Isolation, Vermehrung und Prion-Protein-Expression während neuronaler Differenzierung von Stammzellen menschlichen Zahnpulpa

Zusammenfassung

Hier präsentieren wir ein Protokoll für die menschlichen Dental Pulp Stammzellen isoliert und Vermehrung um das Prion-Protein-Expression bei neuronalen Differenzierungsprozess zu bewerten.

Zusammenfassung

Bioethische Fragen im Zusammenhang mit der Manipulation von embryonalen Stammzellen haben Fortschritte auf dem Gebiet der medizinischen Forschung behindert. Aus diesem Grund ist es sehr wichtig, adulten Stammzellen aus verschiedenen Geweben wie Fettgewebe, Nabelschnurblut, Knochenmark und Blut zu erhalten. Zu den möglichen Quellen ist Zahnpulpa besonders interessant, weil es einfach ist, in Bezug auf bioethische Aspekte zu erhalten. In der Tat Dental Pulp Stammzellen (hDPSCs) sind eine Art von adulten Stammzellen in neuronalen-ähnliche Zellen zu unterscheiden und kann der dritte Molar von gesunden Patienten (im Alter von 13-19) entnommen werden. Insbesondere wurde die Pulpa entfernt mit einem Bagger, in kleine Scheiben schneiden, mit Kollagenase IV behandelt und kultiviert in einem Kolben. Um die neuronale Differenzierung zu induzieren, wurden hDPSCs für 2 Wochen mit EGF/bFGF stimuliert. Bisher haben wir gezeigt, dass bei der Differenzierung der Gehalt an zellulären Prion Protein (PrP^C) in hDPSCs erhöht. Die Cytofluorimetric Analyse zeigte frühen Ausdruck der PrP^C , die nach neuronalen Differenzierungsprozess erhöht. Ablation von PrP^C von SiRNA verhindert PrP neuronaler Differenzierung induziert durch EGF/bFGF. In diesem Beitrag zeigen wir, dass wir verstärkte Isolation, Trennung und in-vitro- Kultivierung Methoden der hDPSCs mit einige einfache Verfahren, effizientere Zellklonen erhaltenen und groß angelegte Erweiterung der mesenchymalen Stammzellen (MSCs) waren wurde beobachtet. Wir zeigen auch, wie die hDPSCs, mit Methoden, die gemäß des Protokolls erhalten sind ein ausgezeichnetes experimentelles Modell neuronaler Differenzierung der MSCs und anschließende zelluläre und molekulare Prozesse zu studieren.

Einleitung

Mesenchymaler Stammzellen wurden isoliert aus verschiedenen Geweben, einschließlich Knochenmark, Nabelschnurblut, menschliche Zahnpulpa, Fettgewebe und Blut^{1,2,3,4,5 , 6}. wie von mehreren Autoren berichtet, zeigen hDPSCs Kunststoff festhalten, eine typische Fibroblasten-ähnliche Morphologie. Diese stellen eine sehr heterogene Bevölkerung mit verschiedenen Klonen und Unterschiede in der proliferativen und differenzierenden Kapazität^7,8. hDPSCs express spezifischer Marker für mesenchymale Stammzellen (d.h. CD44, CD90, CD73, CD105, STRO-1), sie sind negativ für einige hämatopoetischen Marker (z. B. CD14 und CD19) und sind in der Lage, in-vitro-multilineage Differenzierung^{9, 10,11}.

Mehrere Autoren haben gezeigt, dass diese Zellen in der Lage sind zu differenzieren in Neuron-wie Zellen mit verschiedenen Protokollen, die den Zusatz von NGF, bFGF, EGF in Kombination mit den spezifischen Medien und Ergänzungen^7,-¹²enthalten. Auch viele Proteine während neuronaler Differenzierungsprozess beteiligt sind, und unter diesen sind mehrere Papiere zeigen eine wichtige Rolle und Ausdruck des zellulären Prion-Proteins (PrP^C), beide in embryonalen und adulten Stammzellen^{13, 14}. PrP^C stellt einen pleiotropen Molekül in der Lage verschiedene Funktionen innerhalb der Zellen als Kupfermetabolismus, Apoptose, und Widerstand gegen oxidativen stress^{15,16,17 , 18 , 19 , 20 , 21 , 22}.

In unseren bisherigen Papier²³untersuchten wir die Rolle von PrP^C in den hDPSCs neuronalen Differenzierungsprozess. In der Tat hDPSCs express altklug PrP^C und nach neuronaler Differenzierung war es möglich, eine zusätzliche Erhöhung zu beobachten. Andere Autoren die Hypothese auf einer möglichen Rolle von PrP^C in neuronale Differenzierungsprozesse von Stammzellen. In der Tat treibt PrP^C die Differenzierung von humanen embryonalen Stammzellen in Neuronen, Oligodendrozyten und Astrozyten²⁴. Der Zweck dieser Studie war, die Methodik für die Gewinnung von Stammzellen aus Zahnpulpa, seine Differenzierungsprozess und die Rolle der PrP^C während neuronaler Differenzierung zu betonen.

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Protokoll

Dritte Molaren, die in der Studie verwendet wurden von Patienten (13-19 Jahre alt) mit keine vorherige Erfahrung im Bereich der Drogen- oder Alkoholkonsum, alle Nichtraucher-Zimmer und mit geeigneten Mundhygiene herausgeschnitten. Am Tag der Erklärung an die Abteilung Wissenschaft Zahnheilkunde und Kieferchirurgie der Universität Rom "La Sapienza" wurde von den Patienten oder die Eltern Einwilligung eingeholt. Die Einwilligung wurde basierend auf ethischen Überlegungen und Zustimmung der Ethik-Kommission.

1. Zahn und Zahnpulpa Extraktion

1. Vorbereitung des entsprechenden Mediums für die Erhaltung oder Transport.
   1. Dulbeccos geändert Eagle mittlere niedrigen Konzentration von Glukose (DMEM-L) mit L-Glutamin (494,5 mL) vorzubereiten.
   2. Geben Sie 5 mL von Penicillin/Streptomycin (1 %) und 0,5 mL Amphotericin (0,1 %).
2. Der dritte Molar vom Patienten zu extrahieren, schnell spülen Sie ihn mit PBS, legen Sie in einem 15 mL Reagenzglas mit dem Medium und überträgt es auf das Labor in weniger als 2 h.
3. Öffnen Sie unter der Haube ein Biohazard den Zahn mit einem Cutter von koronalen Schnittlaufs parallel und tangential durch das Dach der Pulpakammer.
4. Vorsichtig entfernen Sie, das Fruchtfleisch mit einem kleinen Bagger und legen Sie sie in ein Reagenzglas.
5. Dreimal mit PBS waschen und Zentrifugieren bei 2.500 X g für 10 min bei RT

2. Verarbeitung der Pulpa und Stammzell-Release

1. Entfernen des Überstands, Aufschwemmen das Pellet in Hanks Lösung und legen Sie sie in eine Petrischale. 2 h bei 37 ° C in 5 % CO₂inkubieren.
2. Typ IV Kollagenase Vorbereitung der Lösung.
   1. Bereiten Sie 0,8 mL DMEM-L.
   2. Schmelzen Sie 1 mg Typ IV Kollagenase in 0,8 mL DMEM-L und Vortex für mehrere Minuten.
   3. Fügen Sie DMEM-L bis zu 1 mL, eine Endkonzentration haben 1 mg/mL.
   4. Filtern Sie die Lösung mit einem 0,22 µM-Filter.
3. Hank es Lösung durch Zentrifugation bei 2.500 X g für 10 min bei RT entfernen und dem Fruchtfleisch in kleine Scheiben ca. 1 mm jeweils mit einem Einweg Skalpell unterteilen.
4. Legen Sie die Zellstoff-Scheiben in einer Petrischale und inkubieren Sie mit 1 mL Typ IV Kollagenase für 15 min bei 37 ° C in 5 % CO₂.
5. Mittlere Kultur Vorbereitung (500 mL).
   1. Auf 445 mL DMEM-L mit L-Glutamin.
   2. Fügen Sie 50 mL der fetalen Bovine Serum (FBS) (10 %).
   3. Fügen Sie 5 mL von Penicillin/Streptomycin (1 %).
6. Zentrifugieren Sie die Probe bei 2.500 X g für 10 min bei RT, entfernen des Überstands, Aufschwemmen das Pellet in das Medium (Schritt 2.5) und Kultur in T25 Kolben speziell für Stammzellen bei 37 ° C in 5 % CO₂.

(3) Stammzelle-Kultur und Vermehrung

1. Jeden Tag überprüfen Sie die Kultur und nach 3 Tagen des Wachstums beobachten Sie verschiedene Klone von adhärenten Zellen innerhalb der Flasche.
2. Alle 3 Tage ändern das Kulturmedium.
3. Zwischen 7 und 12 Tagen sobald die adhärenten Zellen erreichen Zusammenfluss haben, lösen sie durch Behandlung der Zellen mit 1 mL Trypsin-EDTA für 3 min bei 37 ° C oder sanft mit einem Zelle Schaber.
4. Fügen Sie 4 ml (Verhältnis 1:5) des Kulturmediums (Schritt 2.5), Trypsin-Aktion zu stoppen.
5. Zentrifugieren Sie die Zellsuspension für 6 min bei 259 X g, entfernen Sie überstand zu und legen Sie die Zellen in einem T25 Kolben zu propagieren.
   Hinweis: Alle 3 Tage erreichen die Zellen Zusammenfluss.
6. Verbreiten Sie die Zellen bis zu 21 oder 28 Tage (ca. 6-8 Gänge), das Vorhandensein von nicht-Stamm wie Zellen in der Kultur zu vermeiden.
7. Lösen Sie die Zellen mit 1 mL Trypsin-EDTA für 3 min bei 37 ° C oder sanft kratzen. Zentrifugieren Sie die Zellsuspension für 6 min bei 259 X g.
8. Entfernen Sie den Überstand zu und testen Sie die Zellen für die Cytofluorimetric Analyse (Schritt 6).

(4) vorübergehende PrP^C Silencing durch siRNA

1. Kultur der hDPSCsin-6-Well-Platten (2 x 10⁵ Zellen/mL) mit 2 mL Kulturmedium (Schritt 2.5) für 24 h.
2. Am darauffolgenden Tag bereiten SiRNA PrP Medium (400 µL).
   1. Hinzufügen einer sterilen Reagenzglas 384 µL DMEM-L.
   2. 1 µL für jede Art von SiRNA PrP hinzufügen DMEM-L haben eine Endkonzentration von 5 nM (4 SiRNA PrP verwendet wurden und verifiziert durch den Lieferanten garantieren eine Knockdown Effizienz ≥70 %).
   3. DMEM-L. 12 µL Transfectionreagent hinzufügen
   4. Wirbel der Mischung und 10 min bei RT ermöglicht die Bildung von komplexen Transfektion inkubieren.
3. Jede Probe 400 μl SiRNA PrP Medium hinzu und 6 h bei 37 ° c inkubieren
4. Fügen Sie ohne SiRNA PrP Medium zu verwerfen, 1,6 mL Kulturmedium (Schritt 2.5) (Verhältnis von 1 bis 5).
5. Lassen Sie die Zellen für 72 h bei 37 ° C.
6. Entfernen Sie den Überstand zu und waschen Sie 3 Mal mit 2 mL PBS bei RT
7. Fügen Sie 2 mL der neuronalen Kulturmedium für 7 bzw. 14 Tage (Schritt 5.1).
8. Ändern der neuronalen Kulturmediums alle 3 Tage.
   Hinweis: Ersetzen Sie der SiRNA PrP Lösung jeder Zeit ersetzen die neuronalen Kulturmedium.
9. Am Ende der Zeit 3 Mal mit 2 mL PBS bei RT waschen und testen für neuronale Oberflächenantigenen von Western-Blot Analyse.

(5) neuronale Einführungsprozess des hDPSCs

1. Neuronale Kulturmedium Vorbereitung (500 mL).
   1. Bereiten Sie 444,7 mL basale Medien formuliert, um neuronale Zellen.
   2. Das Medium fügen Sie 50 mL serumfreien Ergänzung zur Unterstützung der langfristigen Rentabilität des embryonalen und adulten neuronalen Stammzellen (10 %) eingesetzt hinzu.
   3. Das Medium (Endkonzentration 20 ng/mL) 200 µL des basic Fibroblast Growth Factor (bFGF) (Endkonzentration 40 ng/mL) und 100 µL der epidermalen Wachstumsfaktor (EGF) hinzufügen.
   4. Geben Sie 5 mL von Penicillin/Streptomycin (1 %) auf das Medium.
2. Kultur hDPSCs in 6-Well-Platten (2 x 10⁵ Zellen/mL) bis zu 28 Tage von der Zellstoff-Trennung und mit 2 mL der neuronalen Kulturmedium zu stimulieren.
3. Alle 3 Tage überstand verwerfen, 3 Mal mit 2 mL PBS bei RT waschen und 2 mL der neuronalen Kulturmedium zu ersetzen.
4. Lösen Sie nach 7 bzw. 14 Tage die Zellen mit 1 mL Trypsin-EDTA für 3 min bei 37 ° C oder vorsichtig mit einem Schaber.
5. Fügen Sie 4 mL (Verhältnis 1:5) Kulturmedium (Schritt 2.5), Trypsin-Aktion zu stoppen.
6. Test für das Vorhandensein von neuronalen Oberflächenantigenen (Schritt 6) oder die Prion-Protein-Expression (Schritt 7) durch Flow-Zytometrie-Analyse.

6. Charakterisierung der hDPSCs von Flow Cytometry

1. Wählen Sie mesenchymaler Stromazellen (MSC)-spezifische oder neuronale Oberflächenantigenen.
2. Kultur der hDPSCs in 6-Well-Platten (2 x 10⁵ Zellen/mL) mit 2 mL Kulturmedium (Schritt 2.5).
3. Lösen Sie hDPSCs mit 28 Tagen von der Zahnpulpa Trennung oder nach 14 Tagen der neuronalen Kulturmedium (Schritt 5.1) mit 1 mL Trypsin-EDTA für 3 min bei 37 ° C oder sanft Schaber.
4. 4 ml (Verhältnis 1:5) Kulturmedium (Schritt 2.5), Trypsin-Aktion zu stoppen und entmischen bei 259 X g für 6 min bei RT Waschen ein anderes 2 Mal mit 2 mL PBS bei RT
5. Befestigen Sie die behandelten oder unbehandelten hDPSCs mit 4 % Paraformaldehyd in PBS für 10 min bei 4 ° c
6. Permeabilize hDPSCS mit 0,1 % (V/V) nichtionisches Tensid mit PBS-Puffer für zusätzliche 10 min bei RT
7. Führen Sie die Sperrung mit 5 % getrockneten Magermilch in 1 mL PBS für 1 h bei RT
8. 3 Mal mit 1 mL PBS waschen und inkubieren Sie die Zellen mit Anti-CD105 (1: 100 / 5 x 10⁵ Zellen), Anti-CD44 (1: 100 / 5 x 10⁵ Zellen), Anti-STRO-1 (1: 100 / 5 x 10⁵ Zellen), Anti-CD90 (1: 100 / 5 x 10⁵ Zellen), Anti-CD73 (1: 100 / 5 x 10⁵ Zellen), anti-β3-Tubulin (1: 100 / 5 x 10⁵ Zellen), Anti-NFH (1: 100 / 5 x 10⁵ Zellen) und Anti-GAP43 (1: 100 / 5 x 10⁵ Zellen) mAb für 1 h bei RT
9. Die Zellen 3 Mal mit 1 mL PBS waschen und inkubieren Sie mit Anti-Maus-PE (01:50 / 5 x 10⁵ Zellen) oder Anti-Kaninchen-CY5 (01:50 / 5 x 10⁵ Zellen) mAb für zusätzliche 1 h bei RT
10. Verwenden Sie die sekundäre Antikörper für gating Immunopositive Zellen (Anti-Maus-PE oder Anti-Kaninchen-CY5-mAb) und analysieren Sie alle Proben mit einem Durchflusszytometer und erwerben Sie mindestens 20.000 Veranstaltungen.

7. Bewertung der PrP^C Ausdruck in hDPSCs von Flow Cytometry Analysis

1. Kultur der hDPSCsin-6-Well-Platten (2 x 10⁵ Zellen/mL) mit 2 mL Kulturmedium (Schritt 2.5).
2. Lösen Sie hDPSCs mit 21 und 28 Tagen Zahnpulpa Trennung und nach 7 bzw. 14 Tage mit neuronalen Kulturmedium (Schritt 5.1) mit 1 mL Trypsin-EDTA zu und stoppen Sie die Trypsin-Aktion zu, wie unter Punkt 6.4 beschrieben. Befestigen Sie die Exemplare mit 4 % Paraformaldehyd in PBS für 10 min bei 4 ° C.
3. Permeabilize mit 0,1 % (V/V) nichtionischen Surfactantin PBS für 10 min bei RT. Entfernen Sie den Überstand und die Zellen mit Kaninchen Anti-PrP mAb EP1802Y (01:50 / 5 x 10⁵ Zellen) Flecken mAb für 1 h bei RT inkubieren mit Anti-Kaninchen CY5 (01:50 / 5 x 10⁵ Zellen) mAb für zusätzliche 1 h bei RT
4. Alle Proben mit einem Durchflusszytometer analysiert und mindestens 20.000 Veranstaltungen zu erwerben.

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Ergebnisse

Die Isolierung und Trennung Verfahren des hDPSCs von Zahnpulpa, gewonnen aus der dritte Molar sind komplexe Prozesse, in denen kleine Veränderungen ein ruinöse Ergebnis führen kann. In diesem Papier verwenden wir das Protokoll des Arthur Et Al. ¹² mit einigen Verbesserungen. Eine repräsentative Regelung der Verfahren ist in Abbildung 1dargestellt.

hDPSCs stellt e...

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Diskussion

Dabei konzentrierten wir uns auf Methoden zur Isolierung und neuronale Differenzierung der hDPSCs; Darüber hinaus haben wir die Rolle des PrP^C in diesem Prozess ausgewertet. Es gibt verschiedene Methoden, zu isolieren und hDPSCs in Neuron-wie Zellen und kritischen Schritte während des Prozesses zu unterscheiden. hDPSCs sind in der Lage, mehrere Linien wie Neuronen, Chondroblasten, Adipozyten und Osteoblasten differenzieren. In unserem Paper untersuchten wir die Mechanismen der neuronale Differenzierung und d...

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Materialien

Name	Company	Catalog Number	Comments
Amphotericin B solution	Sigma-Aldrich	A2942	It is use to supplement cell culture media, it is a polyene antifungal antibiotic from Streptomyce
Anti-B3tubulin	Cell Signaling Technology	#4466	One of six B-tubulin isoform, it is expressed highly during fetal and postnatal development, remaining high in the peripheral nervous system
Anti-CD105	BD Biosciences	611314	Endoglin (CD105), a major glycoprotein of human vascular endothelium, is a type I integral membrane protein with a large extracellular region, a hydrophobic transmembrane region, and a short cytoplasmic tail
Anti-CD44	Millipore	CBL154-20ul	Positive cell markers antibodies directed against mesenchymal stem cells
Anti-CD73	Cell Signaling Technology	13160	CD73 is a 70 kDa glycosyl phosphatidylinositol-anchored, membrane-bound glycoprotein that catalyzes the hydrolysis of extracellular nucleoside monophosphates into bioactive nucleosides
Anti-CD90	Millipore	CBL415-20ul	Positive cell markers antibodies directed against mesenchymal stem cells
Anti-GAP43	Cell Signaling Technology	#8945	Is a nervous system specific, growth-associated protein in growth cones and areas of high plasticity
Anti-mouse PE	Abcam	ab7003	Is an antibody used in in flow cytometry or FACS analysis
Anti-NFH	Cell Signaling Technology	#2836	Is an antibody that detects endogenous levels of total Neurofilament-H protein
Anti-PrP mAb EP1802Y	Abcam	ab52604	Rabbit monoclonal [EP 1802Y] to Prion protein PrP
Anti-rabbit CY5	Abcam	ab6564	Is an antibody used in in flow cytometry or FACS analysis
Anti-STRO 1	Millipore	MAB4315-20ul	Positive cell markers antibodies directed against mesenchymal stem cells
B27 Supp XF CTS	Gibco by life technologies	A14867-01	B-27  can be used to support induction of human neural stem cells (hNSCs) from pluripotent stem cells (PSCs), expansion of hNSCs, differentiation of hNSCs, and maintenance of mature differentiated neurons in culture
BD Accuri C6 flow cytometer	BD Biosciences	AC6531180187	Flow cytometer equipped with a blue laser (488 nm) and a red laser (640 nm)
BD Accuri C6 Software	BD Biosciences		Controls the BD Accuri C6 flow cytometer system in order to acquire data, generate statistics, and analyze results
bFGF	PeproThec, DBA	100-18B	basic Fibroblast Growth Factor
Centrifuge CL30R	Termo fisher Scientific	11210908	it is a device that is used for the separation of fluids,gas or liquid, based on density
CO2 Incubator 3541	Termo fisher Scientific	317527-185	it ensures optimal and reproducible growth conditions for cell cultures
Collagenase, type IV	Life Technologies	17104019	Collagenase is a protease that cleaves the bond between a neutral amino acid (X) and glycine in the sequence Pro-X-Glyc-Pro, which is found with high frequency in collagen
Disposable scalpel	Swann-Morton	501	It is use to cut tissues
DMEM-L	Euroclone	ECM0060L	Dulbecco's Modified Eagle's Medium Low Glucose with L-Glutamine with Sodium Pyruvate
EGF	PeproThec, DBA	AF-100-15	Epidermal Growth Factor
Fetal Bovine Serum	Gibco by life technologies	10270-106	FBS is a popular media supplement because it provides a wide array of functions in cell culture. FBS delivers nutrients, growth and attachment factors and protects cells from oxidative damage and apoptosis by mechanisms that are difficult to reproduce in serum-free media (SFM) systems
Filtropur BT50 0.2,500 mL Bottle top filter	Sarstedt	831,823,101	it is a device that is used for filtration of solutions
Flexitube GeneSolution for PRNP	Qiagen	GS5621	4 siRNAs for Entrez gene 5621. Target sequence N.1 TAGAGATTTCATAGCTATTTA  N.2 CAGCAAATAACCATTGGTTAA  N.3. CTGAATCGTTTCATGTAAGAA  N.4  CAGTGACTATGAGGACCGTTA
Hank's solution 1x	Gibco by life technologies	240200083	The essential function of Hanks′ Balanced Salt solution is to maintain pH as well as osmotic balance. It also provides water and essential inorganic ions to cells
HiPerFect Transfection Reagent	Qiagen	301705	HiPerFect Transfection Reagent is a unique blend of cationic and neutral lipids that enables effective siRNA uptake and efficient release of siRNA inside cells, resulting in high gene knockdown even when using low siRNA concentrations
Neurobasal A	Gibco by life technologies	10888022	Neurobasal-A Medium is a basal medium designed for long-term maintenance and maturation of pure post-natal and adult brain neurons
Paraformaldehyde	Sigma-Aldrich	30525-89-4	Paraformaldehyde has been used for fixing of cells and tissue sections during staining procedures
penicillin/streptomycin	Euroclone	ECB3001D	It is use to supplement cell culture media to control bacterial contamination
Phosphate buffered saline  (PBS)	Euroclone	ECB4004LX10	PBS is a balanced salt solution used for the handling and culturing of mammalian cells. PBS is used to to irrigate, wash, and dilute mammalian cells. Phosphate buffering maintains the pH in the physiological range
TC-Platte 6 well, Cell+,F	Sarstedt	833,920,300	It is a growth surface for adherent cells
Tissue culture flask T-25,Cell+,Vented Cap	Sarstedt	833,910,302	Tissue culture flask T-25, polystyrene, Cell+ growth surface for sensitive adherent cells, e.g. primary cells, canted neck, ventilation cap, yellow, sterile, Pyrogen-free, non-cytotoxic, 10 pcs./bag
Triton X-100	Sigma-Aldrich	9002-93-1	Widely used non-ionic surfactant for recovery of membrane components under mild non-denaturing conditions
Trypsin-EDTA	Euroclone	ECB3052D	Trypsin will cleave peptides on the C-terminal side of lysine and arginine amino acid residues. Trypsin is used to remove adherent cells from a culture surface
Tube	Sarstedt	62,554,502	Tube 15 mL, 120 mm x17 mm, PP
VBH 36 C2 Compact	Steril	ST-003009000	Offers totally protection for the enviroment and worker
ZEISS Axio Vert.A1 – Inverted Microscope	Zeiss	3849000962	ZEISS Axio Vert.A1 provides a unique entry level price and can provide all contrasting techniques, including brightfield, phase contrast, PlasDIC, VAREL, improved Hoffman Modulation Contrast (iHMC), DIC and fluorescence. Incorporate LED illumination for gentle imaging for fluorescently-labeled cells. Axio Vert.A1 is ergonomically designed for routine work and compact enough to sit inside tissue culture hoods.