JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

نقدم هنا دليلاً عمليا لبناء نظام متكامل الفحص المجهري، والذي يدمج التقليدية برنامج التحصين الموسع-فلوري التصوير، وتصوير فائقة جزيء واحد القرار القائم على الكشف، والكشف عن جزيء واحد متعدد الألوان، بما في ذلك نقل الطاقة صدى الأسفار جزيء واحد التصوير، إلى إنشاء واحدة بطريقة فعالة من حيث تكلفة.

Abstract

مجهر الأسفار أداة قوية للكشف عن الجزيئات البيولوجية في الموقع ورصد ديناميات والتفاعل في الوقت الحقيقي. بالإضافة إلى الفحص المجهري التقليدي برنامج التحصين الموسع-الأسفار، تطورت تقنيات التصوير المختلفة لتحقيق أهداف تجريبية محددة. بعض التقنيات المستخدمة على نطاق واسع وتشمل الأسفار جزيء واحد الرنين نقل الطاقة (سمفريت)، التي يمكن أن تبلغ conformational التغييرات والتفاعلات الجزيئية مع القرار انغستروم، والقائم على الكشف عن جزيء واحد فائقة القرار (SR) التصوير، والذي يمكن أن يعزز هذا القرار المكانية حوالي عشرة إلى توينتيفولد مقارنة بالفحص المجهري حيود محدودة. وهنا يقدم نظام متكامل تصميم العميل الذي يقوم بدمج عدة أساليب التصوير في المجهر واحد، بما في ذلك تصوير برنامج التحصين الموسع-الفلورسنت التقليدية، تصوير ريال على أساس الكشف عن جزيء واحد، والكشف عن جزيء واحد متعدد الألوان، بما في ذلك التصوير سمفريت. ويمكن تحقيق أساليب التصوير المختلفة بسهولة وتكاثر بتبديل العناصر البصرية. هذا التشكيل من السهل أن تعتمد أي مختبر البحوث في العلوم البيولوجية مع حاجة إلى روتين وتجارب التصوير المتنوعة في خفض التكلفة والمساحة بالنسبة إلى بناء المجاهر منفصلة لأغراض فردية.

Introduction

مجاهر الأسفار أدوات هامة لبحوث العلوم البيولوجية الحديثة والتصوير الفلورسنت تتم بشكل روتيني في الكثير من مختبرات البيولوجيا. بوضع علامات الجزيئات الحيوية ذات الاهتمام مع فلوروفوريس، ونحن مباشرة تصور لهم تحت المجهر وتسجيل التغييرات التي تعتمد على الوقت في الترجمة، والمطابقة، والتفاعل، والجمعية الدولة فيفو في أو في المختبر. مجاهر الفلورية التقليدية لدينا قرار حيود محدودة المكاني، الذي هو ~ 200-300 نانومتر في الاتجاه الأفقي، وشمال البحر الأبيض المتوسط ~ 500-700 في الاتجاه المحوري1،2، وهي، لذلك، تقتصر على التصوير في 100s من مقياس نانومتر إلى ميكرون. وقد وضعت بغية الكشف عن التفاصيل الدقيقة في الجمعية الجزيئية أو المنظمة، ميكروسكوبيس ريال المختلفة التي يمكن كسر الحد حيود. وتشمل الاستراتيجيات المستخدمة لتحقيق ريال التأثيرات البصرية غير الخطية، مثل الانبعاثات حفز استنفاد (STED) الفحص المجهري3،4 والمنظم الإضاءة مجهرية (SIM)5،6، 7، كشف العشوائية لجزيئات مفردة، مثل التعمير البصرية العشوائية مجهرية (العاصفة)8 وفوتواكتيفاتيد التعريب مجهرية (النخيل)9، ومزيج من الاثنين، مثل مينفلوكس10. بين هذه ميكروسكوبيس ريال، يمكن تعديل مجاهر ريال على أساس الكشف عن جزيء واحد بسهولة نسبيا من هيكل مجهر جزيء واحد. مع التنشيط المتكررة وتصوير فوتواكتيفاتابل البروتينات الفلورية (FPs) أو صور التحويل الأصباغ معلم على الجزيئات الحيوية ذات الاهتمام، القرار المكانية يمكن أن تصل إلى 10-20 نانومتر11. للحصول على معلومات بشأن التفاعلات الجزيئية و conformational مطلوب الديناميات في القرار في الوقت الحقيقي، انغستروم إلى نانومتر. سمفريت،من1213 نهج واحد لتحقيق هذا القرار. عموما، واعتماداً على الأسئلة البيولوجية للفائدة، يلزم أساليب التصوير مع القرارات المكانية المختلفة.

عادة، لكل نوع من التصوير، يلزم تكوين محدد الإثارة و/أو الانبعاثات الضوئية. على سبيل المثال، أحد أساليب الإضاءة الأكثر استخداماً للكشف عن جزيء واحد من خلال الانعكاس الداخلية مجموع (النقل البري)، التي تحتاج إلى تحقيقه من خلال موشور أو من خلال عدسة الهدف بزاوية معينة من إثارة. للكشف عن سمفريت، الانبعاثات من الأصباغ كل من المانحين ويقبلون بحاجة إلى فصل مكانياً والموجهة إلى أجزاء مختلفة من الإلكترون ضرب، جهاز (امككد)، الذي يمكن أن يتحقق مع مجموعة من المرايا وشق شعاع مزدوج اللون وضعت في طريق الانبعاث. ثلاثي الأبعاد (3-D) ريال التصوير، عنصرا بصرية، مثل عدسة أسطوانية14، تحتاج ليسبب تأثير الاستجماتيزم في مسار الانبعاثات. ولذلك، [هومبويلت] أو مجاهر المتكاملة المتاحة تجارياً، عادة، وظيفيا المتخصصة لكل نوع من التصوير أسلوب وليست مرنة للتبديل بين مختلف أساليب التصوير في إنشاء نفس. نقدم هنا هو نظام هجين فعالة من حيث التكلفة، يوفر قابل للتعديل واستنساخه للتبديل بين ثلاث طرق مختلفة التصوير: تصوير برنامج التحصين الموسع-الفلورسنت التقليدية مع القرار حيود محدودة، ريال على أساس الكشف عن جزيء واحد التصوير، والكشف عن جزيء واحد متعدد الألوان، بما في ذلك سمفريت التصوير (الشكل 1A). على وجه التحديد، يتضمن الإعداد المقدمة هنا إلى جانب ألياف الليزر الإدخال للإثارة متعدد الألوان وذراع إضاءة تجارية في مسار الإثارة، الذي يسمح المبرمجة تحكم زاوية الإثارة، للتبديل بين وضع النقل البري الدولي وفي وضع برنامج التحصين الموسع. في مسار الانبعاثات، كاسيت عدسة أسطوانية قابلة للإزالة [هومبويلت] يوضع داخل الجسم المجهر للتصوير ثلاثي الأبعاد بريال، ويوضع مقسم شعاع تجارية قبل كاميرا امككد التي يمكن تمكين بشكل انتقائي للكشف عن قنوات متعددة في الانبعاثات في نفس الوقت.

Protocol

1-المجهر التصميم والجمعية

  1. مسار الإثارة
    ملاحظة: يتضمن مسار الإثارة أشعة الليزر ومكونات التباين (DIC) التدخل التفاضلية والجسم مجهر وذراعها الإضاءة.
    1. إعداد جدول ضوئية عزل الاهتزازات. على سبيل المثال، يعطي جدولاً التخميد هيكلية من 48 × 96 x 12 '' مساحة كافية لكافة المكونات.
      ملاحظة: بناء الهيكل في غرفة مع التحكم في درجة الحرارة (مثل، 21.4 ± 0.55 درجة مئوية). استقرار درجة الحرارة أمر حاسم للحفاظ على محاذاة البصري.
    2. تثبيت جهاز مجهر مجهز بذراع إضاءة للاتصال بالألياف الضوئية، 100 × النفط-الغمر TIRF الهدف العدسة، ومكونات DIC.
    3. ضع أربعة رؤساء الليزر (647 نانومتر، 561 نانومتر، 488 نانومتر، و 405 نانومتر، مطوقة الشكل 1B) الحرارة المصارف على الطاولة الضوئية، وتأكد من أشعة الليزر المنبعثة لها نفس الارتفاع وهي قصيرة قدر الإمكان لضمان استقرار جيدة (مثل ، 3 '').
      ملاحظة: إذا كان رأس ليزر يجلس على ارتفاع أقل من غيرها الليزر، وضع صفيحة ألومنيوم بسماكة كافية تحته. دائماً ضمان الحد الأقصى من الاتصال بين المصارف الحرارة والجدول البصرية لتبديد الحرارة أفضل (الشكل 1B). الليزر بحاجة إلى أن تكون قوية بما يكفي لتصوير ريال. انظر الجدول للمواد. من المستحسن أن يكون الليزر تنظيف المرشحات أمام ليزر صمام ثنائي.
    4. تثبيت بطاقة الحصول على بيانات من خلال واجهة interconnect (PCI) مكون طرفية في محطة عمل والاتصال أشعة الليزر باستخدام هذه البطاقة. التحكم في السلوكيات ON/OFF الليزر الترانزستور الترانزستور منطق (TTL) إخراج وتكيفهم السلطة بإخراج تمثيلية لهذه البطاقة (الشكل 1). تثبيت الفحص المجهري سليم التصوير البرمجيات (تجارية أو [هومبويلت]) للتحكم في بطاقة حيازة البيانات، فضلا عن الجسم المجهر.
    5. جبل المرايا وشق شعاع مزدوج اللون (590 و 525 و 470 طويلة تمرير مرشحات) لما يتصاعد منها. استخدام يتصاعد مرآة مستقرة جداً للمرايا. استخدام شق دائري مع الاحتفاظ بحلقات لتجنب ثني أي من شق شعاع مزدوج اللون (الشكل 1).
    6. وضع المرايا وشق شعاع مزدوج اللون على الطاولة الضوئية الجمع بين أشعة الليزر (الشكل 1B). لتحقيق المحاذاة الأكثر استقرارا، تجعل هذا الترتيب كله حسب الاتفاق قدر الإمكان، واستخدام الوظائف البصرية 1 ''-سمك. ترتيب الليزر حيث أن الليزر الطول الموجي أقصر أقرب إلى اقتران الألياف البصرية (الشكل 1B) نظراً للطول الموجي القصير الأضواء تتبدد أكثر في الهواء.
    7. الجمع بين أشعة الليزر في ألياف الضوئية طريقة واحدة. للقيام بذلك، بناء مقرنة ألياف في قفص نظام من خلال الخطوات التالية:
      1. تحميل لوحة محول ألياف في جبل محور ع ترجمة (الشكل 1E، الفريق الموجود في أقصى اليمين).
      2. جبل عدسة يبنوا متعامي (البعد البؤري = 7.5 ملم) في لوحة قفص (الشكل 1E، الفريق الثاني من اليسار).
      3. اتصال أجزاء اثنين أعلاه بمد قضبان شكل قفص. جبل القفص على الطاولة الضوئية مع تصاعد بين قوسين على الوظائف 1 '' سميكة ضوئية (الشكل 1E، الفريق الأوسط).
      4. محاذاة 647-نانومتر الليزر أولاً مع ألياف الضوئية طريقة واحدة (نهاية FC/آسيا والمحيط الهادئ إلى المقرنة).
        ملاحظة: استخدام ألياف البصرية وضع متعددة من قبل استخدام الألياف الضوئية طريقة واحدة قد تساعد عملية المحاذاة محاذاة الخام. ضبط زوايا المرايا وشق شعاع مزدوج اللون (الشكل 1، بالمقابض التكيف)، فضلا عن المسافة بين العدسة يبنوا متعامي ولوحة محول الألياف (الشكل 1E، عن طريق ضبط محور ع الترجمة جبل) للحصول على الليزر أقصى إنتاج الطاقة عن طريق الألياف.
      5. حالما يتم محاذاة أول ليزر، مؤقتاً تثبيت زوج من القزحيات ومحاذاة بقية الليزر واحداً تلو الآخر (الشكل 1F). التحقق من كفاءة المحاذاة مع مقياس طاقة.
      6. ترك واحدة القزحية الجزء الأمامي من لوحة محول للحد من انعكاسات الليزر.
        ملاحظة: قوي الظهر انعكاسات يمكن أن تقلل من عمر مصادر الليزر. بشكل اختياري، يمكن تثبيت عازل بصري أمام كل رئيس الليزر لإزالة الأفكار تماما.
    8. توصيل الطرف الآخر من الألياف الضوئية للذراع إضاءة المجهر (الشكل 1 ح).
    9. تصميم وتثبيت "التكبير عدسة (ماج)" من خلال الخطوات التالية:
      ملاحظة: يمكن استخدام الليزر لتصوير برنامج التحصين الموسع-الأسفار من العينة، ولكن حجم الضيق شعاع الليزر كل حدود المنطقة المضاءة من العينة إلى منطقة عدة مرات أصغر من الحجم الفعلي للاستشعار الكاميرا المقابلة، لا سيما بالنسبة أحدث كاميرات (مع 18.8 مم في طول قطري مقارنة بطول 11.6 ملم التقليدية). وهكذا، من المستحسن توسيع شعاع لتحقيق إضاءة أكبر وتملق للعينة.
      1. تصميم ماج العدسة، والتي يمكن أن تندرج في ذراع الإضاءة (الشكل 1 ح).
        ملاحظة: يعتمد تصميم عدسة ماج على حيث يتم تثبيته. ويبين الشكل 1 ح مثال للتثبيت في الذراع الإضاءة، ولكن يمكن تثبيته في أي بقعة بعد أشعة الليزر وتحديدالمنطقه (انظر المناقشة). التصميم مع التصميم بمساعدة الكمبيوتر وصياغة البرامج.
      2. ضع اثنين achromatic عدسات مقعرة واحدة (البعد البؤري = و1)، والآخر محدب (البعد البؤري = و2) في حامل العدسة ماج الصنع (الشكل 2 ألف و 2 (ج))، مع المسافة يساوي مجموع أطوال بهم، و1 + و2 = (-25) + 50 = 25 مم (الشكل 2).
        ملاحظة: مع هذا الاختيار لأطوال، عدسة ماج يوسع الشعاع و2/| إف1| = طيات 2. توفر العدسة ماج براعة. ويمكن إزالتها باستئناف الإضاءة العادية دون توسيع الحزم (الشكل 2D) أو إدراجها في الاتجاه المعاكس لتركيز شعاع الليزر لتحقيق شدة إثارة أقوى.

2-انبعاث المسار

ملاحظة: مسار الانبعاثات تتكون من عدسة أسطوانية قابلة للإزالة وعجلة تصفية حاجز الفاصل انبعاثات كاميرا امككد (الشكل 1). لتحقيق أفضل نقطة انتشار الدالة (PSF) من جزيئات مفردة، يتم وضع منظور DIC بعيداً عن العدسة والهدف.

  1. إدراج مخصص-تصميم كاسيت أسطواني (عدسة ثلاثية الأبعاد)، التي يمكن أن تندرج في محلل DIC اليدوي فتحه في جسم المجهر (الشكل 3).
    ملاحظة: هذا التصميم لا يضر محلل DIC حيث يمكن إدراج كتلة محلل في البرج عامل التصفية.
  2. وضع العدسة ثلاثية الأبعاد من 10 أمتار من البعد البؤري في الكاسيت وأدخله في مسار شعاع انبعاث لخلق تأثير الاستجماتيزم اللازمة لاستخراج إحداثي z كل جزيء واحد14.
    ملاحظة: بشكل اختياري، يمكن وضع كاسيت عدسة ثلاثية الأبعاد أو الخروج من مسار الانبعاثات (الشكل 3).
  3. تثبيت تقسيم شعاع مزدوج اللون متعدد فرقة في برج التصفية داخل الجسم المجهر.
  4. تثبيت عوامل الانبعاثات.
    ملاحظة: يتم اختيار عوامل الانبعاثات حسب فلوروفوريس المفضل. اعتماداً على وحدة التصوير، تستخدم عوامل الانبعاثات وضعت في مواقع مختلفة كما هو موضح أدناه:
    1. لتصوير متسلسل متعدد الألوان برنامج التحصين الموسع-الأسفار أو تصوير ريال، استخدام مرشحات الانبعاثات توضع في عجلة تصفية حاجز متصل بجانب الجسم المجهر للتقليل من الاهتزاز في الجسم المجهر أثناء تبديل القناة (الشكل 1).
    2. لكشف متعدد الألوان المتزامنة (مثلاً، تجارب سمفريت)، وضع عامل تصفية آخر في الخائن انبعاثات (الاختيار الخطوة 4 للحصول على التفاصيل).
      ملاحظة: عادة، مقسم انبعاث تجارية وضعين للتحويل (أي، "المشاركة" أو "تجاوز" وسائط). لفصل الأضواء الانبعاثات لونياً للتصوير بالألوان متعددة متزامنة (وضع "المشاركة")، يتم استخدام مكعب تصفية عقد شق شعاع مزدوج اللون اثنين وثلاثة عوامل الانبعاثات ("ثلاثية المكعب،" الرقم 4 و 4 د). ويستخدم في تركيبة مع المكعب الثلاثي فتحه فارغة في عجلة تصفية الحاجز. للتصوير بالألوان متعددة متسلسلة، من ناحية أخرى، يتم استبدال المكعب الثلاثي مكعب يحتوي فقط على مرآة داخل ("تجاوز المكعب،" الشكل 4A و 4 د).
  5. قم بتثبيت الكاميرا امككد كالجزء الأخير من مسار الانبعاثات. استخدام اتصال USB PCI بتحقيق معدل إطار بسرعة.
    ملاحظة: من المستحسن كاميرا امككد للكشف عن جزيء واحد الأكثر حساسية، ولكن كاميرا سكموس متقدمة يمكن أن تكون بديلاً.

3-حيود محدودة التصوير مع برنامج التحصين الموسع-الإثارة

  1. ضبط زاوية عرضية الليزر الإثارة إلى وضع برنامج التحصين الموسع في الذراع الإضاءة.
  2. فك الارتباط مع العدسة ثلاثية الأبعاد إذا شارك (الشكل 3، اللوحة اليمنى).
  3. إدراج المكعب الالتفافية في التقسيم الانبعاثات (الشكل 4A و 4E، اللوحة السفلية).
  4. (اختياري) إدراج العدسة ماج لمنطقة إضاءة موسعة (الشكل 2D، اللوحة اليمنى).
    ملاحظة: مع استخدام عدسة ماج و 100 × النفط-غمر عدسة الهدف، حوالي 91 × 91 ميكرومتر2 يمكن أن تكون مضيئة بالتساوي، مما يلغي الحاجة استخدام مصدر ضوء أبيض ومكعبات تصفية متعددة.
  5. استخدام الفحص المجهري التصوير البرمجيات اتخاذ متعدد القنوات، و/أو Z-مكدس، والوقت الفاصل بين الصور.
    ملاحظة: هناك العديد من البرامج المتاحة للتصوير المجهري، وليس فقط من الشركات المصنعة للمجهر، بل أيضا من شركات الطرف الثالث أو مفتوحة المصدر للمطورين.

4-متعدد القنوات تصوير جزيء واحد بما في ذلك سمفريت

ملاحظة: نقل إلى موضع "فارغ" في عجلة تصفية الحاجز، حيث أنه يمكن أن تصل إلى جميع الانبعاثات مع أي الطول الموجي للمجموعة الثانية من مرشحات/مزدوج اللون شق شعاع في المقسم والانبعاثات.

  1. لإعداد الكشف عن جزيء واحد متعدد الألوان المعطل تداولها سطح الجزيئات15 استخدام الإثارة TIRF، بما في ذلك قياس سمفريت، وضبط زاوية الليزر الإثارة عرضية إلى الزاوية TIRF. فض الاشتباك ماج العدسة والعدسة ثلاثية الأبعاد.
  2. المشاركة في وضع ثلاث قنوات في التقسيم الانبعاثات (الشكل 1) من خلال الخطوات التالية:
    1. استبدال المكعب الالتفافية مع مكعب "معايرة" الذي يسمح للضوء للذهاب من خلال جميع القنوات (الشكل 4 باء و 4E).
    2. قم بتشغيل الكاميرا تحت DIC (أي، لا يوجد عامل تصفية الانبعاثات في عجلة تصفية الحاجز) وضبط الفتحة المقسم الانبعاثات حتى ثلاث قنوات منفصلة تماما تظهر على الشاشة.
      ملاحظة: إجراء هذه الخطوة مع ضوء غرفة مضاءة، لتصور كل القنوات.
    3. تشغيل مقابض التحكم ضبط رأسية وأفقية في المقسم والانبعاثات ومحاذاة القنوات الثلاث (الشكل 4E و 4F) تقريبا.
    4. إيقاف الكاميرا واستبدال المكعب المعايرة مع مكعب ثلاثية (الشكل 4 و 4E).
    5. ضع عينة مع الخرز متعدد القنوات 100 نانومتر على رأس 100 × عدسة الهدف والتركيز على العينة.
    6. قم بتشغيل الكاميرا والليزر 488 نانومتر والتكبير والتصغير في واحدة من الخرز مشرق وناعما محاذاة القنوات الثلاث التي تحول التكيف التحكم المقابض مرة أخرى (الشكل 4E وز 4).
      ملاحظة: حبات 100 نانومتر الأقنية ينبعث أطوال موجية مختلفة من الضوء على الإثارة 488 نانومتر، تمكين المحاذاة ثلاث قنوات.
  3. قم بتشغيل الكاميرا وأشعة الليزر، التركيز، وإيجاد موقف جيد مع كثافة بقعة معقولة. ضبط الوقت الليزر السلطة والتعرض لتحقيق مستويات مقبولة من الإشارات إلى الضجيج وفوتوبليتشينج. استخدام الفحص المجهري برامج التصوير لتأخذ صوراً بمرور الزمن.

5-ريال تصوير

ملاحظة: هذا هو جزيء واحد المستندة إلى الكشف المجهري ريال.

  1. لإعداد تصوير ريال، إدراج العدسة ثلاثية الأبعاد وإزالة العدسة ماج. تعيين وقت التعرض للكاميرا في قنوات الليزر المناسبة (مثل، مرض التصلب العصبي المتعدد 5-60). تحديد وتعيين يدوياً زاوية عرضية الليزر الإثارة الأمثل أن تكون الزاوية TIRF.
  2. ضع العينة في التصوير المخزن المؤقت16ريال. تسمح المخزن المؤقت لحجته لمدة 10 دقيقة على الأقل قبل التصوير.
    ملاحظة: تنتهي ريال التصوير المخزن المؤقت بعد 1 ساعة تقريبا، لذا يجب ريال جديد التصوير المخزن المؤقت تبعاً لذلك.
  3. تأخذ صورة DIC قبل تصوير ريال. بغية إيجاد ارتفاع الهدف الصحيح لريال، الذي يحسن تأثير الاستجماتيزم، استخدم DIC التصوير للعثور على الطائرة المتوسطة للخلايا. تعريف الطائرة بالارتفاع الذي الخلايا الانتقال من "الخفيفة" بالصور "الظلام" ويبدو أن تصبح شفافة (الشكل 5Aو 5B وج 5). حالما يتم تحديد المستوى البؤري المطلوب، إشراك نظام تصحيح z-الانجراف (الشكل 1A).
  4. إجراء تصوير ريال. تغيير قوة 405 نانومتر الليزر للحفاظ على كثافة معقولة 'وامض على' البقع.
    ملاحظة: في حين أنه من الممكن لتغيير الليزر 405 نانومتر يدوياً، أكثر ملاءمة لتشغيل رمز اقتناء بيانات مبرمجة للحفاظ على كثافة البقع "امض على". هنا مثال عن كيف تتم تلقائياً. شفرة المصدر متاح عند الطلب (الشكل 6).
    1. بدء الحصول على التصوير مع 0 واط/سم2 الليزر البنفسجي السلطة.
    2. عد الوميض على البقع في فترة زمنية معينة.
    3. تعدل قوة الليزر البنفسجي حيث أن يتم الإبقاء على عدد البقع وامض على عتبة المعرفة من قبل المستخدم "عد" في مجال الرؤية. زيادة قوة الليزر البنفسجي عندما ينخفض عدد البقع وامض على عتبة عد الأصوات.
    4. إنهاء اقتناء عندما ينخفض عدد البقع وامض على عتبة العد باستخدام قوة الليزر البنفسجي الأقصى.
      ملاحظة: يمكن أن يكون الحد الأقصى لتعيين بشكل مختلف اعتماداً على سطوع عينة، ولكن لا يزيد عن 130 واط/سم2. اعتماداً على الهدف الفعلي لتصوير ريال، يمكن إنهاء هذه التعليمات البرمجية الحصول التلقائي يدوياً في أي وقت تريده.
  5. تحقق من سلوك وامض وبسفس البقع قريبا بعد بداية اقتناء.
    ملاحظة: إذا كان سلوك وامض ليست مثالية، تغيير زاوية عرضية الليزر الإثارة أو استبدالها في المخزن المؤقت للتصوير. تتوقع أخذ عينات "عمودي"، "الأفقي" والأشكال "الماس" من PSF، تمثل فلوروفوريس من أسفل، أعلاه، وضمن المستوى البؤري، على التوالي (الشكل 5). إذا كان إظهار معظم البقع بسفس الأفقي أو العمودي، ثم المستوى البؤري إيقاف من مركز الخلايا وحتى إنهاء التجربة وضبط المستوى البؤري مرة أخرى. وجود فقاعة هواء في النفط الغمر أو غيرها من العوامل المحلية يمكن أن تؤثر على نوعية بسفس، ولذلك قد يكون من الضروري لاستبدال النفط أو تغيير إلى منطقة تصوير مختلفة للعينة.
  6. لتحليل البيانات، استخدام المصدر المفتوح (في الإضافات إيماجيج المعاهد الوطنية للصحة) أو الرموز المتاحة تجارياً للكشف عن سينترويدس لكل نقطة في كل إطار التصوير واستخراج قيم z لكل نقطة من عرض x و y14.
    ملاحظة: في هذا التقرير، رمز مصدر وضعت أصلاً في واحدة من أقرب جزيء واحد على أساس الكشف عن ريال8 تعديل للكشف عن ثلاثي الأبعاد16 وتم استخدامه.
  7. وفي حالة التصوير باللونين، صورة فلوروفوري مع الطول الموجي الإثارة وقتاً أطول، تليها واحدة مع الطول الموجي أقصر الإثارة. تشغيل التعليمات البرمجية اقتناء الآلي وبالمثل إلى الموضحة في الخطوة 5، 4، ولكن مع ليزر تصوير مختلفة.
    ملاحظة: يجب تصحيح لوني بين الصور مع فلوروفوريس مختلفة (مثلاً، والصبغ الأحمر والصبغ الأصفر والأخضر). هنا هي الخطوات.
    1. شل عدة حبات الأقنية 100 نانومتر على ساترة زجاجية، تجنب تكوين مجموعات.
    2. التقاط صور منها في قنوات مختلفة من الإثارة.
    3. استخراج (X, Y, Z) بتنسيق من البرمجيات (الخطوة 5، 6).
    4. ارسم ΔXأنا = X-1i X 2طاء والمادة ΔYi = Y1i2i (لحبات مختلفة و 1 و 2 قنوات الألوان المختلفة) كل على حدة ويصلح لهم مع الوظائف المناسبة. حفظ المهام.
      ملاحظة: الوظائف الخطية كافية في معظم الحالات. حالما يتم تحديد هذه المهام، ليس لديه هذا القياس بأن يتكرر في كل مرة للتصوير.
    5. في تصوير ريال اللونين الفعلية عينة من الفائدة، تطبيق الوظائف إلى زيغ الصحيحة (X, Y). للاتجاه z زيغ، القيام بالحصول على ΔZ = ض12 حبات الأقنية أو عينات مرجعية معروفة الأقنية المصنف جنبا إلى جنب مع عينة الفائدة.
      ملاحظة: عكس (س، ص) زيغ، الاتجاه z زيغ ليس جيدا استنساخه في كل تجربة، ويرجع ذلك أساسا إلى صيانة غير كاملة الاتجاه z التركيز عند التبديل القناة. ومن ثم، يوصي بإجراء التصحيح في كل مرة. ΔZ = ض12 في الغالب مستقلة (X, Y)، حتى مجرد عدد قليل من حبات أو العينات المرجعية سيكون كافياً كل منطقة عينة كل الاهتمام. ارسم الصور ريال اللونين النهائية شيدت في برمجيات تصور ثلاثي الأبعاد وتحقق ΔZ يدوياً.

النتائج

ويسمح هذا المجهر مرنة واستنساخه بالتبديل بين مختلف أساليب التصوير. هنا نعرض عينة من الصور التي تم جمعها مع كل وحدة التصوير.

يوضح الشكل 5 PSF جزيء وامض في أثناء اقتناء ريال. يتم بناؤها الآلاف من مثل هذه الصور لإنشاء الصورة الن...

Discussion

نظام المجهر الهجين هذا يلغي الحاجة إلى شراء مجاهر متعددة. التكلفة الإجمالية لجميع أجزاء، بما في ذلك الجدول البصرية، والبرمجيات والجدول التثبيت العمالة ومحطة العمل، هو حوالي 230,000 دولار. أجزاء آلة مخصصة، بما في ذلك ماج العدسة والعدسة ثلاثية الأبعاد، ويتكلف حوالي مبلغ 700 (التكلفة تعتمد على ا...

Disclosures

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

Acknowledgements

وتسلم J.F. الدعم من برنامج العلماء سيرل وجائزة ابتكار جديدة لمدير المعاهد الوطنية للصحة. الكتاب تقر اقتراحات مفيدة من مختبر بول Selvin (جامعة إلينوي، اوربانا-شامبين) لتحديد المواقع العدسة ثلاثية الأبعاد.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Nikon Ti-E microscope standNikonTi-E
Objective lensNikon100X NA 1.49 CFI HP TIRF
Microscopy imaging softwareNikonNIS-Elements Advanced Research/HCHC includes "JOBS" module, the programmed acquisition module being used for SR imaging.
The illumination armNikonTi-TIRF-EM Motorized Illuminator Unit MThis arm has a slot for a magnification lens
Analyze blockNikonTi-AThis is installed in the filter turret.
Z-drift correction systemNikonPFSThis system is composed by the stepmotor on the objective nosepiece, IR LED, and a detector.
Optical table topTMC783-655-02R
Optical table basesTMC14-426-35
647 nm laserCobolt90346 (0647-06-01-0120-100)Modulated Laser Diode 647nm 120mW incl. laser head, CDRH control box, USB cable and PSU (Power Supply Unit)
561 nm laserCoherent1280721OBIS 561nm LS 150mW Laser System
488 nm laserCobolt90308 (0488-06-01-0060-100)Modulated Laser Diode 488nm 60mW incl. laser head, CDRH control box, USB cable and PSU (Power Supply Unit)
405 nm laserCrystalaserDL405-025-O405 (+/-5)nm, 25mW, Circular , M2 <1.3, Low Noise, CW, TTL up to 20MHz. 2 BNC connectors for TTL & Analog adjust
Heat sinkCobolt11658 (HS-03)Two units, Heat sink without fan HS-03, Heat sink for 647 nm and 488 nm lasers
Heat sinkCoherent1193289Obis heat sink with fan, 165 x 50 x 50 mm for the 561 nm laser
CAB-USB-miniUSBCobolt10908Two units, communication cable for 647 nm and 488 nm lasers
aluminum for height adjustmentMcMaster-Carr9146T35Multipurpose 6061 Aluminum, Rectangular Bar, 4MM X 40MM, 1' Long for raising 561 nm laser
aluminum for height adjustmentMcMaster-Carr8975K248Multipurpose 6061 Aluminum, 1-1/4" Thick X 3" Width X 1' Length for raising 405 nm laser
BNC cableL-comCC58C-6RG58C Coaxial Cable, BNC Male / Male, 6.0 ft
BNC adapterL-comBA1087Coaxial Adapter, BNC Bulkhead, Grounded
SMA to BNC AdapterHODSMA-870Cobolt MLD lasers have SMA interface, so this adapter is used for BNC connection.
SMB to BNC AdapterFairview MicrowaveFMC1638316-12SMB Plug to BNC Female Bulkhead Cable RG316 Coax in 12 Inch for Coherent Obis lasers
Data Acquisition CardNational InstrumentsPCI-672313-Bit, 32 Channels, 800 kS/s Analog Output Device for controlling lasers, DIC LED, and etc
Barrier Filter Wheel controllerSutter InstrumentLambda 10-BOptical Filter Changer
Emission SplitterCairnOptoSplit III
Dichroic beamsplitterChromaT640LPXR-UF2Dichroic beamsplitter separating red emission from green emission in OptoSplit III
Dichroic beamsplitterChromaT565LPXR-UF2Dichroic beamsplitter separating green & red emission from blue emission in OptoSplit III
Emission filterChromaET700/75MTwo units, Emission filter for red emission (like Alexa Fluor 647) in OptoSplit III as well as in the Barrier filter wheel
Emission filterChromaET595/50MTwo units, Emission filter for yellow/green emission (like Cy3B) in OptoSplit III as well as in the Barrier filter wheel
Emission filterChromaET525/50MTwo units, Emission filter for blue emission(like Alexa Fluor 488/GFP) in OptoSplit III as well as in the Barrier filter wheel
Emission filterSemrockFF02-447/60-25Emission filter for violet emission (like DAPI/Alexa Fluor 405), installed in the Barrier filter wheel
Dichroic beamsplitterChromazt405/488/561/647/752rpc-UF3Multiband dichroic beam splitter for 647, 561, 488, and 405 nm laser excitations inside of the microscope body
DAPI Filter setChroma49000installed in the microscope body
Nikon laser/TIRF filtercubeChroma91032
590 long pass filterChromaT590LPXR-UF1for combining 647 nm laser and 561 nm laser
525 long pass filterChromaT525LPXR-UF1for combining already combined 647 nm and 561nm lasers with 488 nm laser
470 long pass filterChromaT470LPXR-UF1for combining already combined 647 nm, 561 nm and 488 nm lasers with 405 nm laser
Laser clean-up filter (647)Chromazet640/20xfor cleaning up other wavelengths from the 647 nm laser
Laser clean up filter (488)SemrockLL01-488-25for cleaning up other wavelengths from the 488 nm laser
LED light sourceExcelitasX-Cite120LEDused only for DAPI imaging
Mirror mountNewportSU100-F3K
Optical postsNewportPS-2
Clamping forkNewportPS-F
Power MeterNewportPMKITFor measuring laser power
Dichroic beamcombiner mountEdmund Optics58-872C-Mount Kinematic Mount, for holding dichroic beamcombiners in the laser excitation assembly
Retaining ringThorlabsCMRRused for dichroic beamcombiner mounts
Fiber Adapter PlateThorlabsSM1FCFC/PC Fiber Adapter Plate with External SM1 (1.035"-40) Thread
Z-axis translational mountThorlabsSM1ZZ-Axis Translation Mount, 30 mm Cage Compatible
Achromatic Doublet lensThorlabsAC050-008-A-MLØ5 mm, Mounted Achromatic Doublets, AR Coated: 400 - 700 nm
Cage PlateThorlabsCP1TM0930 mm Cage Plate with M9 x 0.5 Internal Threads, 8-32 Tap
Cage Assembly RodThorlabsER4Cage Assembly Rod, 4" Long, Ø6 mm
Cage Mounting BracketThorlabsCP02B30 mm Cage Mounting Bracket
Single mode optical fiberThorlabsP5-405BPM-FC-2Patch Cable, PM, FC/PC to FC/APC, 405 nm, Panda, 2 m
Multi mode optical fiberThorlabsM42L01Ø50 µm, 0.22 NA, FC/PC-FC/PC Fiber Patch Cable, 1 m
Achromatic Doublet lens (mag lens)ThorlabsACN127-025-AACN127-025-A - f=-25.0 mm, Ø1/2" Achromatic Doublet, ARC: 400-700 nm , a concave lens in the "mag lens"
Achromatic Doublet lens (mag lens)ThorlabsAC127-050-Af=50.0 mm, Ø1/2" Achromatic Doublet, ARC: 400-700 nm, a convex lens in the "mag lens"
Retaining ringThorlabsSM05PRRSM05 Plastic Retaining Ring for Ø1/2" Lens Tubes and Mounts, for "mag lens"
Nylon-tipped screwThorlabsSS3MN6M3 x 0.5 Nylon-Tipped Setscrew, 6 mm Long, for holding "3D lens"
3D lensCVI Laser OpticsRCX-25.4-50.8-5000.0-C-415-700f=10 m, rectangular cylindrical lens
EMCCD cameraAndoriXon Ultra 888
100 nm multichannel beadsThermoT7279, TetraSpeck microspheres
red dyeThermoAlexa Fluor 647
yellow-green dyeGE HealthcareCy3
green dyeGE HealthcareCy3B
blue dyeThermoAlexa Fluor 488

References

  1. Lipson, S. G., Lipson, H., Tannhauser, D. S. . Optical physics. , (1995).
  2. Török, P., Wilson, T. Rigorous theory for axial resolution in confocal microscopes. Optics Communications. 137 (1-3), 127-135 (1997).
  3. Klar, T. A., Hell, S. W. Subdiffraction resolution in far-field fluorescence microscopy. Optics Letters. 24 (14), 954-956 (1999).
  4. Hell, S. W., Wichmann, J. Breaking the diffraction resolution limit by stimulated emission: stimulated-emission-depletion fluorescence microscopy. Optics Letters. 19 (11), 780-782 (1994).
  5. Gustafsson, M. G. L. Surpassing the lateral resolution limit by a factor of two using structured illumination microscopy. Journal of Microscopy. 198 (2), 82-87 (2000).
  6. Gustafsson, M. G. L., et al. Three-dimensional resolution doubling in wide-field fluorescence microscopy by structured illumination. Biophysical Journal. 94 (12), 4957-4970 (2008).
  7. Schermelleh, L., et al. Subdiffraction multicolor imaging of the nuclear periphery with 3D structured illumination microscopy. Science. 320 (5881), 1332-1336 (2008).
  8. Rust, M. J., Bates, M., Zhuang, X. Sub-diffraction-limit imaging by stochastic optical reconstruction microscopy (STORM). Nature Methods. 3 (10), 793-795 (2006).
  9. Betzig, E., et al. Imaging intracellular fluorescent proteins at nanometer resolution. Science. 313 (5793), 1642-1645 (2006).
  10. Balzarotti, F., et al. Nanometer resolution imaging and tracking of fluorescent molecules with minimal photon fluxes. Science. 355 (6325), 606-612 (2017).
  11. Vaughan, J. C., Jia, S., Zhuang, X. Ultrabright photoactivatable fluorophores created by reductive caging. Nature Methods. 9 (12), 1181-1184 (2012).
  12. Ha, T., et al. Probing the interaction between two single molecules: fluorescence resonance energy transfer between a single donor and a single acceptor. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 93 (13), 6264-6268 (1996).
  13. Roy, R., Hohng, S., Ha, T. A practical guide to single-molecule FRET. Nature Methods. 5 (6), 507-516 (2008).
  14. Huang, B., Wang, W., Bates, M., Zhuang, X. Three-dimensional super-resolution imaging by stochastic optical reconstruction microscopy. Science. 319 (5864), 810-813 (2008).
  15. Hua, B., et al. An improved surface passivation method for single-molecule studies. Nature Methods. 11 (12), 1233-1236 (2014).
  16. Fei, J., et al. RNA biochemistry. Determination of in vivo target search kinetics of regulatory noncoding RNA. Science. 347 (6228), 1371-1374 (2015).
  17. Raj, A., van den Bogaard, P., Rifkin, S. A., van Oudenaarden, A., Tyagi, S. Imaging individual mRNA molecules using multiple singly labeled probes. Nature Methods. 5 (10), 877-879 (2008).
  18. Stracy, M., Kapanidis, A. N. Single-molecule and super-resolution imaging of transcription in living bacteria. Methods. 120, 103-114 (2017).
  19. Wang, S., Moffitt, J. R., Dempsey, G. T., Xie, X. S., Zhuang, X. Characterization and development of photoactivatable fluorescent proteins for single-molecule-based superresolution imaging. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111 (23), 8452-8457 (2014).
  20. Sekar, R. B., Periasamy, A. Fluorescence resonance energy transfer (FRET) microscopy imaging of live cell protein localizations. The Journal of Cell Biology. 160 (5), 629-633 (2003).
  21. Shi, X., et al. Super-resolution microscopy reveals that disruption of ciliary transition-zone architecture causes Joubert syndrome. Nature Cell Biology. 19 (10), 1178-1188 (2017).
  22. Youn, Y., Ishitsuka, Y., Jin, C., Selvin, P. R. Thermal nanoimprint lithography for drift correction in super-resolution fluorescence microscopy. Optics Express. 26 (2), 1670-1680 (2018).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

140 Fluorescence TIRF

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved