מודל עכברוש של פרפור חדרים והחייאה על ידי קונבנציונלי סגור חזה טכניקה

Summary

This article describes a rat model of electrically-induced ventricular fibrillation and resuscitation by chest compression, ventilation, and delivery of electrical shocks that simulates an episode of sudden cardiac arrest and conventional cardiopulmonary resuscitation. The model enables gathering insights on the pathophysiology of cardiac arrest and exploration of new resuscitation strategies.

Abstract

A rat model of electrically-induced ventricular fibrillation followed by cardiac resuscitation using a closed chest technique that incorporates the basic components of cardiopulmonary resuscitation in humans is herein described. The model was developed in 1988 and has been used in approximately 70 peer-reviewed publications examining a myriad of resuscitation aspects including its physiology and pathophysiology, determinants of resuscitability, pharmacologic interventions, and even the effects of cell therapies. The model featured in this presentation includes: (1) vascular catheterization to measure aortic and right atrial pressures, to measure cardiac output by thermodilution, and to electrically induce ventricular fibrillation; and (2) tracheal intubation for positive pressure ventilation with oxygen enriched gas and assessment of the end-tidal CO₂. A typical sequence of intervention entails: (1) electrical induction of ventricular fibrillation, (2) chest compression using a mechanical piston device concomitantly with positive pressure ventilation delivering oxygen-enriched gas, (3) electrical shocks to terminate ventricular fibrillation and reestablish cardiac activity, (4) assessment of post-resuscitation hemodynamic and metabolic function, and (5) assessment of survival and recovery of organ function. A robust inventory of measurements is available that includes – but is not limited to – hemodynamic, metabolic, and tissue measurements. The model has been highly effective in developing new resuscitation concepts and examining novel therapeutic interventions before their testing in larger and translationally more relevant animal models of cardiac arrest and resuscitation.

Introduction

קרוב ל360,000 אנשים בארצות הברית ¹ ועוד רב ברחבי העולם סובל ² פרק של דום לב פתאומי מדי שנה. ניסיונות להשיב את החיים דורשים לא רק שפעילות הלב יתחדש אבל נזק שלאיברים חיוניים למנוע, למזער, או הפוכה. טכניקות החייאה הנוכחיות להניב שיעור החייאה ראשוני של כ -30%; עם זאת, הישרדות לשחרור מבית חולים היא רק 5% ^1. תפקוד לקוי של שריר לב, הפרעות בתפקוד נוירולוגים, דלקות מערכתיות, מחלות intercurrent, או שילוב של כל אלה המתרחשים בחשבון שלאחר החייאה-לחלק הגדול מהחולים שימותו למרות תשואה הראשונית של מחזור דם. לפיכך, יש צורך בהבנה טוב יותר של גישות הפתופיזיולוגיה והחייאה הבסיסיות רומן בדחיפות כדי להגדיל את שיעור ההחייאה ראשונית והישרדות שלאחר מכן עם תפקוד איבר שלם.

מצב בעלי חייםls של דום לב לשחק תפקיד קריטי בהתפתחות של טיפולי החייאה חדשים על ידי מתן תובנות על הפתופיזיולוגיה של מעצר והחייאת לב ומציע אמצעים מעשיים להמשיג ולבדוק התערבויות חדשות לפני שהם יכולים להיבחן בבני האדם ^3. מודל העכברים של החייאת חזה סגור (CPR) שתואר כאן יש תפקיד חשוב. המודל פותח בשנת 1988 על ידי איירין פון Planta - עמית מחקר בזמן - ומשתפי הפעולה שלה ⁴ במעבדה של פרופ 'מקס מאוחר הארי וייל MD, Ph.D. באוניברסיטה למדעי בריאות (שם אוניברסיטת פרנקלין רוזלינד של רפואה ומדע בשנת 2004) וכבר בשימוש נרחב בתחום ההחייאה בעיקר על ידי עמיתיו של פרופ 'וייל והחניכים שלהם.

מודל המדמה אירוע של דום לב פתאומי עם החייאה ניסתה על ידי טכניקות החייאה קונבנציונליות ובכך כולל לגייס אתיון של פרפור חדרים (VF) על ידי אספקת זרם חשמלי לendocardium החדר ממני ומתן ההחייאה חזה סגור על ידי מכשיר בוכנה מונע פניאומטית תוך אספקה ​​במקביל אוורור לחץ חיובי עם גז מועשר בחמצן. סיום VF מושגת על ידי משלוח transthoracic של מכות חשמל. מודל החולדה יוצר איזון בין המודלים שפותחו בבעלי חיים גדולים (למשל, חזירים) ומודלים שפותחו בבעלי חיים קטנים יותר (למשל, עכברים) המאפשר בדיקה של מושגי מחקר חדשים באופן טוב-תקני, לשחזור, ויעיל עם גישה לחזקה המלאי של מדידות רלוונטיות. המודל שימושי במיוחד במחקר כדי לחקור רעיונות חדשים ולבחון את ההשפעות של ערפלנים לפני ביצוע מחקרים במודלים של בעלי חיים גדולים יותר שהם יקרים יותר, אבל השפעת translational יותר בשלבים מוקדמים.

חיפוש Medline לכל מאמרי ביקורת עמיתי דיווח כמודל החולדה imilar יש VF כמנגנון של דום לב וצורה כלשהי של החייאת חזה סגורה חשף כולל של 69 מחקרים מקוריים נוספים תוך שימוש במודל מאז שפורסם לראשונה בשנת 1988 ^4. תחומי המחקר כוללים היבטי pathophysiological של החייאה ^5-17, גורמים המשפיעים על תוצאות ^18-30, את התפקיד של התערבויות תרופתיות בחינת סוכני vasopressor ^31-43, סוכני חיץ ^44, סוכנים האינוטרופית ^45, סוכנים במטרה שריר לב או הגנה מוחית ^46-70, וגם את ההשפעות של תאי גזע mesenchymal ^71-73.

המודל והפרוטוקול מתואר במאמר זה נמצא בשימוש במכון ההחייאה. ובכל זאת, יש הזדמנויות מרובות ל" אישית "המודל המבוסס על היכולות הזמינות לחוקרים בודדים והמטרות של המחקרים.

Protocol

הערה: הפרוטוקול אושר על ידי ועדת הטיפול ושימוש בבעלי חיים המוסדיים באוניברסיטת פרנקלין רוזלינד לרפואה ומדע. כל הנהלים בהתאם למדריך לטיפול ושימוש בחיות מעבדה שפורסמו על ידי המועצה הלאומית למחקר.

1. התקנה ניסיונית והרדמה

1. כיולים לבצע את האותות השונים שנתפסו באמצעות מערכת איסוף נתונים (לחצים, טמפרטורה, עקירת בוכנה, רל [ECG], capnography, וכו ').
2. לעקר מכשירים וצנתרים (למשל, בחיטוי מכשירים ומעקר אתילן אוקסיד לצנתרים) ופועל עטוי גלימות ולובש מסכה, כובע, כפפות סטריליות ואם הניסוי כרוך בניתוח הישרדות. מכשירים נקיים כירורגית וצנתרים אבל אין צורך להיות סטרילי לניתוחים שאינם הישרדות.
3. הכן את הצנתרים מתוארים להלן ומתוארים בFiתרשים 1 לעכברוש במשקל של בין 0.45 קילוגרם ו0.55 קילוגרם.
   1. מארק קטטר התרמי 2F T-סוג, OD גודל 0.6 מ"מ (2F), בשעה 3, 5, ו -8 סנטימטרים מהקצה עם סמן קבוע, לקידום לאב העורקים החזי. השתמש בקטטר זה למדידת טמפרטורה ותפוקת לב.
   2. צינורות פוליאתילן Cut, גודל 0.46 מזהה מ"מ וOD 0.91 מ"מ (PE25) 25 ≈ סנטימטר אורך, אחד לקידום לבית חזה של אב העורקים ועוד לקידום לעלייה הימנית.
   3. חותך את הקצה של כל קצה צנתר PE25 להיות מוכנס לתוך הכלי בזווית של 90 מעלות.
      הערה: טיפים משופעים בזווית של 45 ° עלולים לגרום לניקוב כלי בעת שימוש בצינורות PE. עם זאת, הקצה המשופע ניתן קצץ עם נייר זכוכית כדי להפחית את חריפותו.
   4. צרף מתאם בדל luer הנשי 26 מד לקצה הפרוקסימלי של כל קטטר PE25.
   5. סמן את הקטטר באב העורקים בבית 3, 5, ו -8 סנטימטרים וקטטר פרוזדורים תקין בבית 3, 5, 8, 10 ו -12 סנטימטרים מהקצה. השתמש בAOקטטר rtic למדידת לחץ באב עורקים ולדגימת דם. השתמש בקטטר פרוזדורים הנכון למדידת לחץ פרוזדורים נכון.
   6. צרף כל מתאם בדל luer למצויד בשסתום 3-דרך מתמר לחץ.
   7. חותך את הקצה של OD צנתר ורידי פוליאוריטן 3F ילדים, מזהה מ"מ גודל 0.6 ו 1.0 מ"מ (3F), בזווית של 45 מעלות לקידום לעלייה ימנית.
   8. סמן את צנתר וריד הצוואר החיצוני 3F ב 4 סנטימטר מהקצה. השתמש בקטטר זה כדי לקדם את חוט מדריך לחדר ממני לזירוז חשמלי של VF עם האפשרות שלאחר מכן להשתמש בו עבור משלוח סמים ודגימת דם. צרף ברזלים 3-בדרך לקטטר.
      הערה: סימנים שנעשו על הצנתרים להדרכתו של המנתח כצנתרים מתקדמים. הסימן ב -3 סנטימטרים בצנתרים מתקדם באמצעות התראות כלי הירך המנתח בשטח של התנגדות פוטנציאלית כתוצאה מהכולים מתחילים עקומה כלפי מעלה, אל אזור בית החזה. Mar 8 סנטימטריםks על קטטר אב העורקים וקטטר התרמי לציין את הקצה הוא באב העורקים החזי יורד. סימן 12 סנטימטר על קטטר פרוזדורים תקין מצביע על הקצה הוא בעלייה הימנית. סימני ביניים מדריכים כצנתרים מתקדמים. סימן 4 סנטימטר בקטטר וריד הצוואר החיצוני תקין מצביע על הקצה הוא בעלייה הימנית.
   9. ראש כל צנתר עם מי מלח המכיל 10 IU / ml של הפרין (כדי להבטיח patency) ולהפוך את הברזים למיניהם המקביל למצב הסגור.
   10. חותך צינורית פרופילן אתילן fluorinated 5F, מזהה 1.1 מ"מ גודל והמ"מ OD 1.6 (5F) רכוב על stylette, להיות ≈ 8 סנטימטר אורך יצירת קצה קהה. השתמש בצינורית זו לקידום לתוך קנה הנשימה הצבת ≈ קצהו 2 סנטימטר מקארינה לאוורור לחץ חיובי במהלך ואחרי החייאת לב.
       הערה: stylette המתכת של הצינורית צריכה להיות כפופה בזווית 145 מעלות ≈ 3 סנטימטר מהקצה כדי לסייע בקידום לתוך קנה הנשימה.
4. הכן את העכברוש למכשור כירורגי.
   1. להרדים את העכברוש בזריקת intraperitoneal של נתרן pentobarbital (45 מ"ג / קילוגרם). במידת הצורך, לתת מנות נוספות (10 מ"ג / קילוגרם) לוריד בכל 30 דקות (לאחר הקמת גישה של כלי דם) כדי לשמור על מטוס של הרדמה כירורגית.
      הערה: רוב המחקרים השתמשו Sprague-Dawley חולדות מגדל פרש ממין זכר.
   2. קליפ השיער מהאזורים כירורגית והאזורים שבם מכות חשמל יימסרו; הכולל את אזור גב החזה, מפשעה ימין ועל שמאל, צוואר, ופני שטח קדמי של בית החזה.
   3. לנהל 0.02 מ"ג / קילוגרם (1 מיליליטר / קילוגרם) תת עורי עצירות לשיכוך כאבים.
   4. תקן את העכברוש במצב שכיבה על לוח כירורגית על ידי הדבקה הקדמית ואחורי גפיים בזווית של 45 מעלות מקו האמצע.
   5. אזורי חתך לשפשף עם לשפשף בבטאדין ואחריו אתנול 70% 3 פעמים.
   6. החל שכבה דקה של משחה עיניים אנטי-בקטריאלי לקרניות.
   7. הכנס ≈ thermistor רקטלית 4 סנטימטר לתוך פי הטבעת ולאבטח את thermistor ללוח כירורגית.
   8. לשמור על טמפרטורת גוף ליבה בין 36.5 מעלות צלזיוס ו -37.5 מעלות צלזיוס באמצעות מנורת חימום ליבון לאורך כל הניסוי.
   9. מחטי ECG המקום מתחת לעור בגפה העליונה ימין, שמאל גפה עליונה, וגפיים אחוריות הימני, ולהקליט את ECG לאורך כל הניסוי.

2. Cannulations כלי הדם

2.1) משמאל עורק הירך לקידום קטטר התרמי T-הסוג לתוך אב העורקים החזי יורדים

1. ביצוע חתך 2 סנטימטרים באזור המפשעה השמאלי בזווית 90 מעלות ביחס למטע שלו.
2. לחשוף את כלי הדם ועצב הירך על ידי נתיחה בוטה של ​​רקמת חיבור המקיפה באמצעות זוג hemostats.
3. לחשוף את הנדן של כלי הדם סביב כלי באמצעות מלקחיים נתיחת מיקרו מעוקלים.
   הערה: יש להימנע מניקוב או כלי שיט או כלי neRVE.
4. לנסוע עם מלקחיים נתיחת מיקרו מתחת לעורק, וריד, ועצב הירך ולתמוך בהם בזווית 90 מעלות ביחס לכלי השיט. עם שני הכלים והעצב הנתמכים, להתחיל הפרדה של העורק מהעצב והווריד על ידי שימוש בזוג נוסף של מלקחיים נתיחת מיקרו מעוקלים.
   הערה: הפרדה נעשית מתחת ובמקביל לכולים להקטין את הסיכון של פגיעה בכלי הדם והעצבים.
5. למקם את המלקחיים תמיכה; שחרור העצב לתמוך רק ורידים ועורקים.
6. אשכול מלקחיים בין העורק והווריד ולהפריד ביניהם באורך של ≈ 1 סנטימטר.
7. שחרר את הווריד המבודד ממלקחי התמיכה בעדינות, ותישאר תומך העורק בלבד.
8. הכנס שני 3-0 ligatures המשי קלוע שאינו נספג ועמדה אחת distally והפרוקסימלי אחד ≈ 1 בנפרד סנטימטר.
9. להדק היטב מייתר דיסטלי תוך העורק עדיין נתמך באמצעות קשר & # של מנתח160; ואחריו שני קשרים יחידים. להדק את המייתר הפרוקסימלי עם הקשר רופף של מנתח.
10. לעשות חתך קטן בכלי השיט באמצעות מספריים לנתיחה מיקרו ליד מייתר דיסטלי בזווית 60 מעלות ביחס לכלי שיט חיתוך כ ¼ שלה באזור החתך.
    הערה: טיפה קטנה של דם שיצאה מהאותות לחתוך הושג לומן.
11. לטפטף מי מלח heparinized על הספינה, כדי לאפשר הכנסה חלקה של קטטר.
    הערה: גם אחת לשתי טיפות של 1% לידוקאין פתרון יכולה לשמש כדי למנוע התכווצות כלי דם.
12. הכנס מחט מד 22 - טיפ שכבר התכופף מותאם אישית בזווית 70 מעלות וקהות באמצעות נייר זכוכית (כלומר, היכרויות) - לפתיחת כלי תוך משיכת בעדינות המייתר הדיסטלי עם hemostats כדי לייצב את הספינה.
13. הרם את ההיכרויות בעדינות לחשוף את לומן ולהנחות את הצנתר התרמי T-הסוג תחת ההיכרויות, הסרתזה פעם אחת קצה הצנתר הוכנס.
14. להחזיק את הקטטר במקום ביד אחת תוך התאמה מצד השני בתנוחה נוחה לקידום קטטר.
15. סגור את המלקחיים תמיכה ולהעביר אותם distally כצנתר מתקדם.
    הערה: אם כל בהתנגדות תוך קידום קטטר; לעצור, למשוך בחזרה ולהכניס בזווית חלופית.
16. לקדם את הקטטר עד סימן 8 סנטימטר למצב את קצהו לאב העורקים החזי יורדים.
17. לאבטח את הצנתר לכלי השיט על ידי הידוק המייתר הפרוקסימלי והוספת שני קשרים יחידים נוספים.
    הערה: קשרים מאובטחים מספיק חזק כדי למנוע דימום סביב הקטטר והעקירה בשוגג; עדיין, משוחרר מספיק כדי לאפשר תנועה קדימה ואחורה במידת הצורך למיצוב מחדש.
18. הסר את המלקחיים וhemostats בעדינות.

2.2) משמאל וריד הירך לקידום קטטר PE25 לעלייה הימנית

1. t Liftעורק הירך הוא כבר cannulated עם קטטר התרמי T-הסוג-ידי משייכת על המייתר וחושף את וריד הירך הסמוך.
2. לנסוע תחת הווריד באמצעות מלקחיים ולפתוח אותם כדי לתמוך בווריד.
3. בצע את שלבי 2.1.8 באמצעות 2.1.18 אבל קידום קטטר PE25 (במקום תרמי T-הסוג) לסימן 12 סנטימטר למצב את קצהו קרוב העלייה הימנית.
4. ודא דם ניתן למשוך באמצעות קטטר כדי לאשר את העמדה בלא הפרעה intraluminal ולשטוף את הקטטר עם 0.2 מיליליטר של תמיסת מלח heparinized.
5. סגור את החתך הניתוחי עם הקשר של מנתח יחיד.

2.3) עורק הירך ימין לקידום קטטר PE25 לתוך אב העורקים החזי יורדים

1. בצע את שלבי 2.1.1 באמצעות 2.1.18 אבל קידום קטטר PE25 לסימן 8 סנטימטר למצב את קצהו לאב העורקים החזי יורדים.
2. חזור על שלבים 2.2.4 ו2.2.5.

2.4) וריד הצוואר חיצוני ימין לקידום צנתר ורידי הילדים פוליאוריטן 3F לעלייה ימנית

1. ביצוע חתך ארוך 1.5 סנטימטרים מתחיל בבסיס הצוואר, 1 סנטימטר מהימין לקנה הנשימה, שהסתיים ממש מתחת לבלוטת התריס.
   הערה: הימנע מפציעה או לחשוף את בלוטת התריס.
2. בעדינות לנתח את רקמת חיבור המקיפה באמצעות זוג hemostats לחשוף את וריד הצוואר החיצוני.
3. לנסוע תחת הווריד באמצעות מלקחיים ולפתוח אותם כדי לתמוך בווריד.
4. חזור על שלבים 2.1.8 באמצעות 2.1.18 לצנתור וריד, אבל קידום קטטר 3F לסימן 4 סנטימטר מיצוב קצהו בעלייה הימנית.
5. חזור על שלב 2.2.4.
6. מכסה את הקטטר עם ברזלים 3-בדרך ולהפוך למצב הסגור זה.

3. הקנים אינטובציה

3.1) חשיפת קנה נשימה

1. להרחיב את החתך בצוואר שבוצע בעבר לכיוון קו האמצע באמצעות hemostats.
2. Diss ect עם hemostats ומלקחיים באמצעות טכניקה בוטה חלק sternohyoid, sternothyroid, והצדע של שרירי cleidocephalic לחשוף את קנה הנשימה ולהחזיק אותה חשוף באמצעות מפזר רקמה.

3.2) אינטובציה לקנה הנשימה

1. משוך את הלשון כדי למתוח את דרכי הנשימה. לקדם את הקטטר 5F (כלומר, צינורית לקנה הנשימה) רכובה על stylette. בתוקף להחזיק את הצינורית תוך קידום עם הקצה מצביע כלפי מעלה ומראש המבקשים להיכנס לדרך הנשימה העליונה, מיתרי קול, ואת קנה הנשימה.
2. Trans-לדמיין את הצינורית לקנה הנשימה כפי שהוא מקדם להדרכה למקום נכון.
3. הסר את stylette מהצינורית ולצרף מתאם מנתח אינפרא אדום CO ₂ לקצה הדיסטלי של הצינורית.
4. לאשר אינטובציה לקנה הנשימה מוצלחת על ידי הכרה בצורת גל capnographic האופיינית, כלומר, CO ₂ דרכי הנשימה גוברת במהלך פקיעה, ולהקטין בהשראה.

> 4. אישור ove_title "של Baseline יציבות

1. השלם את המכשור וחיבור של הצנתרים, cannulas השונים כירורגית, וא.ק.ג. מוביל באמצעות מתמרים המקביל שלהם ומזגני אות לנתוני מערכת רכישה, ולאשר יציבות המודינמית מבוסס על meaurements לב פלט ואת לחץ דם ויציבות מטבולית (מומלצת) על ידי מדידת דם גזים ורמות חומצת החלב.
   הערה: תפוקת לב נמדדה על ידי ניתוח מחשב של עקומת thermodilution נרשמה באב העורקים החזי יורד דרך התרמי לאחר 200 הזרקת μl בולוס של 0.9% NaCl בטמפרטורת חדר לתוך העלייה הימנית.
2. הגדר את ערכי ייחוס הבסיסיים הספציפיים לפרמטרים השונים של עניין; אשר עשויים להשתנות תלוי בזן עכברים, המגדר, והמשקל. Baseline והתייחסות שלאחר החייאת ערכים מניסוי נציג תוך שימוש במודל העכברים שתואר לעיל מופיעים בטבלה 1.

5. פרוטוקול ניסויי

5.1) אינדוקציה של פרפור חדרים (VF)

1. הכנס תת עורי מחט בדופן הבטן של החולדה המחוברת לקוטב השלילי של 60 Hz, לסירוגין גנרטור הנוכחי (AC) (mA 0 עד 12). הימנע קידום המחט מעבר לרקמה התת עורית לתוך חלל הבטן, כדי למנוע פגיעה בשוגג לאיברים פנימיים.
2. חבר קצה אחד של OD 0.38 מ"מ precurved ו -40 סנטימטרים חוט מדריך ארוך (דרך מחבר חוט) לקוטב החיובי של גנרטור AC. ודא שהקוטביות אינה מבוטל; אחרת VF לא יכול להיות מושרה.
3. הסר את שסתום 3-הדרך מקטטר פוליאוריטן 3F הוכנס לוריד הצוואר החיצוני תקין ולקדם את הקצה הרך של חוט המדריך כ 7 סנטימטר המבקש להיכנס לחדר ממני תוך ניטור אק"ג והלחץ באב העורקים.
   הערה: מיקום נכון של חוט המדריך תהיה שהוצעה על ידי ventr מחוץ לרחםפעימות icular נצפו באק"ג ולחץ באב עורקים.
4. הפעל את מחולל AC 60 הרץ ולהגדיל בהדרגה את הנוכחית תוך מעקב הלחץ באב העורקים.
   הערה: נוכחי mA 2.0 היא בדרך כלל מספיק כדי לגרום VF אבל זה משתנה מותנה במיקומו של חוט מדריך יחסית לחדר ממני. התאמות קלות למיקום הקצה ייתכן שתידרש כדי לגרום לVF ברמות הנוכחיות נמוכות יותר.
5. לאשר גיוס של VF בתיעוד (1) הפסקת פעימות אב העורקים ודעיכה מעריכית של הלחץ באב העורקים עד 20 ≈ מ"מ כספית תוך 5 שניות ו≈ (2) הופעה של פעילות חשמלית לא מאורגנת באק"ג, כפי שמוצג באיור 2.
6. לשמור הנוכחי באין מפריע במשך 3 דקות הפחתת עוצמת אחרי דקות הראשונות כלמחצית מהרמה הנדרשת כדי לגרום לVF.
7. ניתק את הזרם לאחר 3 דקות ומסמך שVF ממשיך ללא הצורך להחיל נוכחי.
   הערה: לבבות קטנים defibrillate באופן ספונטניניתנו אורך קצר חשמלי לפי הקצה המוביל של חזית fibrillatory מגיע לקצו הנגרר בתקופה עקשן מניעת החזרה. רק לאחר תקופה של איסכמיה לבבית;. כלומר, 3 דקות, מספיק כדי להאט הולכה כדי לאפשר חזרה היא שVF הופך עצמי מתמשך, כפי שמוצג באיור 2.
8. הסר את חוט מדריך, מחדש הכובע קטטר וריד הצוואר עם ברזלים 3-בדרך, להסיר את מחט הקרקע, ולאפשר VF להמשיך באופן ספונטני למשך הרצון של הפרוטוקול לפני שמתחילים התערבויות החייאה (כלומר, 4 עד 15 דקות על בסיס פורסם מחקרים).

5.2) לחיצות חזה ואוורור לחץ חיובי

הערה: מדחס החזה מובלט בפרסום זה הוא מכשיר בוכנה מחוייט מונע פניאומטית ובקרה אלקטרונית. המאוורר הוא מכשיר זמין באופן מסחרי.

1. לנצל את הזמן של VF שלא טופל לפעולות ב תוארelow; למרות שהם יכולים להתבצע לפני גרימת VF.
2. סמן את החזה ברמה של 2.8 סנטימטר ו -4.2 סנטימטר מהבסיס של תהליך xiphoid. האזור האופטימלי לייזום לחיצות חזה נמצא בדרך כלל בין שני סימנים אלה.
3. החל ג'ל מוליך להנעת דפיברילציה והחלק אותו מתחת לחזו של העכברוש, אבטחת ההנעה ללוח כירורגית.
4. מקם את הבוכנה של מדחס החזה בין שני סימני החזה מעט נוגעים בחזה.
5. הגדר את המדחס כדי לספק 200 לחיצות לדקה ולהגדיר את תזוזת הבוכנה הראשונית ל0 מ"מ.
   הערה: שיעור הדחיסה מתאים לחיה קטנה עם קצב לב ספונטני של 350 דקות ^-1 אבל יכול להיות המגוון כשיעור דחיסה האופטימלי למודל העכברים לא הוגדר.
6. הגדר את המאוורר במהירות של 25 דקות ^-1 מספק נפח של גאות ושפל של 6 מיליליטר / קילוגרם ושבריר של חמצן נשאף (FiO ₂₎ של 1.0 מסונכרן לחזה גompression.
7. לצרף את צינורות ההנשמה (המסתיימים בY-מתאם חיבור השאיפה ונשיפת גפיים) לעזיבת צינורית לקנה הנשימה התערב מתאם מנתח אינפרא אדום CO _2.
8. הפעל את מכונת ההנשמה ולהתחיל דחיסת חזה על ידי הגדלת בהדרגה את עומק הדחיסה מ 0 מ"מ עד 10 מ"מ בדקה הראשונה. הזז מעט את הבוכנה לצדדים וrostrocaudal מבקש למצוא תנוחה שמניבה את לחץ הדיאסטולי אב העורקים הגבוה ביותר (כלומר, לחץ בין לחיצות) לעומק דחיסה נתון.
   הערה: העלייה ההדרגתית בעומק דחיסה ייחודית למכון ההחייאה; רוב החוקרים להתחיל עם עומק הדחיסה המקסימאלי.
9. להמשיך ולהגדיל את עומק הדחיסה במהלך הדקה השנייה ועד לחץ הדיאסטולי אב העורקים יעד יושג.
   הערה: לחץ הדיאסטולי אב העורקים יעד של 24 מ"מ כספית ומעלה מניבה לחץ זלוף כלילית של 20 מ"מ כספית ומעלה לאחר הפחתתלחץ הדיאסטולי פרוזדורים תקין; מתאים לסף resuscitability למודל חולדה זה ^4. לחץ הדיאסטולי היעד של אב העורקים - שעשויה לעבור את סף resuscitability - הוא להיות מוכרע על ידי החוקר המבוסס על המחקר האובייקטיבי. ובכל זאת, זה לא מומלץ לעלות על עומק דחיסה של 17 מ"מ, כדי למנוע פגיעה בבית החזה ובאיברי intrathoracic.
10. לשמור על לחיצות חזה למשך הרצוי לפני שתנסה דפיברילציה.
    הערה: שש דקות של דחיסת חזה נראה המינימום הנדרש כדי ליצור תנאים נוחים לשריר לב דפיברילציה המוצלחת ^26. עם זאת, עם משך הגדלת, היעילות המודינמית של ירידות דחיסת חזה ורוב המחקרים המשתמשים בזמן שנע 6-10 דקות.

5.3 דפיברילציה)

1. השתמש בדפיברילטור צורת גל-פאזית זמינה מסחרי עם יכולת לדפיברילציה הפנימית עם התחלהאנרגיה מועברת 5 J, מצוידים במשוטים מותאמים אישית לחולדה.
2. החל ג'ל מוליך להנעת דפיברילציה.
3. טעינת דפיברילטור מייד לפני השלמת התקופה קבועה מראש של לחיצות חזה.
4. להפריע דחיסת חזה ולאמת את הלב נשאר בVF בחינת ECG.
5. לספק עד שתי מכות חשמל של 5 J כל על פני קיר החזה מלבד 5 שניות אם VF הוא הווה ולצפות לחזרתו של א.ק.ג. חשמלי מאורגן עם פולסים של אב העורקים ומ"מ לחץ אב העורקים ממוצע ≥25 Hg.
6. קורות חיים לחיצות חזה למשך 30 שניות נוספות או 60 שניות (בכפוף לפרוטוקול הספציפי) אם הלחץ באב עורקי הממוצע הוא <25 מ"מ כספית ללא קשר לקצב החשמלי.
7. חזור על הצעדים מ5.3.4 ל5.3.6 לתקופה של עד 5 פעמים מותנות בפרוטוקול הספציפי אבל הסלמת אנרגיית דפיברילציה 7 J אם 5 הזעזועים J הראשוניים לא מצליחים לסיים VF. איור 3 מתאר את הפרו דפיברילציהtocol משמש במכון ההחייאה ואיור 4 מתאר ניסוי נציג בשלב דפיברילציה.
8. לספק מכות חשמל רק כאשר VF הוא הווה; אחרת לחדש דחיסת חזה בלי שקדמו זעזועים חשמליים ומניח הלב הוא בפעילות חשמלית חסרה דופק או asystole.
9. לקבוע את תוצאת ההחייאה בהשלמת מחזורי דפיברילציה הדחיסה (איור 3).

5.4) Post-החייאה

1. להגביר את קצב האוורור מ -25 דקות ^-1 עד 60 דקות ^-1 לאחר החזרה של זרימה ספונטנית ולהפחית את FiO ₂ 1.0-0.5 לאחר 15 דקות של זרימה ספונטנית.
2. לספק התחשמלות באותה האנרגיה של ההלם שעבר אם VF חוזר. עם זאת, בדרך כלל VF הופך באופן ספונטני לקצב סינוס בתוך כמה שניות.
   הערה: הישנות VF עלולה להתרחש כחלק מהפרעות קצב reperfusion זמן קצרלאחר חזרתו של מחזור ספונטני אבל רק לעתים נדירות מעבר 15 דקות.
3. שים לב לבעלי החיים על פי הפרוטוקול שלאחר ההחייאה הספציפית שנקבע על ידי החוקר; בדרך כלל 180-240 דקות בניסויים חריפים ללא התאוששות מן ההרדמה לפני המתת חסד. ציר הזמן של ניסוי חריף טיפוסי מוצג באיור 5.
4. לבצע נתיחה לאחר מוות בניסויים חריפים לתעד עמדה של צנתרים ופגיעה באיברים פנימיים שיכול להפוך ניסוי לא חוקי.
5. הסר את כל הצנתרים, ולקשור כלי, ולסגור את הפצעים עם קליפים מתכת ובצע את השלבים המפורטים להלן בניסויי הישרדות.
6. Extubate בעלי החיים בתנאי שהוא מסוגל לנשום באופן ספונטני.
7. להחזיר את בעל החיים לכלוב נקי לאחר התאוששות מן ההרדמה שמעידה ליישר עצמי מלא וללא עזרה מכיבה על גב.
8. להזריק חימם 0.9% NaCl (1 מיליליטר / משקל גוף 100 ז) intraperitoneally כדי להפחית את הסיכון של היפותרמיה ודehydration.
9. לנהל מינון תת עורית של meloxicam (2 מ"ג / קילוגרם) תת עורי 4 שעות לאחר המנה של שיכוך כאבים ואחריו 1 מ"ג / קילוגרם מינון תת-עורי פעם ביום למשך עד 72 שעות.
10. בית החיה לבד עם העשרה לתקופה של עד 48 שעות להתאוששות בטוחה יותר ולהשתמש בנוהל העבודה הרגיל המוסדי לטיפול וניטור שלאחר ניתוח.

תוצאות

מודל העכברים שתואר כאן היה בשימוש לאחרונה כדי להשוות את ההשפעות של שני מעכבים של איזופורם נתרן-מימן sarcolemmal מחליף 1 (nhe-1) על תפקוד שריר לב וhemodynamic במהלך דחיסת חזה ופוסט-החייאה ^61. דווח בעבר כי nhe-1 מעכבים להחליש פגיעת reperfusion שריר לב על ידי הגבלת cytosolic מושרה נתרן וסידן ע...

Discussion

צעדים קריטיים בפרוטוקול

ישנם צעדים קריטיים בפרוטוקול. כאשר שולטים, ההכנה והפרוטוקול פעלו כמתואר להלן באופן תמציתי. ההכנה כירורגית היא מהירה, קידום צנתרים במהירות דרך חתכים קטנים מפעילה עווית מינימאלית או ללא כלי ומיצוב הטי...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Name of Material/ Equipment	Company	Catalog Number	Comments/Description
Sodium pentobarbital	Sigma Aldrich	P3761	http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/p3761?lang=en&region=US
Rectal thermistor	BIOPAC Systems, INC	TSD202A	http://www.biopac.com/fast-response-thermistor
Needle electrode biopolar concentric 25 mm TP	BIOPAC Systems, INC	EL451	http://www.biopac.com/needle-electrode-concentric-25mm
PE25 polyethylene tubing	Solomon Scientific	BPE-T25	http://www.solsci.com/products/polyethylene-pe-tubing
26GA female luer stub adapter	Access Technologies	LSA-26	http://www.norfolkaccess.com/needles.html
Stopcocks with luer connections; 3-way; male lock, non-sterile	Cole-Parmer	UX-30600-02	http://www.coleparmer.com/Product/Large_bore_3_way _male_lock_stopcocks _10_pack_Non_sterile/EW-30600-23
TruWave disposable pressure transducer	Edwards Lifesciences	PX600I	http://www.edwards.com/products/pressuremonitoring/Pages/truwavemodels.aspx?truwave=1
Type-T thermocouple	Physitemp Instruments	IT-18	http://www.physitemp.com/products/probesandwire/flexprobes.html
Central venous pediatric catheter	Cook Medical	C-PUM-301J	https://www.cookmedical.com/product/-/catalog/display?ds=cc_pum1lp_webds
Abbocath-T subclavian I.V. catheter (14g x 5 1/2")	Hospira	453527	http://www.hospira.com/products_and_services/iv_sets/045350427
Novametrix Medical Systems, Infrared CO2 monitor	Soma Technology, Inc.	7100 CO2SMO	http://www.somatechnology.com/MedicalProducts/novametrix_respironics_co2smo_ 7100.asp
Harvard Model 683 small animal ventilator	Harvard Apparatus	555282	http://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/haisku2_10001_11051_44453_-1_ HAI_ProductDetail_N_37322_37323
Double-flexible tipped wire guides	Cook Medical	C-DOC-15-40-0-2	https://www.cookmedical.com/product/-/catalog/display?ds=cc_doc_webds
High accuracy AC LVDT displacement sensor	Omega Engineering	LD320-25	http://www.omega.com/pptst/LD320.html
HeartStart XL defibrillator/monitor	Phillips Medical Systems	M4735A	http://www.healthcare.philips.com/main/products/resuscitation/products/xl/
Graefe micro dissection forceps 4 inches	Roboz	RS-5135	http://shopping.roboz.com/Surgical-Instrument-Online-Shopping?search=RS-5135
Graefe micro dissection forceps 4 inches with teeth	Roboz	RS-5157	http://shopping.roboz.com/Surgical-Instrument-Online-Shopping?search=RS-5157
Extra fine micro dissection scissors 4 inches	Roboz	RS-5882	http://shopping.roboz.com/micro-scissors-micro-forceps-groups/micro-dissecting-scissors/Micro-Dissecting-Scissors-4-Straight-Sharp-Sharp
Heiss tissue retractor	Fine Science Tools	17011-10	http://www.finescience.com/Special-Pages/Products.aspx?ProductId=321&CategoryId=134& lang=en-US
Crile curve tip hemostats	Fine Science Tools	13005-14	http://www.finescience.com/Special-Pages/Products.aspx?ProductId=372
Visistat skin stapler	Teleflex Incorporated	528135	http://www.teleflexsurgicalcatalog.com/weck/products/9936
Braided silk suture, 3-0	Harvard Apparatus	517706	http://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/haisku2_10001_11051_43051_-1_ HAI_ProductDetail_N_37916_37936
Betadine solution	Butler Schein	3660	https://www.henryscheinvet.com/
Sterile saline, 250 ml bags	Fisher	50-700-069	http://www.fishersci.com/ecomm/servlet/itemdetail?catnum=50700069&storeId=10652
Heparin sodium injection, USP	Fresenius Kabi	504201	http://fkusa-products-catalog.com/files/assets/basic-html/page25.html
Loxicom (meloxicam)	Butler Schein	045-321	https://www.henryscheinvet.com/
Thermodilution cardiac output computer for small animals	N/A	N/A	Custom-developed at the Resuscitation Institute using National Instruments hardware and LabVIEW software
Analog-to-digital data acquisition and analysis system	N/A	N/A	Custom-developed at the Resuscitation Institute using National Instruments hardware and LabVIEW software
Pneumatically-driven and electronically controlled piston device for chest compression in small animals	N/A	N/A	Custom-developed at the Weil Institute of Critical Care Medicine
60 Hz alternating current generator	N/A	N/A	Custom-developed at the Weil Institute of Critical Care Medicine