الأوعية الدموية حول الأوعية باستخدام ملقط المنحني تشريح الصغيرة.
    ملاحظة: تجنب ثقب إما سفينة أو نيRVE.
  4. السفر مع ملقط تشريح الصغرى تحت الشريان الفخذي، الوريد، والعصبية وتقديم الدعم لهم في زاوية 90 درجة ونسبة إلى السفن. مع كل الأوعية والأعصاب المعتمدة، يبدأ فصل الشريان من العصب والوريد باستخدام زوج آخر من منحني ملقط تشريح الصغرى.
    ويتم فصل من تحت وبالتوازي مع السفن لتقليل خطر إصابة الأوعية والأعصاب: ملاحظة.
  5. إعادة ملقط الداعمة؛ الإفراج عن العصبية لدعم فقط الوريد والشريان.
  6. كاتب الموضوع ملقط بين الشريان والوريد وفصل لهم بطول ≈ 1 سم.
  7. الإفراج الوريد معزولة عن ملقط دعم بلطف، وتظل دعم الشريان فقط.
  8. إدراج اثنين من الحرير 3-0 مضفر الحروف المركبة غير قابل للامتصاص وموقف واحد بشكل أقصى والداني واحد ≈ 1 سم عن بعضها البعض.
  9. تشديد بحزم ضمد البعيدة في حين لا تزال تدعم الشريان باستخدام عقدة الجراح & #160، تليها اثنين عقدة واحدة. تشديد ضمد الداني مع عقدة جراح فضفاضة و.
  10. إجراء شق صغير على متن السفينة باستخدام زوج من مقص تشريح الصغيرة بالقرب من رباط البعيدة عند 60 درجة زاوية قريب إلى السفينة قطع حوالي ¼ من مساحة المقطع العرضي لها.
    ملاحظة: قطرة صغيرة من الدم الخارجة من خفض اشارات تم التوصل لمعة.
  11. بالتنقيط المالحة heparinized على السفن للسماح للالإدراج السلس للالقسطرة.
    ملاحظة: يمكن أيضا واحد الى اثنين قطرات من محلول 1٪ ليدوكائين أن تستخدم لمنع سفينة تشنج.
  12. اضافة الى وجود إبرة قياس 22 - الذين غيض وقد عرف عازمة على 70 درجة زاوية واضعافها باستخدام ورق زجاج (أي التعريف) - في افتتاح سفينة في حين سحب بلطف ربطة القاصي مع المرقأة لتحقيق الاستقرار في السفينة.
  13. رفع التعريف بلطف لكشف التجويف وتوجيه T-نوع الحرارية القسطرة تحت التعريف، وإزالةمرة واحدة وقد تم إدراج غيض القسطرة.
  14. عقد القسطرة في مكان وبيد واحدة بينما استيعاب جهة أخرى في وضع مريح للمضي قدما في القسطرة.
  15. إغلاق ملقط دعم ونقلها بشكل أقصى كما هو متقدمة القسطرة.
    ملاحظة: إذا تم استيفاء أي مقاومة في حين تقدم القسطرة. وقف، والتراجع، وتدرج في زاوية البديلة.
  16. دفع القسطرة حتى 8 سم علامة لوضع طرفها في الشريان الأورطي الصدري تنازلي.
  17. تأمين القسطرة إلى السفينة من خلال تشديد ضمد الداني واضافة الى اثنين من عقدة واحدة إضافية.
    ملاحظة: عقدة الآمنة ضيقة بما يكفي لمنع النزيف حول القسطرة والتهجير غير مقصود. بعد، فضفاضة بما يكفي لتمكين ذهابا وإيابا الحركة إذا لزم الأمر لإعادة تموضع.
  18. إزالة ملقط والمرقأة بلطف.

2.2) غادر الوريد الفخذي للنهوض القسطرة PE25 إلى الأذين الأيمن

  1. رفع رانه الشريان الفخذي مقنى بالفعل مع T-نوع الحرارية القسطرة عن طريق سحب بلطف حتى على ضمد وفضح الوريد الفخذي المجاور.
  2. السفر تحت الوريد باستخدام ملقط وفتحها لدعم الوريد.
  3. اتبع الخطوات 2.1.8 من خلال 2.1.18 ولكن التقدم القسطرة PE25 (بدلا من T-نوع الحرارية) إلى 12 سم علامة لوضع طرفها بالقرب من الأذين الأيمن.
  4. يمكن سحب التحقق من الدم عن طريق القسطرة لتأكيد موقفها دون عائق داخل اللمعة وطرد القسطرة مع 0.2 مل من المياه المالحة heparinized.
  5. إغلاق شق جراحي مع عقدة جراح واحد ل.

2.3) الشريان الفخذي الأيمن للنهوض القسطرة PE25 في الشريان الأورطي الصدري تنازلي

  1. اتبع الخطوات 2.1.1 من خلال 2.1.18 ولكن التقدم القسطرة PE25 إلى 8 سم علامة لوضع طرفها في الشريان الأورطي الصدري تنازلي.
  2. كرر الخطوات من 2.2.4 و2.2.5.

2.4) الحق حبل الوريد الخارجي للنهوض 3F البولي يوريثين الأطفال القسطرة الوريدية في الأذين الأيمن

  1. وجعل شق 1.5 سم طويلة بدأت في قاعدة العنق، 1 سم على يمين القصبة الهوائية، وإنهاء أقل بقليل من الغدة الدرقية.
    ملاحظة: تجنب جرح أو تعريض الغدة الدرقية.
  2. تشريح بلطف النسيج الضام المحيطة باستخدام زوج من المرقأة لفضح الوريد الوداجي الخارجي.
  3. السفر تحت الوريد باستخدام ملقط وفتحها لدعم الوريد.
  4. كرر الخطوات من 2.1.8 من خلال 2.1.18 لقثطرة الوريد، ولكن تتقدم القسطرة 3F إلى 4 سم علامة تحديد المواقع طرفها في الأذين الأيمن.
  5. كرر الخطوة 2.2.4.
  6. تتويج القسطرة مع 3 في اتجاه ومحبس وتحويله إلى موقف مغلقة.

3. تنبيب الرغامي

3.1) التعرض الرغامي

  1. توسيع العنق شق تؤديها سابقا نحو خط الوسط استخدام المرقأة.
  2. ديس إلخ مع المرقأة وملقط باستخدام تقنية حادة الجزء العضلة القصية، قصي درقي، والخشاء للعضلات cleidocephalic لفضح القصبة الهوائية وأنه عقد يتعرض باستخدام رش الأنسجة.

3.2) التنبيب الرغامي

  1. سحب اللسان إلى امتداد مجرى الهواء. دفع القسطرة 5F (أي القصبة الهوائية قنية) التي شنت على stylette. اعتقادا راسخا قنية في حين تقدم مع طرف لافتا إلى أعلى والتقدم تسعى لدخول مجرى الهواء العلوي، والحبال الصوتية، والقصبة الهوائية.
  2. عبر تصور قنية القصبة الهوائية كما سلف للإرشاد إلى الموقف الصحيح.
  3. إزالة stylette من قنية وإرفاق الأشعة تحت الحمراء CO 2 محول محلل لنهاية البعيدة للقنية.
  4. تأكيد نجاح التنبيب الرغامي من خلال الاعتراف الموجي capnographic مميزة، أي مجرى الهواء CO 2 زيادة خلال انتهاء الصلاحية وتناقص خلال الإلهام.
ove_title "> 4. تأكيد من خط الأساس الاستقرار

  1. استكمال الأجهزة الجراحية وربط القسطرة مختلفة، قنية، وECG يؤدي عبر محولات يناظرها ومكيفات إشارة إلى نظام الحصول على البيانات، وتأكيد الاستقرار الدورة الدموية على أساس القلب وارتفاع ضغط الدم الناتج meaurements والاستقرار الأيض (المستحسن) عن طريق قياس الدم الغازات ومستويات اللاكتات.
    ملاحظة: يتم قياس النتاج القلبي عن طريق تحليل الكمبيوتر من منحنى التخفيف الحراري المسجلة في الشريان الأورطي الصدري تنازلي من خلال الحرارية بعد 200 ميكرولتر حقن البلعة من 0.9٪ كلوريد الصوديوم في درجة حرارة الغرفة إلى الأذين الأيمن.
  2. تحديد القيم المرجعية الأساسية المحددة للمعلمات مختلف المصالح؛ والتي قد تختلف يتوقف على سلالة الفئران، والجنس، والوزن. وترد خط الأساس والمرجعية في مرحلة ما بعد الإنعاش القيم من تجربة تمثيلية باستخدام نموذج الفئران الموصوفة هنا على الجدول 1.

بروتوكول التجريبية 5.

5.1) تحريض الرجفان البطيني (VF)

  1. اضافة الى وجود إبرة تحت الجلد في جدار البطن ترتبط الفئران إلى القطب السلبي ل60 هرتز، بالتناوب الحالي (AC) مولد (من 0 إلى 12 مللي أمبير). تجنب دفع إبرة ما وراء الأنسجة تحت الجلد في تجويف البطن لتجنب إصابة غير مقصودة في الأعضاء الداخلية.
  2. إرفاق واحدة من نهاية precurved 0.38 مم OD و 40 سم سلك دليل طويلة (عن طريق سلك موصل) إلى القطب الموجب للمولد التيار المتردد. التأكد من أن قطبية لا عكس. خلاف ذلك VF قد لا يكون ذلك حافزا.
  3. إزالة 3 في اتجاه ومحبس من القسطرة البولي يوريثين 3F إدراجها في الصحيح الوريد الوداجي الخارجي ودفع طرف ليونة من السلك دليل حوالي 7 سم تسعى لدخول البطين الأيمن في حين رصد تخطيط القلب وضغط الأبهر.
    ملاحظة: موضع الصحيح من الأسلاك دليل وسوف اقترح من قبل ventr خارج الرحميدق icular لاحظت في تخطيط القلب وضغط الأبهر.
  4. بدوره على 60 هرتز مولد التيار المتردد وزيادة تدريجيا التيار في حين رصد ضغط الأبهر.
    ملاحظة: 2.0 مللي أمبير الحالي هو عادة كافية لإحداث VF ولكنه يختلف يتوقف على الموقع من الأسلاك دليل نسبة إلى البطين الأيمن. قد تكون هناك حاجة تعديلات طفيفة على موقع طرف للحث VF عند المستويات الحالية أقل.
  5. تأكيد تحريض VF من خلال توثيق (1) وقف نبضات الشريان الأبهر والاضمحلال الأسي للضغط الأبهر إلى ≈ 20 ملم زئبق داخل ≈ 5 ثوان و (2) مظهر من النشاط الكهربائي غير المنظم في تخطيط القلب، كما هو مبين في الشكل (2).
  6. المحافظة على التيار دون انقطاع لمدة 3 دقائق خفض كثافة بعد الدقيقة الأولى إلى ما يقرب من نصف المستوى المطلوب للحث VF.
  7. تحويل التيار قبالة بعد 3 دقائق وثيقة VF تواصل دون الحاجة لتطبيق الحالية.
    ملاحظة: قلوب صغيرة defibrillate بشكل عفوينظرا لطول ماس كهربائى حيث الحافة الأمامية للجبهة fibrillatory تصل في نهاية زائدة في فترة الحرارية يستبعد العائدة. فقط بعد فترة من نقص تروية عضلة القلب؛ أي، 3 دقائق، ما يكفي لإبطاء التوصيل للسماح العائدة هي أن يصبح VF مكتفية ذاتيا، كما هو مبين في الشكل (2).
  8. إزالة الأسلاك دليل، وإعادة للحد الأقصى القسطرة الوداجي مع 3 في اتجاه ومحبس، وإزالة الإبرة الأرض، والسماح VF لمواصلة عفويا لمدة الرغبة البروتوكول قبل بدء التدخلات الإنعاش (أي 4 إلى 15 دقيقة على أساس المنشورة دراسات).

5.2) الضغط على الصدر والتهوية بالضغط الإيجابي

ملاحظة: ضاغط الصدر واردة في هذا المنشور هو جهاز المكبس حسب الطلب مدفوعة بالهواء المضغوط والتي تسيطر عليها الكترونيا. التنفس الصناعي هو جهاز متاحة تجاريا.

  1. استخدام الوقت من دون علاج VF عن تصرفات وصفها بelow. على الرغم من أنها لا يمكن أن يؤديها قبل حمل VF.
  2. بمناسبة الصدر في 2.8 سم و 4.2 سم من قاعدة عملية الخنجري. وعادة ما يتم العثور على منطقة المثلى لبدء الضغط على الصدر بين هذه العلامات اثنين.
  3. تطبيق هلام موصل إلى مجداف صدمات الكهربائية والانزلاق تحت الصدر الفئران، وتأمين المجذاف لمجلس الجراحي.
  4. ضع مكبس ضاغط الصدر بين اثنين من علامات الصدر لمس قليلا الصدر.
  5. تعيين ضاغط لتوريد 200 الضغط في الدقيقة الواحدة وتعيين تشريد مكبس الأولي إلى 0 مم.
    ملاحظة: معدل ضغط مناسب لحيوان صغير مع معدل ضربات القلب عفوية من 350 دقيقة -1 ولكن يمكن أن تختلف، حيث وصل سعر ضغط الأمثل لنموذج الفئران لم يتم تحديدها.
  6. ضبط التنفس الصناعي في 25 دقيقة -1 إيصال حجم المد والجزر من 6 مل / كغ وجزء بسيط من الأكسجين من وحي (قوة المراقبة الدولية 2) من 1.0 غير المتزامنة إلى صدره جompression.
  7. إرفاق أنابيب التنفس الصناعي (المنتهي في Y-محول يربط بين الشهيق والزفير أطرافه) إلى مغادرة القصبة الهوائية قنية موسط الأشعة تحت الحمراء CO 2 محول محلل.
  8. بدوره على جهاز التنفس الصناعي والبدء في ضغط الصدر تدريجيا عن طريق زيادة عمق ضغط من 0 ملم إلى 10 ملم خلال الدقيقة الأولى. تحرك قليلا المكبس خرج عن وrostrocaudal تسعى لايجاد موقف يمكن أن ينتج أعلى الضغط الانبساطي الأبهر (أي الضغط بين الضغط) لعمق ضغط معين.
    ملاحظة: زيادة تدريجية في عمق ضغط فريدة من نوعها لمعهد الإنعاش. معظم المحققين تبدأ مع عمق ضغط القصوى.
  9. الاستمرار في زيادة عمق ضغط خلال الدقيقة الثانية حتى يتم تحقيق الهدف الضغط الانبساطي الأبهر.
    ملاحظة: الهدف الضغط الانبساطي الأبهر من 24 ملم زئبق أو أعلى غلة ضغط التروية التاجية من 20 ملم زئبق أو أعلى بعد طرحالصحيح الضغط الانبساطي الأذيني. المقابلة لعتبة resuscitability لهذا النموذج الفئران 4. الهدف الضغط الانبساطي الأبهر - والتي قد تتجاوز عتبة resuscitability - هو ما يقرره المحقق على أساس هدف الدراسة. بعد، ومن غير المستحسن أن يتجاوز عمق ضغط من 17 ملم لتجنب إصابة في جدار الصدر والأعضاء داخل الصدر.
  10. الحفاظ على الضغط على الصدر لمدة المرجوة قبل محاولة إزالة الرجفان.
    ملاحظة: ست دقائق من ضغط الصدر ويبدو أن الحد الأدنى المطلوب لخلق ظروف مواتية لعضلة القلب صدمات الكهربائية ناجحة 26. ومع ذلك، مع زيادة مدة، وفعالية الدورة الدموية من انخفاض ضغط الصدر ومعظم الدراسات تستخدم مدة تتراوح من 6 إلى 10 دقيقة.

5.3) إزالة الرجفان

  1. استخدام الموجي ثنائي الطور متاحة تجاريا الرجفان مع القدرة على إزالة الرجفان الداخلية مع انطلاقالطاقة تسليمها من 5 J، ومجهزة المجاذيف مخصصة لالفئران.
  2. تطبيق هلام موصل إلى مجداف صدمات الكهربائية.
  3. شحن الرجفان على الفور قبل إتمام مدة محددة سلفا من الضغط على الصدر.
  4. يقطع ضغط الصدر والتحقق يبقى القلب في VF فحص تخطيط القلب.
  5. تقديم ما يصل الى اثنين من الصدمات الكهربائية من 5 J كل عبر جدار الصدر 5 ثواني بصرف النظر إذا موجود VF ومراقبة للعودة لECG المنظم كهربائيا مع نبضات الشريان الأبهر والشريان الأبهر ضغط متوسط ​​≥25 ملم زئبق.
  6. استئناف الضغط على الصدر لمدة 30 ثانية أو 60 ثانية (يتوقف على بروتوكول معين) إذا كان الضغط الأبهري يعني هو <25 ملم زئبق بغض النظر عن إيقاع الكهربائية.
  7. كرر الخطوات من 5.3.4 إلى 5.3.6 لمدة تصل إلى 5 مرات الطارئة على بروتوكول معين ولكن تصعيد الطاقة صدمات الكهربائية إلى 7 J إذا فشلت الأولية 5 الصدمات J لإنهاء VF. الشكل (3) يصور الموالية صدمات الكهربائيةtocol تستخدم في معهد الإنعاش والشكل 4 يصور تجربة تمثيلية خلال المرحلة صدمات الكهربائية.
  8. تقديم الصدمات الكهربائية فقط عندما VF موجود. استئناف خلاف ذلك ضغط الصدر دون السابقة الصدمات الكهربائية وتحمل القلب في النشاط الكهربائي انعدام النبض أو توقف الانقباض.
  9. تحديد نتيجة الإنعاش عند الانتهاء من دورات صدمات الكهربائية ضغط (الشكل 3).

5.4) ما بعد الإنعاش

  1. زيادة معدل التهوية من 25 دقيقة -1 إلى 60 دقيقة -1 بعد عودة التداول عفوية وخفض قوة المراقبة الدولية 2 1،0-0،5 بعد 15 دقيقة من التداول من تلقاء أنفسهم.
  2. تقديم صدمة كهربائية في نفس الطاقة من الصدمة مشاركة إذا يتكرر VF. ومع ذلك، VF عكس عادة بشكل عفوي إلى الجيبي في غضون بضعة ثانية.
    ملاحظة: قد يحدث VF تكرار كجزء من عدم انتظام ضربات القلب ضخه قريبابعد عودة التداول عفوية ولكن نادرا ما تتجاوز 15 دقيقة.
  3. مراقبة الحيوانات وفقا لبروتوكول مرحلة ما بعد الإنعاش محددة قررت من قبل المحقق. عادة 180 و 240 دقيقة في التجارب الحادة دون التعافي من التخدير قبل القتل الرحيم. ويظهر الجدول الزمني للتجربة نموذجية الحادة في الشكل 5.
  4. أداء التشريح في التجارب حادة لتوثيق موقف القسطرة وإصابة الأعضاء الداخلية التي يمكن أن تجعل تجربة غير صالحة.
  5. إزالة جميع القسطرة، ligate الأوعية، وإغلاق الجروح مع مقاطع معدنية واتبع الخطوات المذكورة أدناه في التجارب البقاء على قيد الحياة.
  6. ينزع الأنبوب قدم الحيوان وأنها قادرة على التنفس من تلقاء أنفسهم.
  7. عودة الحيوان إلى قفص نظيفة بعد الشفاء من التخدير يتضح من الكامل ودون مساعدة المقوم الذاتي من ظهري الاستلقاء.
  8. استعد حقن 0.9٪ كلوريد الصوديوم (1 مل / 100 غرام وزن الجسم) البريتونى للحد من خطر انخفاض حرارة الجسم ودehydration.
  9. إدارة جرعة تحت الجلد من ميلوكسيكام (2 ملغ / كلغ) تحت الجلد بعد 4 ساعات جرعة من التسكين تليها 1 ملغ / كغ جرعة تحت الجلد مرة واحدة يوميا لمدة تصل إلى 72 ساعة.
  10. بيت الحيوان وحدها مع تخصيب لمدة تصل إلى 48 ساعة للتعافي أكثر أمانا واستخدام إجراءات التشغيل القياسية المؤسسي للرعاية ومراقبة ما بعد الجراحة.

النتائج

نموذج الفئران الموصوفة هنا كانت تستخدم في الآونة الأخيرة لمقارنة آثار اثنين من مثبطات للsarcolemmal الصوديوم والهيدروجين مبادل شكل الإسوي 1 (NHE-1) على وظيفة عضلة القلب والدورة الدموية أثناء ضغط الصدر وما بعد الإنعاش 61. وقد ذكرت سابقا أن NHE-1 مثبطات تخفيف الاصابة ضخه عض?...

Discussion

خطوات حاسمة في البروتوكول

هناك خطوات حاسمة في البروتوكول. عندما يتقن، وإعداد وبروتوكول تشرع صفها بأنها بإيجاز أدناه. إعداد الجراحي هو على وجه السرعة، والنهوض القسطرة بسرعة من خلال شقوق صغيرة مما اثار الحد الأدنى أو أي سفينة...

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to acknowledge Dr. Wanchun Tang MD, MCCM, FCCP, FAHA and Jena Cahoon of the Weil Institute of Critical Care Medicine in Rancho Mirage, CA. for their contributions to the resuscitation protocol outline and for having helped train the rodent surgeon (LL). The preparation of this article was in part supported by a gift in memory of US Navy Retired SKC Robert W. Ply by Ms. Monica Ply for research in heart disease and Parkinson’s disease and by a discretionary fund from the Department of Medicine at Rosalind Franklin University of Medicine and Science.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Name of Material/ EquipmentCompanyCatalog NumberComments/Description
Sodium pentobarbitalSigma AldrichP3761http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/p3761?lang=en&region=US
Rectal thermistorBIOPAC Systems, INCTSD202Ahttp://www.biopac.com/fast-response-thermistor
Needle electrode biopolar concentric 25 mm TPBIOPAC Systems, INCEL451http://www.biopac.com/needle-electrode-concentric-25mm
PE25 polyethylene tubing Solomon ScientificBPE-T25http://www.solsci.com/products/polyethylene-pe-tubing
26GA female luer stub adapterAccess TechnologiesLSA-26http://www.norfolkaccess.com/needles.html
Stopcocks with luer connections; 3-way; male lock, non-sterileCole-ParmerUX-30600-02http://www.coleparmer.com/Product/Large_bore_3_way
_male_lock_stopcocks
_10_pack_Non_sterile/EW-30600-23
TruWave disposable pressure transducerEdwards LifesciencesPX600I http://www.edwards.com/products/pressuremonitoring/Pages/truwavemodels.aspx?truwave=1
Type-T thermocouplePhysitemp InstrumentsIT-18http://www.physitemp.com/products/probesandwire/flexprobes.html
Central venous pediatric catheter Cook Medical C-PUM-301Jhttps://www.cookmedical.com/product/-/catalog/display?ds=cc_pum1lp_webds
Abbocath-T subclavian I.V. catheter (14g x 5 1/2")Hospira453527http://www.hospira.com/products_and_services/iv_sets/045350427
Novametrix Medical Systems, Infrared CO2 monitorSoma Technology, Inc.7100 CO2SMO http://www.somatechnology.com/MedicalProducts/novametrix_respironics_co2smo_
7100.asp
Harvard Model 683 small animal ventilatorHarvard Apparatus555282http://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/haisku2_10001_11051_44453_-1_
HAI_ProductDetail_N_37322_37323
Double-flexible tipped wire guidesCook Medical C-DOC-15-40-0-2https://www.cookmedical.com/product/-/catalog/display?ds=cc_doc_webds
High accuracy AC LVDT displacement sensorOmega EngineeringLD320-25http://www.omega.com/pptst/LD320.html
HeartStart XL defibrillator/monitorPhillips Medical SystemsM4735Ahttp://www.healthcare.philips.com/main/products/resuscitation/products/xl/
Graefe micro dissection forceps 4 inchesRoboz RS-5135http://shopping.roboz.com/Surgical-Instrument-Online-Shopping?search=RS-5135
Graefe micro dissection forceps 4 inches with teethRoboz RS-5157http://shopping.roboz.com/Surgical-Instrument-Online-Shopping?search=RS-5157
Extra fine micro dissection scissors 4 inchesRoboz RS-5882http://shopping.roboz.com/micro-scissors-micro-forceps-groups/micro-dissecting-scissors/Micro-Dissecting-Scissors-4-Straight-Sharp-Sharp
Heiss tissue retractorFine Science Tools 17011-10http://www.finescience.com/Special-Pages/Products.aspx?ProductId=321&CategoryId=134&
lang=en-US
Crile curve tip hemostatsFine Science Tools 13005-14http://www.finescience.com/Special-Pages/Products.aspx?ProductId=372
Visistat skin stapler Teleflex Incorporated528135http://www.teleflexsurgicalcatalog.com/weck/products/9936
Braided silk suture, 3-0Harvard Apparatus517706http://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/haisku2_10001_11051_43051_-1_
HAI_ProductDetail_N_37916_37936
Betadine solutionButler Schein3660https://www.henryscheinvet.com/
Sterile saline, 250 ml bagsFisher50-700-069http://www.fishersci.com/ecomm/servlet/itemdetail?catnum=50700069&storeId=10652
Heparin sodium injection, USPFresenius Kabi504201http://fkusa-products-catalog.com/files/assets/basic-html/page25.html
Loxicom (meloxicam)Butler Schein045-321https://www.henryscheinvet.com/
Thermodilution cardiac output computer for small animalsN/AN/ACustom-developed at the Resuscitation Institute using National Instruments hardware and LabVIEW software
Analog-to-digital data acquisition and analysis systemN/AN/ACustom-developed at the Resuscitation Institute using National Instruments hardware and LabVIEW software
Pneumatically-driven and electronically controlled piston device for chest compression in small animalsN/AN/ACustom-developed at the Weil Institute of Critical Care Medicine
60 Hz alternating current generatorN/AN/ACustom-developed at the Weil Institute of Critical Care Medicine

References

  1. Go, A. S., et al. Heart disease and stroke statistics--2013 update: a report from the American Heart Association. Circulation. 127 (1), e6-e245 (2013).
  2. Sans, S., Kesteloot, H., Kromhout, D. The burden of cardiovascular diseases mortality in Europe. Task Force of the European Society of Cardiology on Cardiovascular Mortality and Morbidity Statistics in Europe. Eur Heart J. 18 (12), 1231-1248 (1997).
  3. Becker, L. B., et al. The PULSE initiative: scientific priorities and strategic planning for resuscitation research and life saving therapies. Circulation. 105 (21), 2562-2570 (2002).
  4. Planta, I., et al. Cardiopulmonary resuscitation in the rat. J Appl Physiol. 65 (6), 2641-2647 (1988).
  5. Planta, I., Weil, M. H., von Planta, M., Gazmuri, R. J., Duggal, C. Hypercarbic acidosis reduces cardiac resuscitability. Crit Care Med. 19 (9), 1177-1182 (1991).
  6. Duggal, C., et al. Regional blood flow during closed-chest cardiac resuscitation in rats. J Appl Physiol. 74 (1), 147-152 (1993).
  7. Tang, W., Weil, M. H., Sun, S., Gazmuri, R. J., Bisera, J. Progressive myocardial dysfunction after cardiac resuscitation. Crit Care Med. 21 (7), 1046-1050 (1993).
  8. Sun, S., et al. Cardiac resuscitation by retroaortic infusion of blood. J Lab Clin Med. 123 (1), 81-88 (1994).
  9. Kamohara, T., et al. A comparison of myocardial function after primary cardiac and primary asphyxial cardiac arrest. Am J Respir Crit Care Med. 164 (7), 1221-1224 (2001).
  10. Fang, X., et al. Cardiopulmonary resuscitation in a rat model of chronic myocardial ischemia. J Appl Physiol. 101 (4), 1091-1096 (2006).
  11. Radhakrishnan, J., et al. Circulating levels of cytochrome c after resuscitation from cardiac arrest: a marker of mitochondrial injury and predictor of survival. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 292 (2), H767-H775 (2007).
  12. Wang, S., et al. Limiting sarcolemmal Na+ entry during resuscitation from VF prevents excess mitochondrial Ca2+ accumulation and attenuates myocardial injury. J Appl Physiol. 103 (1), 55-65 (2007).
  13. Radhakrishnan, J., Ayoub, I. M., Gazmuri, R. J. Activation of caspase-3 may not contribute to postresuscitation myocardial dysfunction. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 296 (4), H1164-H1174 (2009).
  14. Song, F., et al. Apoptosis is not involved in the mechanism of myocardial dysfunction after resuscitation in a rat model of cardiac arrest and cardiopulmonary resuscitation. Crit Care Med. 38 (5), 1329-1334 (2010).
  15. Fang, X., et al. Ultrastructural evidence of mitochondrial abnormalities in postresuscitation myocardial dysfunction. Resuscitation. 83 (3), 386-394 (2012).
  16. Jiang, J., et al. Impaired cerebral mitochondrial oxidative phosphorylation function in a rat model of ventricular fibrillation and cardiopulmonary resuscitation. Biomed Res Int. (192769), 1-9 (2014).
  17. Qian, J., et al. Post-resuscitation intestinal microcirculation: Its relationship with sublingual microcirculation and the severity of post-resuscitation syndrome. Resuscitation. 85 (6), 833-839 (2014).
  18. Noc, M., et al. Ventricular fibrillation voltage as a monitor of the effectiveness of cardiopulmonary resuscitation. J Lab Clin Med. 124 (3), 421-426 (1994).
  19. Noc, M., Weil, M. H., Sun, S., Tang, W., Bisera, J. Spontaneous gasping during cardiopulmonary resuscitation without mechanical ventilation. Am J Respir Crit Care Med. 150 (3), 861-864 (1994).
  20. Tang, W., et al. Cardiopulmonary resuscitation by precordial compression but without mechanical ventilation. Am J Respir Crit Care Med. 150 (3), 1709-1713 (1994).
  21. Duggal, C., Weil, M. H., Tang, W., Gazmuri, R. J., Sun, S. Effect of arrest time on the hemodynamic efficacy of precordial compression. Crit Care Med. 23 (7), 1233-1236 (1995).
  22. Fukui, M., Weil, M. H., Tang, W., Yang, L., Sun, S. Airway protection during experimental CPR [see comments. Chest. 108 (6), 1663-1667 (1995).
  23. Sato, Y., et al. Adverse effects of interrupting precordial compression during cardiopulmonary resuscitation. Crit Care Med. 25 (5), 733-736 (1997).
  24. Xie, J., et al. High-energy defibrillation increases the severity of postresuscitation myocardial dysfunction. Circulation. 96 (2), 683-688 (1997).
  25. Ayoub, I. M., Brown, D. J., Gazmuri, R. J. Transtracheal oxygenation: an alternative to endotracheal intubation during cardiac arrest. Chest. 120 (5), 163-170 (2001).
  26. Kolarova, J., Ayoub, I. M., Yi, Z., Gazmuri, R. J. Optimal timing for electrical defibrillation after prolonged untreated ventricular fibrillation. Crit Care Med. 31 (7), 2022-2028 (2003).
  27. Song, F., et al. Delayed high-quality CPR does not improve outcomes. Resuscitation. 82 (Suppl 2), S52-S55 (2011).
  28. Sun, S., et al. Optimizing the duration of CPR prior to defibrillation improves the outcome of CPR in a rat model of prolonged cardiac arrest. Resuscitation. 82 (Suppl 2), S3-S7 (2011).
  29. Ye, S., et al. Comparison of the durations of mild therapeutic hypothermia on outcome after cardiopulmonary resuscitation in the rat. Circulation. 125 (1), 123-129 (2012).
  30. Fang, X., Huang, L., Sun, S., Weil, M. H., Tang, W. Outcome of prolonged ventricular fibrillation and CPR in a rat model of chronic ischemic left ventricular dysfunction. Biomed Res Int. 2013 (564501), 1-7 (2013).
  31. Tang, W., et al. Pulmonary ventilation/perfusion defects induced by epinephrine during cardiopulmonary resuscitation. Circulation. 84 (5), 2101-2107 (1991).
  32. Planta, I., Wagner, O., von Planta, M., Ritz, R. Determinants of survival after rodent cardiac arrest: implications for therapy with adrenergic agents. Int J Cardiol. 38, 235-245 (1993).
  33. Planta, I., Wagner, O., von Planta, M., Scheidegger, D. Coronary perfusion pressure, end-tidal CO2 and adrenergic agents in haemodynamic stable rats. Resuscitation. 25 (3), 203-217 (1993).
  34. Tang, W., et al. Epinephrine increases the severity of postresuscitation myocardial dysfunction. Circulation. 92 (10), 3089-3093 (1995).
  35. Pan, T., Chau, S., von, P. M., Studer, W., Scheidgger, D. An experimental comparative study on the characteristics of ventricular fibrillation during cardiac arrest and methoxamine administration. J Tongji Med Univ. 17 (2), 94-97 (1997).
  36. Pan, T., Zhou, S., Studer, W., von Planta, M., Scheidegger, D. Effect of different drugs on end-tidal carbon dioxide during rodent CPR. J Tongji Med Univ. 17 (4), 244-246 (1997).
  37. Sun, S., Weil, M. H., Tang, W., Povoas, H. P., Mason, E. Combined effects of buffer and adrenergic agents on postresuscitation myocardial function. J Pharmacol Exp Ther. 291 (2), 773-777 (1999).
  38. Sun, S., Weil, M. H., Tang, W., Kamohara, T., Klouche, K. alpha-Methylnorepinephrine, a selective alpha2-adrenergic agonist for cardiac resuscitation. J Am Coll Cardiol. 37 (3), 951-956 (2001).
  39. Studer, W., Wu, X., Siegemund, M., Seeberger, M. Resuscitation from cardiac arrest with adrenaline/epinephrine or vasopressin: effects on intestinal mucosal tonometer pCO(2) during the postresuscitation period in rats. Resuscitation. 53 (2), 201-207 (2002).
  40. Klouche, K., Weil, M. H., Sun, S., Tang, W., Zhao, D. H. A comparison of alpha-methylnorepinephrine, vasopressin and epinephrine for cardiac resuscitation. Resuscitation. 57 (1), 93-100 (2003).
  41. Cammarata, G., et al. Beta1-adrenergic blockade during cardiopulmonary resuscitation improves survival. Crit Care Med. 32 (9 Supppl), S440-S443 (2004).
  42. Huang, L., Weil, M. H., Cammarata, G., Sun, S., Tang, W. Nonselective beta-blocking agent improves the outcome of cardiopulmonary resuscitation in a rat model. Crit Care Med. 32 (9 Suppl), S378-S380 (2004).
  43. Sun, S., et al. The effects of epinephrine on outcomes of normothermic and therapeutic hypothermic cardiopulmonary resuscitation. Crit Care Med. 38 (11), 2175-2180 (2010).
  44. Sun, S., Weil, M. H., Tang, W., Fukui, M. Effects of buffer agents on postresuscitation myocardial dysfunction. Crit Care Med. 24 (12), 2035-2041 (1996).
  45. Studer, W., et al. Influence of dobutamine on the variables of systemic haemodynamics, metabolism, and intestinal perfusion after cardiopulmonary resuscitation in the rat. Resuscitation. 64 (2), 227-232 (2005).
  46. Planta, M., von Planta, I., Wagner, O., Scheidegger, D. Adenosine during cardiac arrest and cardiopulmonary resuscitation: a placebo-controlled, randomized trial. Crit Care Med. 20 (5), 645-649 (1992).
  47. Tang, W., Weil, M. H., Sun, S., Pernat, A., Mason, E. K(ATP) channel activation reduces the severity of postresuscitation myocardial dysfunction. Am J Physiol. 279 (4), (2000).
  48. Gazmuri, R. J., Ayoub, I. M., Hoffner, E., Kolarova, J. D. Successful ventricular defibrillation by the selective sodium-hydrogen exchanger isoform-1 inhibitor cariporide. Circulation. 104 (2), 234-239 (2001).
  49. Gazmuri, R. J., Ayoub, I. M., Kolarova, J. D., Karmazyn, M. Myocardial protection during ventricular fibrillation by inhibition of the sodium-hydrogen exchanger isoform-1. Crit Care Med. 30 (4 Suppl), S166-S171 (2002).
  50. Wann, S. R., Weil, M. H., Sun, S., T, T. a. n. g. ,. W. .. ,. &. a. m. p. ;. P. e. l. l. i. s. ,. Pharmacologic defibrillation. Crit Care Med. 30 (4 Suppl), S154-S156 (2002).
  51. Sun, S., Weil, M. H., Tang, W., Kamohara, T., Klouche, K. Delta-opioid receptor agonist reduces severity of postresuscitation myocardial dysfunction. Am J Physiol. 287 (2), H969-H974 (2004).
  52. Wang, J., et al. A lazaroid mitigates postresuscitation myocardial dysfunction. Crit Care Med. 32 (2), 553-558 (2004).
  53. Huang, L., et al. Levosimendan improves postresuscitation outcomes in a rat model of CPR. J Lab Clin Med. 146 (5), 256-261 (2005).
  54. Kolarova, J., Yi, Z., Ayoub, I. M., Gazmuri, R. J. Cariporide potentiates the effects of epinephrine and vasopressin by nonvascular mechanisms during closed-chest resuscitation. Chest. 127 (4), 1327-1334 (2005).
  55. Kolarova, J. D., Ayoub, I. M., Gazmuri, R. J. Cariporide enables hemodynamically more effective chest compression by leftward shift of its flow-depth relationship. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 288 (6), H2904-H2911 (2005).
  56. Fang, X., et al. Mechanism by which activation of delta-opioid receptor reduces the severity of postresuscitation myocardial dysfunction. Crit Care Med. 34 (10), 2607-2612 (2006).
  57. Singh, D., Kolarova, J. D., Wang, S., Ayoub, I. M., Gazmuri, R. J. Myocardial protection by erythropoietin during resuscitation from ventricular fibrillation. Am J Ther. 14 (4), 361-368 (2007).
  58. Shan, Y., Sun, S., Yang, X., Weil, M. H., Tang, W. Opioid receptor agonist reduces myocardial ischemic injury when administered during early phase of myocardial ischemia. Resuscitation. 81 (6), 761-765 (2010).
  59. Sun, S., et al. Pharmacologically induced hypothermia with cannabinoid receptor agonist WIN55, 212-2 after cardiopulmonary resuscitation. Crit Care Med. 38 (12), 2282-2286 (2010).
  60. Chung, S. P., et al. Effect of therapeutic hypothermia vs delta-opioid receptor agonist on post resuscitation myocardial function in a rat model of CPR. Resuscitation. 82 (3), 350-354 (2011).
  61. Radhakrishnan, J., Kolarova, J. D., Ayoub, I. M., Gazmuri, R. J. AVE4454B--a novel sodium-hydrogen exchanger isoform-1 inhibitor--compared less effective than cariporide for resuscitation from cardiac arrest. Transl Res. 157 (2), 71-80 (2011).
  62. Tsai, M. S., et al. Ascorbic acid mitigates the myocardial injury after cardiac arrest and electrical shock. Intensive Care Med. 37 (12), 2033-2040 (2011).
  63. Weng, Y., et al. Cholecystokinin octapeptide induces hypothermia and improves outcomes in a rat model of cardiopulmonary resuscitation. Crit Care Med. 39 (11), 2407-2412 (2011).
  64. Hayashida, K., et al. H(2) gas improves functional outcome after cardiac arrest to an extent comparable to therapeutic hypothermia in a rat model. J Am Heart Assoc. 1 (5), e003459-e003459 (2012).
  65. Motl, J., Radhakrishnan, J., Ayoub, I. M., Grmec, S., Gazmuri, R. J. Vitamin C compromises cardiac resuscitability in a rat model of ventricular fibrillation. Am J Ther. Jun. 16, (2012).
  66. Weng, Y., et al. Cannabinoid 1 (CB1) receptor mediates WIN55, 212-2 induced hypothermia and improved survival in a rat post-cardiac arrest model. Resuscitation. 83 (9), 1145-1151 (2012).
  67. Radhakrishnan, J., et al. Erythropoietin facilitates resuscitation from ventricular fibrillation by signaling protection of mitochondrial bioenergetic function in rats. Am J Transl Res. 5 (3), 316-326 (2013).
  68. Rungatscher, A., et al. Cardioprotective effect of delta-opioid receptor agonist vs. mild therapeutic hypothermia in a rat model of cardiac arrest with extracorporeal life support. Resuscitation. 84 (2), 244-248 (2013).
  69. Ma, L., Lu, X., Xu, J., Sun, S., Tang, W. Improved cardiac and neurologic outcomes with postresuscitation infusion of cannabinoid receptor agonist WIN55, 212-2 depend on hypothermia in a rat model of cardiac arrest. Crit Care Med. 42 (1), 42-48 (2014).
  70. Tsai, M. S., et al. Combination of intravenous ascorbic acid administration and hypothermia after resuscitation improves myocardial function and survival in a ventricular fibrillation cardiac arrest model in the rat. Acad Emerg Med. 21 (3), 257-265 (2014).
  71. Wang, T., et al. Intravenous infusion of bone marrow mesenchymal stem cells improves brain function after resuscitation from cardiac arrest. Crit Care Med. 36 (11 Suppl), S486-S491 (2008).
  72. Wang, T., et al. Improved outcomes of cardiopulmonary resuscitation in rats with myocardial infarction treated with allogenic bone marrow mesenchymal stem cells. Crit Care Med. 37 (3), 833-839 (2009).
  73. Wang, T., et al. Mesenchymal stem cells improve outcomes of cardiopulmonary resuscitation in myocardial infarcted rats. J Mol Cell Cardiol. 46 (3), 378-384 (2009).
  74. Lin, J. Y., et al. Model of cardiac arrest in rats by transcutaneous electrical epicardium stimulation. Resuscitation. 81 (9), 1197-1204 (2010).
  75. Dave, K. R., Della-Morte, D., Saul, I., Prado, R., Perez-Pinzon, M. A. Ventricular fibrillation-induced cardiac arrest in the rat as a model of global cerebral ischemia. Transl Stroke Res. 4 (5), 571-578 (2013).
  76. Chen, M. H., et al. A simpler cardiac arrest model in rats. Am J Emerg Med. 25 (6), 623-630 (2007).
  77. Gazmuri, R. J., Kube, E. Capnography during cardiac resuscitation: a clue on mechanisms and a guide to interventions. Crit Care. 7 (6), 411-412 (2003).
  78. Lee, H. B., Blaufox, M. D. Blood volume in the rat. J Nucl Med. 26 (1), 72-76 (1985).
  79. Bers, D. M., Bassani, J. W., Bassani, R. A. Na-Ca exchange and Ca fluxes during contraction and relaxation in mammalian ventricular muscle. Ann N Y Acad Sci. 779, 430-442 (1996).
  80. Jasani, M. S., Salzman, S. K., Tice, L. L., Ginn, A., Nadkarni, V. M. Anesthetic regimen effects on a pediatric porcine model of asphyxial arrest. Resuscitation. 35 (1), 69-75 (1997).
  81. Kato, R., Foex, P. Myocardial protection by anesthetic agents against ischemia-reperfusion injury: an update for anesthesiologists. Can J Anaesth. 49 (8), 777-791 (2002).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

98

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved