JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

نقدم هنا بروتوكولا لعزل "الخلايا الجذعية لب الأسنان" البشرية والدعوة من أجل تقييم التعبير بريون البروتين أثناء عملية تمايز الخلايا العصبية.

Abstract

قضايا الأخلاقيات البيولوجية المتصلة بالتلاعب بالخلايا الجذعية الجنينية أعاقت التقدم في مجال البحوث الطبية. ولهذا السبب، من المهم جداً للحصول على الخلايا الجذعية البالغة من أنسجة مختلفة مثل الدهنية والحبل السري والنخاع العظمى والدم. بين المصادر الممكنة، لب الأسنان تتسم بأهمية خاصة لأنه من السهل الحصول عليها فيما يتعلق باعتبارات أخلاقيات علم الأحياء. والواقع أن الخلايا الجذعية لب الأسنان البشرية (هدبسكس) هي نوع من الخلايا الجذعية البالغة قادرة على التمييز في الخلايا العصبية مثل ويمكن الحصول عليها من المولى الثالث للمرضى الأصحاء (الفئة العمرية 13-19). على وجه الخصوص، لب الأسنان تم إزالتها مع حفارة مقطعة شرائح صغيرة وتعامل مع كولاجيناز الرابع ومثقف في قارورة. للحث على التفريق بين الخلايا العصبية، قد حفزت هدبسكس مع لو/بفجف لمدة أسبوعين. سابقا، قد أثبتنا أنه أثناء عملية التمايز محتوى الخلوية بريون البروتين (PrPج) في هدبسكس زيادة. وأظهر تحليل سيتوفلوريميتريك تعبير مبكر عن الحزب الثوريج التي ازدادت بعد عملية تمايز الخلايا العصبية. الاجتثاث من الحزب الثوريج قبل siRNA PrP حالت دون تمايز الخلايا العصبية الناجمة عن لو/بفجف. في هذه الورقة، توضح لنا أن علينا تعزيز العزل والفصل و في المختبر أساليب زراعة هدبسكس مع عدة إجراءات سهلة، كانت أكثر كفاءة الخلية استنساخ التوسع على نطاق واسع والتي تم الحصول عليها للخلايا الجذعية الوسيطة (MSCs) وقد لوحظ. ونحن أيضا إظهار كيف هدبسكس، التي تم الحصول عليها بطرق مفصلة في البروتوكول، ونموذج تجريبي ممتازة لدراسة عملية تمايز الخلايا العصبية MSCs والعمليات الجزيئية والخلوية اللاحقة.

Introduction

وكانت الخلايا الجذعية الوسيطة معزولة من أنسجة عدة، بما فيها نخاع العظام ودم الحبل السري ولب الأسنان البشرية، والأنسجة الدهنية والدم1،2،3،،من45 , 6-كما أفاد العديد من المؤلفين، هدبسكس إظهار البلاستيك التقيد، مورفولوجيا تنتجها الخلايا الليفية مثل نموذجي. وهذه تمثل عدد سكان العالية غير متجانسة مع الحيوانات المستنسخة مميزة والاختلافات في القدرات التكاثري والتفريق7،8. هدبسكس التعبير عن علامات محددة للخلايا الجذعية الوسيطة (أي CD44، CD90، CD73، CD105، قامت-1)، وهي سلبية لبعض العلامات المكونة للدم (مثل CD14 و CD19) وهي قادرة على التمايز في المختبر مولتيلينيجي9، 10،11.

وقد أظهرت العديد من المؤلفين أن هذه الخلايا غير قادرة على التمييز في الخلايا العصبية مثل استخدام البروتوكولات المختلفة، التي تشمل إضافة ستموت، بفجف، لو في تركيبة مع محدد وسائط الإعلام والملاحق7،12. أيضا، تشارك العديد من البروتينات أثناء عملية تمايز الخلايا العصبية، ومن بين هذه، تظهر عدة ورقات دور ذات الصلة والتعبير كبيرة من بروتين بريون الخلوية (PrPج)، سواء في الخلايا الجذعية الجنينية والبالغة13، 14-يمثل الحزب الثوريج جزيء بليوتروبيك قادرة على أداء وظائف مختلفة داخل الخلايا كالنحاس الأيض، المبرمج، والتشديد على المقاومة للأكسدة15،،من1617 , 18 , 19 , 20 , 21 , 22.

لدينا ورقة السابقة23، نحن التحقيق في دور الحزب الثوريج في عملية تمايز الخلايا العصبية هدبسكس. وفي الواقع، هدبسكس إكسبريس بريكوسيوسلي PrPج ، وبعد التفريق بين الخلايا العصبية، كان من الممكن نلاحظ زيادة إضافية. مؤلفين آخرين الافتراض بدور محتمل للحزب الثوريج في عمليات تمييز الخلايا العصبية من الخلايا الجذعية. وفي الواقع، محركات PrPج التفريق بين الخلايا الجذعية الجنينية البشرية في الخلايا العصبية، وأوليجوديندروسيتيس، وأستروسيتيس24. وكان الغرض من هذه الدراسة التأكيد على المنهجية للحصول على الخلايا الجذعية من لب الأسنان وعملية التمايز ودور الحزب الثوريج خلال تمايز الخلايا العصبية.

Protocol

وقد اقتطعت الأضراس الثالثة المستخدمة في الدراسة من المرضى (13-19 سنة) مع لا تاريخ مسبق لاستهلاك الكحول أو المخدرات، والتدخين جميع وصحة الفم والأسنان المناسبة. اليوم من التفسير، في قسم علوم طب الأسنان والفكين في جامعة روما "سابينزا"، تم الحصول على الموافقة المستنيرة من المرضى أو الآباء والأمهات. تم الحصول على الموافقة المستنيرة على أساس الاعتبارات الأخلاقية وموافقة لجنة الأخلاقيات.

1-الأسنان واستخراج لب الأسنان

  1. إعداد الوسيلة المناسبة للحفظ أو النقل.
    1. إعداد "تعديل النسر" دولبيكو متوسط تركيز منخفض من الجلوكوز (دميم-L) مع لام الجلوتامين (494.5 مل).
    2. إضافة 5 مل من البنسلين/ستربتوميسين (1%) و 0.5 مل الامفوتريسين (0.1%).
  2. استخراج المولى الثالث من المريض، بسرعة شطفة مع برنامج تلفزيوني، ووضعت في أنبوب اختبار 15 مل مع المتوسط ونقلها إلى المختبر في أقل من 2 ح.
  3. تحت غطاء واقية، فتح الأسنان مع قاطع بتمرير قطع الاكليلية المماس سقف قاعة اللب ومتوازية.
  4. بلطف إزالة اللب مع حفارة صغيرة ووضعها في أنبوب اختبار.
  5. أغسل ثلاث مرات ببرنامج تلفزيوني والطرد المركزي في س 2,500 ز لمدة 10 دقائق في الرايت

2-معالجة لب الأسنان والإفراج عن الخلايا الجذعية

  1. إزالة المادة طافية، ريسوسبيند بيليه في الحل في هانك ووضعه في طبق بتري. احتضانها ح 2 في 37 درجة مئوية في شركة 5%2.
  2. اكتب الرابع كولاجيناز إعداد الحل.
    1. إعداد 0.8 مل من دميم-l.
    2. تذوب 1 مغ من النوع الرابع كولاجيناز مل 0.8 L دميم ودوامه لمدة عدة دقائق.
    3. إضافة دميم-L تصل إلى 1 مل أن يكون تركيز نهائي 1 ملغ/مل.
    4. تصفية الحل مع عامل تصفية 0.22 ميكرومتر.
  3. إزالة الحل هانك بواسطة الطرد المركزي في س 2,500 ز لمدة 10 دقائق في الرايت ويقسم اللب إلى شرائح صغيرة أبروكسيماتيفيلي 1 مم كل واحد مع مشرط المتاح.
  4. وضع شرائح اللب في طبق بتري واحتضان مع 1 مل من النوع الرابع كولاجيناز لمدة 15 دقيقة عند 37 درجة مئوية في شركة 5%2.
  5. إعداد الثقافة المتوسطة (500 مل).
    1. إلى 445 مل من دميم-L مع لام الجلوتامين.
    2. إضافة 50 مل مصل البقري الجنين (FBS) (10%).
    3. إضافة 5 مل من البنسلين/ستربتوميسين (1%).
  6. الطرد المركزي العينة في س 2,500 ز لمدة 10 دقائق في الرايت، إزالة المادة طافية، ريسوسبيند بيليه في الأجل المتوسط (الخطوة 2، 5) والثقافة في قارورة T25 محددة للخلايا الجذعية في 37 درجة مئوية في شركة 5%2.

3-الخلايا الجذعية الثقافة والنشر

  1. كل يوم تحقق الثقافة، وبعد 3 أيام نمو، مراقبة مختلفة استنساخ الخلايا ملتصقة داخل قارورة.
  2. تغيير كل 3 أيام المتوسطة الثقافة.
  3. بين 7 و 12 يوما، بمجرد الوصول إلى التقاء الخلايا ملتصقة، فصل لهم بعلاج الخلايا مع 1 مل يدتا التربسين لمدة 3 دقائق في 37 درجة مئوية أو برفق باستخدام مكشطة خلية.
  4. إضافة 4 مل (نسبة 1:5) للثقافة المتوسطة (الخطوة 2.5) لوقف عمل التربسين.
  5. الطرد المركزي من تعليق خلية لمدة 6 دقائق في 259 x زوإزالة المادة طافية ووضع الخلايا في قارورة T25 للنشر.
    ملاحظة: كل 3 أيام تصل الخلايا إلى التقاء.
  6. تنتشر الخلايا تصل إلى 21 أو 28 يوما (حوالي 6-8 فقرات) لتجنب الوجود غير الجذعية مثل الخلايا في الثقافة.
  7. فصل الخلايا مع 1 مل يدتا التربسين لمدة 3 دقيقة في 37 درجة مئوية أو إلغاء بلطف. الطرد المركزي بتعليق خلية لمدة 6 دقائق في 259 x ز.
  8. إزالة المادة طافية واختبار الخلايا لتحليل سيتوفلوريميتريك (الخطوة 6).

4-عابر PrPج سيلينسينج ب siRNA

  1. الثقافة هدبسكسين 6-جيدا لوحات (2 × 105 خلية/مل) مع 2 مل من الثقافة المتوسطة (الخطوة 2.5) ح 24.
  2. اليوم التالي، إعداد siRNA PrP المتوسطة (400 ميليلتر).
    1. إضافة إلى أنبوب اختبار عقيمة، 384 ميليلتر دميم-l.
    2. إضافة 1 ميليلتر لكل نوع من siRNA الحزب الثوري إلى دميم-L يكون تركيز نهائي من 5 نانومتر (siRNA 4 تستخدم الحزب الثوري والتحقق من قبل المورد لضمان نسبة % إيه سيفن زيرو كفاءة ضربة قاضية).
    3. إضافة 12 ميليلتر من ترانسفيكتيونريجينت إلى دميم-l.
    4. دوامة الخليط واحتضان لمدة 10 دقيقة على RT للسماح بتشكيل مجمعات تعداء.
  3. إضافة 400 ميكروليتر siRNA PrP متوسطة لكل عينة واحتضانها ح 6 عند 37 درجة مئوية.
  4. دون تجاهل siRNA PrP المتوسطة، إضافة 1.6 مل (نسبة 1 إلى 5) من الثقافة المتوسطة (الخطوة 2، 5).
  5. ترك الخلايا ح 72 في 37 درجة مئوية.
  6. إزالة المادة طافية ويغسل 3 مرات مع 2 مل من برنامج تلفزيوني في الرايت
  7. إضافة 2 مل من الخلايا العصبية الثقافة المتوسطة لمدة 7 أو 14 يوما (الخطوة 5، 1).
  8. تغيير المتوسطة ثقافة العصبية كل 3 أيام.
    ملاحظة: استبدال siRNA حل الحزب الثوري كل وقت استبدال المتوسطة ثقافة العصبية.
  9. في نهاية الوقت، يغسل 3 مرات مع 2 مل من برنامج تلفزيوني في الرايت واختبار الخلايا العصبية المستضدات السطحية بتحليل "لطخة الغربية".

5-الخلايا العصبية عملية الاستقراء من هدبسكس

  1. إعداد الخلايا العصبية الثقافة المتوسطة (500 مل).
    1. إعداد مل 444.7 وسائط القاعدية للخلايا العصبية.
    2. للمتوسط إضافة 50 مل ملحق خالية من المصل يستخدم لدعم استمرارية على المدى الطويل للخلايا الجذعية العصبية الجنينية والكبار (10%).
    3. إضافة 200 ميليلتر من أساسية "تنتجها الخلايا الليفية عامل النمو" (بفجف) (تركيز النهائي 40 نانوغرام/ملليلتر) و 100 ميليلتر من عامل نمو البشرة (لو) إلى المتوسطة (التركيز النهائي 20 نانوغرام/ملليلتر).
    4. إضافة 5 مل من البنسلين/ستربتوميسين (1%) إلى المتوسط.
  2. هدبسكس الثقافة في لوحات 6-جيدا (2 × 105 خلية/مل) تصل إلى 28 يوما من فصل اللب وتحفيز لهم مع 2 مل من الخلايا العصبية الثقافة المتوسطة.
  3. كل 3 أيام تجاهل المادة طافية ويغسل 3 مرات مع 2 مل من برنامج تلفزيوني في الرايت واستبدال 2 مل المتوسطة ثقافة العصبية.
  4. وبعد أيام 7 و/أو 14، فصل الخلايا مع 1 مل يدتا التربسين لمدة 3 دقائق في 37 درجة مئوية أو بلطف مكشطة.
  5. إضافة 4 مل (نسبة 1:5) للثقافة المتوسطة (الخطوة 2.5) لوقف عمل التربسين.
  6. اختبار وجود المستضدات السطحية العصبية (الخطوة 6) أو تعبير بروتين بريون (الخطوة 7) عن طريق تحليل التدفق الخلوي.

6-وصف هدبسكس "التدفق الخلوي"

  1. تحديد الوسيطة stromal (MSC)-المستضدات السطحية محددة أو الخلايا العصبية.
  2. الثقافة هدبسكس في لوحات 6-جيدا (2 × 105 خلية/مل) مع 2 مل من الثقافة المتوسطة (الخطوة 2، 5).
  3. فصل هدبسكس في 28 يوما من فصل لب الأسنان أو بعد 14 يوما من الخلايا العصبية الثقافة المتوسطة (الخطوة 5، 1) مع 1 مل يدتا التربسين لمدة 3 دقيقة في 37 درجة مئوية أو مكشطة بلطف.
  4. إضافة 4 مل (نسبة 1:5) للثقافة المتوسطة (الخطوة 2.5) لوقف عمل التربسين وسينتريفوجاتي في 259 x ز لمدة 6 دقائق في الرايت يغسل آخر مرة 2 مع 2 مل من برنامج تلفزيوني في الرايت
  5. فيكس هدبسكس غير المعالجة أو المعالجة مع بارافورمالدهيد 4% في برنامج تلفزيوني لمدة 10 دقائق في 4 درجات مئوية.
  6. بيرميبيليزي هدبسكس مع الفاعل غير الأيونية 0.1% (v/v) في برنامج تلفزيوني عن 10 دقيقة إضافية في الرايت
  7. تنفيذ حظر مع الحليب المجفف الخالي 5% في 1 مل من برنامج تلفزيوني عن ح 1 في الرايت
  8. أغسل 3 مرات مع 1 مل من برنامج تلفزيوني واحتضان الخلايا مع مكافحة--CD105 (1: 100/5 × 10 الخلايا5 )، CD44 مكافحة (1: 100/5 × 10 الخلايا5 ) المضادة-قامت-1 (1: 100/5 × 105 خلايا)، مكافحة--CD90 (1: 100/5 × 10 الخلايا5 )، مكافحة--CD73 (1: 100/5 × 105 الخلايا)، مكافحة β3-Tubulin (1: 100/5 × 105 خلايا)، مكافحة--الشركة (1: 100/5 × 105 خلايا) ومكافحة GAP43 (1: 100/5 × 105 خلايا) ماب ح 1 في الرايت
  9. تغسل الخلايا 3 مرات مع 1 مل من برنامج تلفزيوني واحتضان مع الماوس المضادة PE (01:50/5 × 105 خلايا) أو CY5 أرنب المضادة الإنسان والمحيط الحيوي (01:50/5 × 105 خلايا) ح 1 إضافية في الرايت
  10. استخدام الأجسام المضادة الثانوية النابضة الخلايا إيمونوبوسيتيفي (PE الماوس المضادة أو أرنب المضادة CY5 ماب) وتحليل جميع العينات مع سيتوميتير تدفق والحصول على الأحداث على الأقل 20,000.

7-تقييم التعبير PrPج في هدبسكس بتحليل التدفق الخلوي

  1. الثقافة هدبسكسين 6-جيدا لوحات (2 × 105 خلية/مل) مع 2 مل من الثقافة المتوسطة (الخطوة 2، 5).
  2. فصل هدبسكس في 21 و 28 يوما من فصل لب الأسنان وبعد أيام 7 و/أو 14 مع الخلايا العصبية الثقافة المتوسطة (الخطوة 5، 1) مع 1 مل من التربسين-يدتا ووقف عمل التربسين كما هو موضح في الخطوة 6، 4. إصلاح العينات مع بارافورمالدهيد 4% في برنامج تلفزيوني لمدة 10 دقائق في 4 درجات مئوية.
  3. بيرميبيليزي مع سورفاكتانتين غير الأيونية 0.1% (v/v) برنامج تلفزيوني لمدة 10 دقائق في إزالة الرايت المادة طافية ووصمة عار الخلايا مع أرنب PrP مكافحة ماب EP1802Y (01:50/5 × 105 خلايا) ماب ح 1 في الرايت إينكوباتي مع أرنب المضادة CY5 (01:50/5 × 105 خلايا) للإنسان والمحيط الحيوي ل ح 1 إضافية في الرايت
  4. تحليل جميع العينات مع سيتوميتير تدفق وتكتسب الأحداث 20,000 على الأقل.

النتائج

إجراءات العزل والفصل هدبسكس من لب الأسنان، التي تم الحصول عليها من المولى الثالث، هي العمليات المعقدة التي يمكن أن تؤدي التغييرات الصغيرة نتيجة مدمرة. في هذه الورقة، ونحن استخدام البروتوكول لآرثر et al. 12 مع العديد من التحسينات. ويرد في الشكل 1<...

Discussion

في هذا العمل، وركزنا على منهجية للعزل والتفريق بين الخلايا العصبية هدبسكس؛ وعلاوة على ذلك، يمكننا تقييم دور الحزب الثوريج في هذه العملية. هناك عدة طرق لعزل والتفريق بين هدبسكس في الخلايا مثل الخلايا العصبية والخطوات الحاسمة خلال العملية. هدبسكس قادرين على التفريق في الأنساب عدة مث?...

Disclosures

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

Acknowledgements

هذا العمل أيده "مؤسسة بروني" ومحور جامعة رييتي "سابينا الجامعي" إلى ماتي فينتشنزو.

الشكل 5 (أ، ب) طبع بإذن الناشر تايلور وفرانسيس المحدودة من: "دور بريون" البروتين-EGFR مجمع مولتيموليكولار خلال تمايز الخلايا العصبية لطب الأسنان المستمدة من اللب الخلايا الجذعية البشرية. مارتيلوكسي، س.، Manganelli ف، جيم سانتاكروس، واو سانتيلي، لام بيكولي، م. سوريسي، وخامساً ماتيي بريون. 4 مارس عام 2018. تايلور وفرانسيس المحدودة.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Amphotericin B solutionSigma-AldrichA2942It is use to supplement cell culture media, it is a polyene antifungal antibiotic from Streptomyce
Anti-B3tubulinCell Signaling Technology #4466One of six B-tubulin isoform, it is expressed highly during fetal and postnatal development, remaining high in the peripheral nervous system
Anti-CD105 BD Biosciences611314Endoglin (CD105), a major glycoprotein of human vascular endothelium, is a type I integral membrane protein with a large extracellular region, a hydrophobic transmembrane region, and a short cytoplasmic tail
Anti-CD44MilliporeCBL154-20ulPositive cell markers antibodies directed against mesenchymal stem cells
Anti-CD73 Cell Signaling Technology 13160CD73 is a 70 kDa glycosyl phosphatidylinositol-anchored, membrane-bound glycoprotein that catalyzes the hydrolysis of extracellular nucleoside monophosphates into bioactive nucleosides
Anti-CD90MilliporeCBL415-20ulPositive cell markers antibodies directed against mesenchymal stem cells
Anti-GAP43 Cell Signaling Technology #8945Is a nervous system specific, growth-associated protein in growth cones and areas of high plasticity
Anti-mouse PE Abcamab7003Is an antibody used in in flow cytometry or FACS analysis
Anti-NFH Cell Signaling Technology #2836Is an antibody that detects endogenous levels of total Neurofilament-H protein
Anti-PrP mAb EP1802Y Abcamab52604Rabbit monoclonal [EP 1802Y] to Prion protein PrP
Anti-rabbit CY5 Abcamab6564Is an antibody used in in flow cytometry or FACS analysis
Anti-STRO 1MilliporeMAB4315-20ulPositive cell markers antibodies directed against mesenchymal stem cells
B27 Supp XF CTSGibco by life technologiesA14867-01B-27  can be used to support induction of human neural stem cells (hNSCs) from pluripotent stem cells (PSCs), expansion of hNSCs, differentiation of hNSCs, and maintenance of mature differentiated neurons in culture
BD Accuri C6 flow cytometer BD BiosciencesAC6531180187Flow cytometer equipped with a blue laser (488 nm) and a red laser (640 nm)
BD Accuri C6 Software BD BiosciencesControls the BD Accuri C6 flow cytometer system in order to acquire data, generate statistics, and analyze results
bFGFPeproThec, DBA100-18Bbasic Fibroblast Growth Factor 
Centrifuge CL30RTermo fisher Scientific11210908it is a device that is used for the separation of fluids,gas or liquid, based on density
CO2 Incubator 3541Termo fisher Scientific317527-185it ensures optimal and reproducible growth conditions for cell cultures
Collagenase, type IV Life Technologies17104019Collagenase is a protease that cleaves the bond between a neutral amino acid (X) and glycine in the sequence Pro-X-Glyc-Pro, which is found with high frequency in collagen
Disposable scalpel Swann-Morton501It is use to cut tissues
DMEM-LEurocloneECM0060LDulbecco's Modified Eagle's Medium Low Glucose with L-Glutamine with Sodium Pyruvate
EGFPeproThec, DBAAF-100-15Epidermal Growth Factor 
Fetal Bovine SerumGibco by life technologies10270-106FBS is a popular media supplement because it provides a wide array of functions in cell culture. FBS delivers nutrients, growth and attachment factors and protects cells from oxidative damage and apoptosis by mechanisms that are difficult to reproduce in serum-free media (SFM) systems
Filtropur BT50 0.2,500 mL Bottle top filterSarstedt831,823,101it is a device that is used for filtration of solutions
Flexitube GeneSolution for PRNPQiagenGS56214 siRNAs for Entrez gene 5621. Target sequence N.1 TAGAGATTTCATAGCTATTTA  N.2 CAGCAAATAACCATTGGTTAA  N.3. CTGAATCGTTTCATGTAAGAA  N.4  CAGTGACTATGAGGACCGTTA
Hank's solution 1xGibco by life technologies240200083The essential function of Hanks′ Balanced Salt solution is to maintain pH as well as osmotic balance. It also provides water and essential inorganic ions to cells
HiPerFect Transfection Reagent Qiagen301705HiPerFect Transfection Reagent is a unique blend of cationic and neutral lipids that enables effective siRNA uptake and efficient release of siRNA inside cells, resulting in high gene knockdown even when using low siRNA concentrations
Neurobasal A Gibco by life technologies10888022Neurobasal-A Medium is a basal medium designed for long-term maintenance and maturation of pure post-natal and adult brain neurons 
ParaformaldehydeSigma-Aldrich30525-89-4Paraformaldehyde has been used for fixing of cells and tissue sections during staining procedures
penicillin/streptomycin EurocloneECB3001D It is use to supplement cell culture media to control bacterial contamination
Phosphate buffered saline  (PBS)EurocloneECB4004LX10 PBS is a balanced salt solution used for the handling and culturing of mammalian cells. PBS is used to to irrigate, wash, and dilute mammalian cells. Phosphate buffering maintains the pH in the physiological range
TC-Platte 6 well, Cell+,FSarstedt833,920,300It is a growth surface for adherent cells
Tissue culture flask T-25,Cell+,Vented CapSarstedt833,910,302Tissue culture flask T-25, polystyrene, Cell+ growth surface for sensitive adherent cells, e.g. primary cells, canted neck, ventilation cap, yellow, sterile, Pyrogen-free, non-cytotoxic, 10 pcs./bag
Triton X-100 Sigma-Aldrich9002-93-1Widely used non-ionic surfactant for recovery of membrane components under mild non-denaturing conditions
Trypsin-EDTA EurocloneECB3052D Trypsin will cleave peptides on the C-terminal side of lysine and arginine amino acid residues. Trypsin is used to remove adherent cells from a culture surface
TubeSarstedt62,554,502Tube 15 mL, 120 mm x17 mm, PP
VBH 36 C2 CompactSterilST-003009000Offers totally protection for the enviroment and worker
ZEISS Axio Vert.A1 – Inverted MicroscopeZeiss3849000962ZEISS Axio Vert.A1 provides a unique entry level price and can provide all contrasting techniques, including brightfield, phase contrast, PlasDIC, VAREL, improved Hoffman Modulation Contrast (iHMC), DIC and fluorescence. Incorporate LED illumination for gentle imaging for fluorescently-labeled cells. Axio Vert.A1 is ergonomically designed for routine work and compact enough to sit inside tissue culture hoods.

References

  1. Robey, P. G., Kuznetsov, S. A., Riminucci, M., Bianco, P. Bone marrow stromal cell assays: in vitro and in vivo. Methods in Molecular Biology. 1130, 279-293 (2014).
  2. Jiang, Y., et al. Pluripotency of mesenchymal stem cells derived from adult marrow. Nature. 418, 1-49 (2002).
  3. Kern, S., Eichler, H., Stoeve, J., Kluter, H., Bieback, K. Comparative analysis of mesenchymal stem cells from bone marrow, umbilical cord blood, or adipose tissue. Stem Cells. 24, 1294-1301 (2006).
  4. Zannettino, A. C. W., et al. Multi-potential Human adipose-derived stromal stem cells exhibit a perivascular phenotype in vitro and in vivo. Journal of Cellular Physiology. 214, 413-421 (2008).
  5. Mattei, V., et al. Role of lipid rafts in neuronal differentiation of dental pulp-derived stem cells. Experimental Cell Research. 339, 231-240 (2015).
  6. Jansen, J., Hanks, S., Thompson, J. M., Dugan, M. J., Akard, L. P. Transplantation of hematopoietic stem cells from the peripheral blood. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 9 (1), 37-50 (2005).
  7. Young, F. I., et al. Clonal heterogeneity in the neuronal and glial differentiation of dental pulp stem/progenitor cells. Stem Cells International. 2016, 1290561 (2016).
  8. Pisciotta, A., et al. Human dental pulp stem cells (hDPSCs): isolation, enrichment and comparative differentiation of two sub-populations. BMC Developmental Biology. 15, 14 (2015).
  9. Atari, M., et al. Dental pulp of the third molar: a new source of pluripotent-like stem cells. Journal of Cell Science. 125, 3343-3356 (2012).
  10. Koyama, N., Okubo, Y., Nakao, K., Bessho, K. Evaluation of pluripotency in human dental pulp cells. Journal of oral and maxillofacial surgery: official journal of the American Association of Oral and Maxillofacial Surgeons. 67, 501-506 (2009).
  11. Gronthos, S., et al. Stem cell properties of human dental pulp stem cells. Journal of Dental Research. 81, 531-535 (2002).
  12. Arthur, A., Rychkov, G., Shi, S., Koblar, S. A., Gronthos, S. Adult human dental pulp stem cells differentiate toward functionally active neurons under appropriate environmental cues. Stem Cells. 7, 1787-1795 (2008).
  13. Lee, Y. J., Baskakov, I. V. The cellular form of the prion protein is involved in controlling cell cycle dynamics, self-renewal, and the fate of human embryonic stem cell differentiation. Journal of Neurochemistry. 124, 310-322 (2013).
  14. Steele, A. D., Emsley, J. G., Ozdinler, P. H., Lindquist, S., Macklis, J. D. Prion protein (PrPc) positively regulates neural precursor proliferation during developmental and adult mammalian neurogenesis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103, 3416-3421 (2006).
  15. Wulf, M. A., Senatore, A., Aguzzi, A. The biological function of the cellular prion protein: an update. BMC Biology. 15, 34 (2017).
  16. Mattei, V., et al. Recruitment of cellular prion protein to mitochondrial raft-like microdomains contributes to apoptosis execution. Molecular Biology of the Cell. 22, 4842-4853 (2011).
  17. Linden, R. The Biological Function of the Prion Protein: A Cell Surface Scaffold of Signaling Modules. Frontiers in Molecular Neuroscience. 10, 77 (2017).
  18. Garofalo, T., et al. Role of mitochondrial raft-like microdomains in the regulation of cell apoptosis. Apoptosis. , 621-634 (2015).
  19. Watt, N. T., et al. Reactive oxygen species-mediated beta-cleavage of the prion protein in the cellular response to oxidative stress. The Journal of Biological Chemistry. 280, 35914-35921 (2005).
  20. Mattei, V., et al. Morphine Withdrawal Modifies Prion Protein Expression in Rat Hippocampus. PLoS One. 12, 0169571 (2017).
  21. Hu, W., et al. Prion proteins: physiological functions and role in neurological disorders. Journal of the Neurological Sciences. 264, 1-8 (2008).
  22. Sorice, M., et al. Trafficking of PrPC to mitochondrial raft-like microdomains during cell apoptosis. Prion. 6, 354-358 (2012).
  23. Martellucci, S., et al. Role of Prion protein-EGFR multimolecular complex during neuronal differentiation of human dental pulp-derived stem cells. Prion. 12 (2), 117-126 (2018).
  24. Lee, Y. J., Baskokov, I. V. The cellular form of the prion protein guides the differentiation of human embryonic stem cell into neuron-, oligodendrocyte- and astrocyte-committed lineages. Prion. 8, 266-275 (2014).
  25. Huang, G. T., Sonoyama, W., Chen, J., Park, S. H. In vitro characterization of human dental pulp cells: various isolation methods and culturing environments. Cell and Tissue Research. 324, 225-236 (2006).
  26. Suchanek, J., et al. Dental pulp stem cells and their characterization. Biomedical papers of the Medical Faculty of the University Palacký. 153, 31-35 (2009).
  27. Bressan, E., et al. Donor age-related biological properties of human dental pulp stem cells change in nanostructured scaffolds. PLoS One. 7 (11), 49146 (2012).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

145

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved