기존의 폐쇄 가슴 기술에 의해 쥐의 심실 세동의 모델 및 소생

요약

This article describes a rat model of electrically-induced ventricular fibrillation and resuscitation by chest compression, ventilation, and delivery of electrical shocks that simulates an episode of sudden cardiac arrest and conventional cardiopulmonary resuscitation. The model enables gathering insights on the pathophysiology of cardiac arrest and exploration of new resuscitation strategies.

초록

A rat model of electrically-induced ventricular fibrillation followed by cardiac resuscitation using a closed chest technique that incorporates the basic components of cardiopulmonary resuscitation in humans is herein described. The model was developed in 1988 and has been used in approximately 70 peer-reviewed publications examining a myriad of resuscitation aspects including its physiology and pathophysiology, determinants of resuscitability, pharmacologic interventions, and even the effects of cell therapies. The model featured in this presentation includes: (1) vascular catheterization to measure aortic and right atrial pressures, to measure cardiac output by thermodilution, and to electrically induce ventricular fibrillation; and (2) tracheal intubation for positive pressure ventilation with oxygen enriched gas and assessment of the end-tidal CO₂. A typical sequence of intervention entails: (1) electrical induction of ventricular fibrillation, (2) chest compression using a mechanical piston device concomitantly with positive pressure ventilation delivering oxygen-enriched gas, (3) electrical shocks to terminate ventricular fibrillation and reestablish cardiac activity, (4) assessment of post-resuscitation hemodynamic and metabolic function, and (5) assessment of survival and recovery of organ function. A robust inventory of measurements is available that includes – but is not limited to – hemodynamic, metabolic, and tissue measurements. The model has been highly effective in developing new resuscitation concepts and examining novel therapeutic interventions before their testing in larger and translationally more relevant animal models of cardiac arrest and resuscitation.

서문

미국 ^(1)에서 36 만에 가까운 개인보다 전 세계적으로 ² 많은 사람들이 갑자기 심장 마비의 에피소드 매년 겪고 있습니다. 해당 심장 활동을 다시 설정해야하지만, 중요한 장기에 그 손상 방지를 최소화하거나 취소 할 수 없습니다 필요 삶을 복원하려고 시도합니다. 현재 심폐 소생 기술은 약 30 %의 초기의 호흡 속도를 수득; 그러나 퇴원 생존율은 5 % ^1입니다. 심근 기능 장애, 신경 장애, 전신 염증, 병발 질환, 또는 순환의 초기 수익률에도 불구하고 사망 환자의 큰 비율에 대한 사후 소생 계정을 발생 이들의 조합. 따라서, 기본적인 병태 생리 및 신규 한 접근법의 소생 큰 이해 절실히 초기 소생 및 장기의 기능은 그대로 후속 생존율을 증가시킬 필요가있다.

동물 모드심장 마비의 LS는 심장 정지와 소생의 병태 생리에 대한 통찰력을 제공하고 개념화하고 인간 ^3에서 테스트하기 전에 새로운 개입을 테스트하기 위해 실용적인 수단을 제공함으로써 새로운 인공 호흡 치료법의 개발에 중요한 역할을한다. 닫힌 가슴 심폐 소생술의 쥐 모델 (CPR)는 여기에 설명 중요한 역할을하고있다. 늦은 교수 맥스 해리 웨일 MD, 박사의 실험실에서 ^4와 그녀의 협력자 - 당시 연구원 - 모델은 아이린 폰 란타에 의해 1988 년에 개발되었다 보건 과학 대학 (2004 년 의학 및 과학의 로잘린 프랭클린 대학 이름을 변경) 및 광범위 주로 교수 웨일과 연수생의 동료에 의해 소생의 분야에서 이용되고있다.

이 모델은 기존의 CPR 기술에 의해 시도 소생술과 갑작스러운 심장 마비의 에피소드를 시뮬레이션하고, 따라서 입회를 포함부수적으로 산소가 풍부한 가스를 양압 환기를 제공하면서 공압 구동 피스톤 장치에 의해 우심실 내막 닫힌 가슴 CPR의 규정에 전류를 제공함으로써 심실 세동 (VF)의 이온. VF의 종료는 전기 충격의 흉부 전달하여 수행됩니다. 래트 모델은 작은 동물에서 개발 큰 동물 (예를 들면, 돼지) 및 모델 개발 모델 간의 균형을 (예를 들어, 마우스) 강력한에 액세스 할 수있는, 잘 표준화 재현하고 효율적인 방식으로 새로운 연구 개념의 탐사를 허용 관련 측정의 재고. 이 모델은하지만 더 큰 번역 미치는 영향, 더 비용이 많이 드는 큰 동물 모델에서 연구를 수행하기 전에 혼란 변수의 영향을 새로운 개념을 탐구하고 조사하는 연구의 초기 단계에 특히 유용하다.

모든 피어 리뷰 기사로보고이 지났지 검색가 처음 1988 ⁴ 년에 출판 된 이후 심장 마비의 메커니즘과 폐쇄 가슴 소생의 형태로 VF를 가진 imilar 쥐 모델은 모델을 사용하여 69 추가 원래 연구를 한 것으로 밝혀졌습니다. 연구 분야는 인공 호흡 ^5-17의 병태 생리 학적 측면을 포함, 결과 ^{18-30 영향을} 미치는 요인, 혈압 상승 제 ^31-43, 완충제를 검사 약리 개입의 역할 ^(44), 수축 촉진제 ^(45), 심근이나 뇌 보호 ^46-70을 목표로 에이전트, 또한 중간 엽 줄기 세포를 ^{71 ~ 73의} 효과.

이 문서에서 설명하는 모델과 프로토콜은 현재 소생술 연구소에서 사용되고있다. 그러나, 개별 연구자와 연구 목적에 사용 가능한 기능에 기초하여 상기 모델을 "사용자 정의"를 경험할 수있는 기회가있다.

프로토콜

참고 :이 프로토콜은 의학 및 과학의 로잘린 프랭클린 대학에서 기관 동물 케어 및 사용위원회에 의해 승인되었다. 모든 절차는 국가 연구위원회에 의해 출판 된 실험 동물의 관리에 대한 가이드에 따라 및 사용에 있었다.

1. 실험 설정 및 마취

1. 다양한 신호의 교정을 수행하여 데이터 수집 시스템 (압력, 온도, 피스톤 변위 등 심전도 [ECG], 호 기말 이산화탄소 분압 등)를 사용하여 캡처된다.
2. 실험이 생존 수술을 포함하는 경우 (카테터를위한 장비 및 산화 에틸렌 살균을위한 오토 클레이브에서 예) 악기와 카테터를 소독하고 gowned과 마스크, 모자를 쓰고, 운영 및 멸균 장갑. 면도 수술 악기 카테터하지만 비 생존 수술 용 멸균 할 필요가 없다.
3. 준비 카테터는 후술과 인터넷에 도시0.45 kg 0.55 kg 사이의 무게 쥐에 대한 gure 1.
   1. 마크 2 층 T 형 열전대 카테터, 크기가 0.6 mm 외경 (2 층), 흉부 대동맥에 발전을위한 영구 마커 팁, 3, 5, 8cm에서. 온도와 심 박출량을 측정하기 위해이 카테터를 사용합니다.
   2. 컷 폴리에틸렌 튜브, 크기 0.46 mm ID와 0.91 mm 외경 (PE25) 길이 ≈ 25cm, 우심방에 발전을위한 흉부 대동맥과 다른에 발전을위한 하나.
   3. 각각 PE25 카테터 팁의 단부를 절단하는 90 ° 각도로 용기에 삽입한다.
      참고 : PE 튜브를 사용하는 경우 45 ° 각도로 경 사진 팁 혈관 천공의 원인이 될 수 있습니다. 그러나, 경 사진 선단 그 선명도를 감소시키기 사포 다운 트리밍 할 수있다.
   4. 각 PE25 카테터의 기단부에 26 게이지 여성 루어 스텁 어댑터를 연결합니다.
   5. 3, 5, 8 cm이고, 3, 5, 8, 10에서 우심방 카테터 선단으로부터 12cm에서 대동맥 카테터를 표시한다. AO를 사용하여RTIC 카테터 대동맥 압력과 혈액 샘플링을 측정합니다. 우심방 압력을 측정 할 수있는 권한 심방 카테터를 사용합니다.
   6. 3 방향 스톱 콕이 부착 압력 변환기에 각각 루어 스텁 어댑터를 연결.
   7. 우심방으로 발전을위한 45 ° 각도로, 3 층 폴리 우레탄 소아 정맥 카테터, 크기 0.6 mm ID와 1.0 mm OD (3 층)의 끝을 잘라.
   8. 끝에서 4cm의 3 층 외부 경정맥 카테터를 표시합니다. 약물 전달과 혈액 샘플링을 위해 사용할 수있는 다음 옵션 VF의 전기 유도 우심실에 가이드 와이어를 사전에이 카테터를 사용합니다. 카테터에 3 방향 꼭지를 연결합니다.
      참고 : 카테터가 진행되는 것과 카테터에 만든 마크는 외과 의사의지도를위한 것입니다. 카테터에 3cm의 표시는 대퇴 혈관 경고를 통해 흉부 지역을 향해 곡선으로 시작하는 선박으로 인한 잠재적 인 저항의 영역의 외과 의사를 고급. 8cm 마르대동맥 카테터 및 열전대 카테터에 KS는 끝이 하행 흉부 대동맥에 나타냅니다. 오른쪽 심방 카테터에 12cm 표시가 끝이 우심방에있는 것입니다. 카테터가 진행되는대로 중간 마크는 가이드입니다. 오른쪽 외부 경정맥 카테터에 4cm 표시는 끝이 우심방에있는 것입니다.
   9. 프라임 헤파린의 10 IU / ㎖를 포함 식염수 각 카테터 (자신의 개통을 보장하기 위해) 및 폐쇄 위치에 해당 마개를 켭니다.
   10. 무딘 팁을 만드는 길이 ≈ 8cm로, 1.6 mm의 OD (5 층) stylette에 장착 된 5 층 플루오르 에틸렌 프로필렌 정맥, 크기 1.1 mm ID와 컷. 동안 심장 소생술 후 양압 환기 카리나로부터 팁 ≈에게 2cm를 배치하는 기관으로 발전을위한이 캐뉼라를 사용합니다.
       참고 : 캐 뉼러의 금속 stylette는 기관으로 발전에 도움이 끝에서 145 ° 각도 ≈ 3cm에서 구부러 질 필요가있다.
4. 수술 장비에 대한 쥐를 준비합니다.
   1. 펜 토바 비탈 나트륨의 복강 내 주사 (45 ㎎ / kg)에 의해 래트를 마취. 필요한 경우, 추가로 정맥 내 투여 (10 ㎎ / kg), 수술 적 단계의 마취를 유지하도록 (혈관 통로를 설정 한 후) 30 분 간격으로 제공한다.
      참고 : 대부분의 연구 남성 은퇴 개종 흰쥐를 사용 하였다.
   2. 전기 충격이 전달 될 수술 영역과 영역에서 헤어 클립; 이는 흉부의 지느러미 흉부 영역, 왼쪽과 오른쪽 사타구니, 목, 및 전방 표면을 포함한다.
   3. 진통제 부 프레 노르 핀 피하 0.02 ㎎ / ㎏ (1 ㎖ / ㎏)을 관리합니다.
   4. 전면 테이핑하여 수술 보드에 앙와위에서 쥐를 수정하고 중간 선에서 45 ° 각도로 뒷다리.
   5. 베타 딘 스​​크럽 스크럽 절개 지역은 70 % 에탄올을 3 회 하였다.
   6. 각막에 항균 안과 연고의 박막을 적용합니다.
   7. 직장 서미스터 ≈에게 직장에 4cm를 삽입하고 수술 보드에 서미스터를 고정합니다.
   8. 실험을하는 동안 가열 백열 램프를 이용하여 C 36.5 ° 및 37.5 ° C 사이의 코어 체온을 유지한다.
   9. 피하 우측 상지에 배치 ECG 바늘, 상지, 오른쪽 뒷다리를 왼쪽과 실험을하는 동안 심전도를 기록합니다.

2. 혈관 삽관

2.1) 하행 흉부 대동맥에 T 형 열전대 카테터를 전진에 대한 대퇴 동맥을 왼쪽

1. 그 숲에 90 ° 각도로 왼쪽 서혜부에 2cm의 절개를합니다.
2. 지혈제의 쌍을 사용하여 주변 결합 조직의 박리 (blunt dissection)에 의해 대퇴부 혈관과 신경을 노출.
3. 곡선 마이크로 해부 집게를 사용하여 혈관 주위의 혈관 칼집을 노출.
   주 : 선박 또는 북동를 천공 피RVE.
4. 대퇴 동맥, 정맥, 신경 아래 마이크로 해부 집게 여행 및 선박에 90 ° 각도로를 지원합니다. 모두 용기 및 지원하는 신경으로, 곡선 마이크로 해부 포셉 또 한 쌍을 사용하여 신경 및 혈관의 동맥의 분리를 시작합니다.
   참고 :이 분리되어있어 혈관과 신경 손상의 위험을 최소화하기 위해 선박 아래 병렬에서 수행됩니다.
5. 지원 집게 위치를 조정; 신경을 해제 만 정맥과 동맥을 지원합니다.
6. 동맥과 정맥 사이에 집게를 끼운 ≈ 1cm의 길이로 구분합니다.
7. 부드럽게 지원 집게에서 고립 된 정맥을 해제, 만 동맥을 지원 남아있다.
8. 두 실크 3-0 꼰 비 흡수성 합자 및 말단 위치 하나 떨어져 1cm ≈ 하나의 근위부를 삽입합니다.
9. 동맥이 여전히 외과 의사의 매듭 & #을 사용하여 지원되는 동안 단단히 말초 합자를 조(160)는 2 개의 단일 노트 하였다. 느슨한 외과 의사의 매듭 근위 끈을 조입니다.
10. 약 ¼ 그 단면적의 절삭 용기에 60 ° 각도로 원위 봉합사 근처 미세 해부 가위를 이용하여 용기에 작은 절개 부위를 만든다.
    참고 : 루멘에 도달 한 컷 신호에서 나오는 혈액의 작은 방울.
11. 카테터의 매끄러운 삽입을 허용하도록 상기 용기 상에 헤파린 염수 드립.
    주 : 1 % 리도카인 용액을 1 ~ 2 방울은 또한 혈관 경련을 방지 할 수있다.
12. 선단 사용자 지정 70 ° 각도로 구부러되었으며 사포 (즉, 도입부)를 사용하여 무딘 - - 부드럽게 혈관을 안정화 지혈제와 말초 합자를 당기면서 용기 구멍에 22 게이지 바늘을 삽입합니다.
13. 제거, 루멘을 노출 부드럽게 도입기를 들어 올리고 도입부에서 T 형 열전대 카테터 가이드이는 카테터 팁이 삽입 된 후.
14. 편안한 자세로 다른 손을 수용하는 카테터를 전진하면서 한 손으로 카테터를 잡습니다.
15. 지원 집게를 닫고 카테터가 전진으로 원심으로 이동합니다.
    참고 : 어떤 저항이 카테터를 진행하는 동안 충족되면; 중지 철수와 다른 각도로 삽입합니다.
16. 하행 흉부 대동맥의 끝 위치를 8cm 표시 될 때까지 카테터를 전진.
17. 근위 합자를 체결하고 두 개의 추가 하나의 매듭을 추가하여 혈관에 카테터를 고정합니다.
    참고 : 카테터 및 부주의 변위 주위에 출혈을 막을 정도로 꽉 보안 노트; 재배치에 필요한 경우 아직 충분히 느슨한 앞뒤로 움직임을 활성화합니다.
18. 집게와 지혈제 부드럽게를 제거합니다.

2.2) 우심방에 PE25 카테터를 전진에 대한 대퇴 정맥을 왼쪽

1. 리프트 t그는 대퇴 동맥은 이미 조심스럽게 끈을 당겨와 인접 대퇴 정맥을 노출하여 T 형 열전대 카테터와 유관.
2. 집게를 사용하여 정맥에서 여행과 정맥을 지탱하기를 엽니 다.
3. 단계 2.1.18를 통해 2.1.8를 따라하지만 12cm의 표시로 (대신 T 형 열전대) PE25 카테터를 진행하는 것은 우심방 근처의 팁을 위치.
4. 확인 혈액은 관내 장애물의 위치를​​ 확인하고 헤파린 식염수 0.2 ml로 카테터를 세척하기 위해 카테터를 통해 취소 될 수 있습니다.
5. 하나의 외과 의사의 매듭 수술 절개를 닫습니다.

하행 흉부 대동맥에 PE25 카테터를 전진 2.3)을 마우스 오른쪽 대퇴 동맥

1. 단계 2.1.18를 통해 2.1.1를 따라하지만 8cm 표시로 PE25 카테터를 진행하는 것은 하행 흉부 대동맥의 팁을 위치.
2. 반복 2.2.4와 2.2.5 단계를 반복합니다.

2.우심방에 3 층 폴리 우레탄 소아 정맥 카테터를 전진을위한 4) 오른쪽 외부 경정맥

1. 1.5 cm 긴 절개 목, 단지 갑상선 아래 끝 기관의 오른쪽에 1cm의 기본에서 시작합니다.
   참고 : 부상 또는 갑상선을 노출시키지 마십시오.
2. 부드럽게 외부 경정맥을 노출 지혈제의 쌍을 사용하여 주변 결합 조직을 해부.
3. 집게를 사용하여 정맥에서 여행과 정맥을 지탱하기를 엽니 다.
4. 반복 정맥 카테터에 대한 2.1.18를 통해 2.1.8 단계,하지만 우심방에있는 그것의 끝 위치 4cm 표시로 3 층 카테터를 전진.
5. 단계를 반복 2.2.4.
6. 3 방향 스톱 콕이 카테터를 캡과 폐쇄 위치로 설정.

3. 기관 흡인 삽관

3.1) 기관 노출

1. 지혈제를 사용하여 중간 선을 향해 이전에 수행 목 절개를 확장합니다.
2. DISS 요법 기관을 노출하고 조직 확장기를 이용하여 드러내는 개최 cleidocephalic 근육의 sternohyoid, sternothyroid 및 유양 돌기 부분을 무딘 기술을 이용하여 지혈 겸자와.

3.2) 기관 내 삽관

1. 기도를 스트레칭 혀를 빼냅니다. 5 층 카테터를 전진 (즉, 기관 캐뉼라)는 stylette에 장착. 끝이 위쪽을 가리키는 사전 상부기도, 성대, 기관지를 입력 추구와 함께 진행하는 동안 단단히 캐 뉼러를 개최합니다.
2. 그것은 적절한 위치로 안내를 전진으로 기관 캐뉼라를 트랜스는-시각화.
3. 정맥에서 stylette를 제거하고 캐 뉼러의 말단부에 적외선 CO ₂ 분석기 어댑터를 연결합니다.
4. 특성 capnographic 파형을 인식하여 성공적으로 기관 삽관을 확인, 즉,기도 CO _2가 만료 동안 증가와 영감 동안 감소.

베이스 라인의 안정성 ove_title "> 4. 확인

1. 수술 장비 및 다양한 카테터, 캐 뉼러의 연결을 완료하고, 심전도 데이터 수집 시스템에 해당 센서 및 신호 컨디셔너를 통해 리드, 혈액을 측정하여 심 박출량과 혈압 meaurements 및 대사 안정성 (권장)를 기반으로 혈역학 적 안정성을 확인 가스 및 젖산 수준.
   주 : 심 박출량 우심방에 실온에서 0.9 % NaCl을 200 μL 루스 주사 후에 열전대 통하여 하행 대동맥에 기록 thermodilution 곡선의 컴퓨터 분석에 의해 측정된다.
2. 관심있는 다양한 매개 변수에 대한 특정 기준 참조 값을 정의합니다; 이는 쥐의 변형, 성별, 체중에 파견 다를 수 있습니다. 여기에 기술 된 쥐 모델을 사용하는 대표적인 실험에서 기준 및 사후 소생 참조 값은 표 1에 나열되어 있습니다.

5. 실험 프로토콜

심실 세동 5.1) 유도 (VF)

1. 전류 (AC) 발전기 (0-12mA)를 교대로, 60 Hz에서의 음극에 연결된 쥐의 복부 벽에 바늘 피하에 삽입합니다. 내부 장기 실수로 부상을 방지하기 위해 복강에 피하 조직 이상으로 바늘을 진행하지 마십시오.
2. precurved 0.38 mm 외경의 한쪽 끝과 교류 발전기의 양극에 40cm (와이어 커넥터를 통해) 긴 가이드 와이어를 연결합니다. 극성이 반전되지 않았는지 확인합니다; 그렇지 않으면 VF가 유발되지 않을 수 있습니다.
3. 오른쪽 외부 경정맥에 삽입 된 3 층 폴리 우레탄 카테터의 3 방향 꼭지를 제거하고 가이드 와이어 ECG 및 대동맥 압력을 모니터링하면서 우심실를 입력하고자하는 약 7cm의 부드러운 팁을 진행합니다.
   참고 : 가이드 와이어의 정확한 위치는 자궁외 ventr에 의해 제안 될 것이다icular 비트는 ECG 및 대동맥 압력에서 관찰.
4. 60 Hz에서 교류 발전기 전원을 켜고 대동맥 압력을 모니터링하면서 점차적으로 전류를 증가.
   참고 : 2.0 mA 전류는 일반적으로 VF를 유도하기에 충분하지만 우심실에 가이드 와이어의 상대적 위치에 우발 다릅니다. 끝 위치에 약간의 조정은 낮은 전류 레벨에서 VF를 유도해야 할 수 있습니다.
5. 그림 2와 같이, ≈ 오초와 ECG에서 조직적 전기 활동 (2) 외관에서 ≈ 20mm 수은에 (1) 대동맥 맥동의 중단과 대동맥 압력 지수 붕괴를 문서화하여 VF의 유도를 확인합니다.
6. VF를 유도하기 위해 필요한 대략 절반 수준으로 제 분 후에 휘도의 저감 3 분간 부단 전류 유지한다.
7. VF는 전류를 적용 할 필요없이 계속 3 분 및 문서 후에 현재의 전원을 끄십시오.
   참고 : 작은 마음 자발적 제세동fibrillatory 앞의 리딩 엣지가 재입국 배제 내화물 기간에 후행 끝에 도달함으로써 단락 회로 길이 주어진. 만 심근 허혈의 기간 후에;. 즉, 충분히 3 분, 재입국은 그림 2와 같이 VF가, 자기 유지되고 있다는 것입니다 수 있도록 전도 속도가 느려질 수 있습니다.
8. , 3 방향 스톱 콕이 가이드 와이어, 다시 캡을 경정맥 카테터를 제거 지상 바늘을 제거하고, VF 출판을 기반으로 (즉, 4-15 분을 소생 개입을 시작하기 전에 프로토콜의 욕망 기간 동안 자발적으로 계속할 수 연구).

5.2) 가슴 압박과 양압 환기

참고 :이 책에 등장하는 가슴 압축기는 맞춤형 공압 구동 전자 제어 피스톤 장치입니다. 인공 호흡기는 시중에서 판매하는 장치입니다.

1. 액션 B에 대한 설명 미처리 VF의 시간을 사용elow; 그들은 VF를 유도하기 전에 수행 될 수 있지만.
2. 2.8 cm와 칼 모양의 프로세스의 기지에서 4.2 cm에 가슴을 표시합니다. 흉부 압박을 시작하기위한 최적의 지역은 일반적으로이 두 표시 사이 발견된다.
3. 제세동 패들에 전도성 젤을 적용하고 수술 보드에 패들을 확보, 쥐의 가슴 아래에 밀어 넣습니다.
4. 약간 가슴을 만지고 두 가슴 마크의 가슴 압축기의 피스톤을 배치합니다.
5. 분당 200 압박을 제공하고 0mm에 초기 피스톤 변위를 설정하는 압축기를 설정합니다.
   주 : 압축률은 350 분의 자연 심장 박동수와 작은 동물 적합한 ^-1 있지만 정의되지 않은 래트 모델에 대한 최적의 압축 비율로 변할 수있다.
6. 25 분에 인공 호흡기를 설정 ^-1 가슴 C에 동기화 1.0의 6 ㎖ / ㎏의 호흡량과 영감 산소의 일부 (FIO ₂₎ 제공ompression.
7. 기관 캐 뉼러 떠나기 (흡기 및 호기 사지를 연결하는 Y 어댑터로 끝나는 지) 인공 호흡기 튜브를 부착하면 적외선 CO ₂ 분석기 어댑터를 삽입.
8. 인공 호흡기의 전원을 켜고 점차적으로 처음 1 분 동안 10mm에 0mm에서 압축 깊이를 증가시켜 흉부 압박을 시작합니다. 측방 약간 피스톤을 이동하고 가장 높은 대동맥 확장기 혈압을 산출 위치를 찾기 위해 노력 rostrocaudal (즉, 압박 사이에 압력) 지정된 압축 깊이.
   참고 : 압축 깊이의 점진적 증가는 소생 연구소에 고유; 대부분의 연구자들은 최대 압축 깊이로 시작합니다.
9. 타겟 대동맥 확장기 혈압이 달성 될 때까지 상기 제 분 동안 압축 깊이를 계속 증가.
   참고 : 24 mmHg의 이상의 타겟 이완기 대동맥 압력을 뺀 후 20 mmHg의 이상의 관상 동맥 관류 압력을 수득우심방 이완기 혈압; 이 쥐 모델 ⁴ resuscitability 임계 값에 해당. 타겟 대동맥 확장기 혈압 - resuscitability 임계 값을 초과 할 수있다 - 연구 목적에 기초하여 결정 조사관한다. 그러나, 그것은 가슴 벽과 흉부 장기에 손상을 방지하기 위해 17mm의 압박 깊이를 초과하지 않는 것이 좋습니다.
10. 제세동을 시도하기 전에 원하는 기간 동안 흉부 압박을 유지한다.
    참고 : 흉부 압박의 6 분의 최소 성공적으로 제세동 ^(26)에 유리한 심근 조건을 만드는 데 필요한 것 같습니다. 그러나, 증가 지속 시간, 혈역학 흉부 압박 감소의 효과와 대부분의 연구는 6에서 10 분까지의 기간을 사용합니다.

5.3) 제세동

1. 시작과 내부 제세동을위한 능력 시판 이상성 파형 제세동기를 사용쥐에 맞게 사용자 정의 패를 갖춘 5 J의 전달 에너지,.
2. 제세동 패드에 전도성 젤을 적용합니다.
3. 흉부 압박의 소정의 기간을 완료하기 전에 즉시 제세 동기를 충전합니다.
4. 흉부 압박을 중단하고 심장이 심전도를 검사 VF에 남아 있는지 확인합니다.
5. VF가있는 경우 오초 떨어져 가슴 벽에서 5 J 각각 두 개의 전기 충격까지 제공 및 대동맥 펄스와 평균 동맥압 ≥25 mmHg로와 전기적으로 조직 된 ECG의 반환을 관찰합니다.
6. 또 다른 30 ​​초 60초 평균 동맥압 25 mmHg 이상에 관계없이 전기 리듬의 <인 경우 (특정 프로토콜에 파견)에 대한 흉부 압박을 다시 시작합니다.
7. 특정 프로토콜 만 초기 5 J 충격이 VF를 종료하지 않을 경우 7 J로 제세동 에너지를 고조에 우발 최대 5 회 5.3.6에 5.3.4에서 단계를 반복합니다. 그림 3은 제세동 프로 묘사로토콜 심폐 연구소에서 사용하고도 4는 제세동 단계 동안 대표적인 실험을 도시한다.
8. VF가있는 경우에만 전기 충격을 전달; 그렇지 않으면 전기 충격을 선행하지 않고 흉부 압박을 다시 시작하고 심장이 맥박 전기 활동 또는 무 수축에 가정합니다.
9. 제세동 압축 사이클의 완성 (그림 3)에서 소생 결과를 확인합니다.

5.4) 후 소생

1. 자연 순환의 복귀 후 ^-1 60 분 ^-1 25 분에서 환기 속도를 높이고 자연 순환 15 분 후 1.0-0.5 FIO _2를 내립니다.
2. VF가 다시 발생하면 마지막 쇼크 같은 에너지를 전기 충격을 전달합니다. 그러나, VF는 일반적으로 몇 초 이내에 동 율동에 자발적으로 반전.
   참고 : VF의 재발은 곧 재관류 부정맥의 일환으로 발생할 수 있습니다자연 순환의 복귀 후 드물게 15 분 이상.
3. 연구자에 의해 결정 특정 포스트 소생술 프로토콜에 따라 동물을 관찰; 안락사 전에 마취에서 회복하지 않고 급성 실험에서 일반적으로 180-240 분. 급성 실험의 전형적인 타임 라인은도 5에 도시된다.
4. 실험이 잘못 렌더링 할 수있는 내부 장기에 카테터의 위치와 부상을 문서화하는 급성 실험에서 부검을 수행합니다.
5. 모든 카테터를 제거하고 혈관을 결찰하고, 금속 클립과 상처를 닫고 생존 실험에서 아래의 단계를 수행합니다.
6. 튜브를 빼내 동물은 자발적으로 호흡 할 수있다 제공.
7. 지느러미 드러 누움에서 완전하고 보조를받지 않는자가 바로 잡기에 의해 입증 마취에서 회복 후 깨끗한 케이지에 동물을 반환합니다.
8. 를 주입은 0.9 %의 NaCl (1 ㎖ / 100g의 체중)을 복강 저체온증와 D의 위험을 줄이기 위해를 따뜻하게ehydration.
9. 피하 4시간 회 최대 72 시간 동안은 1 mg / kg 피하 투여 한 다음 진통제의 투여 후 멜 록시 캄 (2 ㎎ / ㎏)의 피하 투여를 관리.
10. 하우스 안전한 복구를 위해 최대 48 시간 동안 농축 혼자 동물과 수술 후 관리 및 모니터링을위한 제도 표준 운영 절차를 사용합니다.

결과

여기에 설명 된 래트 모델은 최근에 흉부 압박 및 사후 ^61시 심근 소생 혈역학 함수에 sarcolemmal 나트륨 수소 교환기 이성체 1 (NHE-1)의 두 억제제의 효과를 비교하기 위해 사용되었다. 그것은 이전에 NHE-1 억제제는 나트륨에 의한 세포질과 미토콘드리아 칼슘 과부하를 제한하여 심근 재관류 손상을 감쇠하고, 이에 흉부 압박시 좌심실 팽창성을 보존하는 데 도움이 및 사후 소생 심근 기능 장?...

토론

프로토콜의 중요한 단계

프로토콜의 중요한 단계가 있습니다. 마스터하면, 준비 및 프로토콜은 간결하게 설명 진행합니다. 수술 준비는 단일 또는 소수의 시도 (들) 후 성공적으로 기관 삽관 다음,없이 또는 최소한의 혈관 경련을 유발 의도 한대로 카테터 팁을 위치 작은 절개를 통해 신속하게 카테터를 진행, 신속한입니다; 따라서, 기준값 내 측정 기준 (표 1)과<...

자료

Name	Company	Catalog Number	Comments
Name of Material/ Equipment	Company	Catalog Number	Comments/Description
Sodium pentobarbital	Sigma Aldrich	P3761	http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/p3761?lang=en&region=US
Rectal thermistor	BIOPAC Systems, INC	TSD202A	http://www.biopac.com/fast-response-thermistor
Needle electrode biopolar concentric 25 mm TP	BIOPAC Systems, INC	EL451	http://www.biopac.com/needle-electrode-concentric-25mm
PE25 polyethylene tubing	Solomon Scientific	BPE-T25	http://www.solsci.com/products/polyethylene-pe-tubing
26GA female luer stub adapter	Access Technologies	LSA-26	http://www.norfolkaccess.com/needles.html
Stopcocks with luer connections; 3-way; male lock, non-sterile	Cole-Parmer	UX-30600-02	http://www.coleparmer.com/Product/Large_bore_3_way _male_lock_stopcocks _10_pack_Non_sterile/EW-30600-23
TruWave disposable pressure transducer	Edwards Lifesciences	PX600I	http://www.edwards.com/products/pressuremonitoring/Pages/truwavemodels.aspx?truwave=1
Type-T thermocouple	Physitemp Instruments	IT-18	http://www.physitemp.com/products/probesandwire/flexprobes.html
Central venous pediatric catheter	Cook Medical	C-PUM-301J	https://www.cookmedical.com/product/-/catalog/display?ds=cc_pum1lp_webds
Abbocath-T subclavian I.V. catheter (14g x 5 1/2")	Hospira	453527	http://www.hospira.com/products_and_services/iv_sets/045350427
Novametrix Medical Systems, Infrared CO2 monitor	Soma Technology, Inc.	7100 CO2SMO	http://www.somatechnology.com/MedicalProducts/novametrix_respironics_co2smo_ 7100.asp
Harvard Model 683 small animal ventilator	Harvard Apparatus	555282	http://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/haisku2_10001_11051_44453_-1_ HAI_ProductDetail_N_37322_37323
Double-flexible tipped wire guides	Cook Medical	C-DOC-15-40-0-2	https://www.cookmedical.com/product/-/catalog/display?ds=cc_doc_webds
High accuracy AC LVDT displacement sensor	Omega Engineering	LD320-25	http://www.omega.com/pptst/LD320.html
HeartStart XL defibrillator/monitor	Phillips Medical Systems	M4735A	http://www.healthcare.philips.com/main/products/resuscitation/products/xl/
Graefe micro dissection forceps 4 inches	Roboz	RS-5135	http://shopping.roboz.com/Surgical-Instrument-Online-Shopping?search=RS-5135
Graefe micro dissection forceps 4 inches with teeth	Roboz	RS-5157	http://shopping.roboz.com/Surgical-Instrument-Online-Shopping?search=RS-5157
Extra fine micro dissection scissors 4 inches	Roboz	RS-5882	http://shopping.roboz.com/micro-scissors-micro-forceps-groups/micro-dissecting-scissors/Micro-Dissecting-Scissors-4-Straight-Sharp-Sharp
Heiss tissue retractor	Fine Science Tools	17011-10	http://www.finescience.com/Special-Pages/Products.aspx?ProductId=321&CategoryId=134& lang=en-US
Crile curve tip hemostats	Fine Science Tools	13005-14	http://www.finescience.com/Special-Pages/Products.aspx?ProductId=372
Visistat skin stapler	Teleflex Incorporated	528135	http://www.teleflexsurgicalcatalog.com/weck/products/9936
Braided silk suture, 3-0	Harvard Apparatus	517706	http://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/haisku2_10001_11051_43051_-1_ HAI_ProductDetail_N_37916_37936
Betadine solution	Butler Schein	3660	https://www.henryscheinvet.com/
Sterile saline, 250 ml bags	Fisher	50-700-069	http://www.fishersci.com/ecomm/servlet/itemdetail?catnum=50700069&storeId=10652
Heparin sodium injection, USP	Fresenius Kabi	504201	http://fkusa-products-catalog.com/files/assets/basic-html/page25.html
Loxicom (meloxicam)	Butler Schein	045-321	https://www.henryscheinvet.com/
Thermodilution cardiac output computer for small animals	N/A	N/A	Custom-developed at the Resuscitation Institute using National Instruments hardware and LabVIEW software
Analog-to-digital data acquisition and analysis system	N/A	N/A	Custom-developed at the Resuscitation Institute using National Instruments hardware and LabVIEW software
Pneumatically-driven and electronically controlled piston device for chest compression in small animals	N/A	N/A	Custom-developed at the Weil Institute of Critical Care Medicine
60 Hz alternating current generator	N/A	N/A	Custom-developed at the Weil Institute of Critical Care Medicine