سير عمل شامل من Mass Spectrometry القائم على بروتيوميات بندقية من عينات الأنسجة

Summary

يوفر البروتوكول الموصوف تحليلا كميا محسنا لعينات الأنسجة باستخدام نهجين: الكمية الخالية من التسميات والملصقات. وتستند النهج القائمة على التسمية إلى ميزة كمية أكثر دقة من البروتينات، في حين أن النهج الخالي من الملصقات أكثر فعالية من حيث التكلفة ويستخدم لتحليل مئات العينات من الفوج.

Abstract

وقد أدت التطورات الأخيرة في قياس الطيف الكتلي إلى تحليل بروتيومي عميق إلى جانب توليد مجموعات بيانات قوية وقابلة للاستنساخ. ومع ذلك ، على الرغم من التقدم التقني الكبير ، فإن إعداد العينة من البكبيمنات الحيوية مثل دم المريض ، CSF ، والأنسجة لا يزال يشكل تحديات كبيرة. لتحديد المؤشرات الحيوية، غالبا ما يوفر بروتيوم الأنسجة مصدر عينة جذاب لترجمة نتائج البحث من مقاعد البدلاء إلى العيادة. يمكن أن تكشف عن المؤشرات الحيوية المرشح المحتملة للتشخيص المبكر للسرطان والأمراض العصبية مثل مرض الزهايمر، ومرض باركنسون، الخ. تنتج بروتينات الأنسجة أيضا ثروة من المعلومات النظامية استنادا إلى وفرة البروتينات وتساعد على معالجة الأسئلة البيولوجية المثيرة للاهتمام.

يمكن تجميع التحليل الكمي للبروتيوميات في فئتين واسعتين: نهج قائم على التسمية ونهج خال من التسميات. في النهج القائم على التسمية، يتم تسمية البروتينات أو الببتيدات باستخدام نظائر مستقرة مثل SILAC (وضع علامات النظائر المستقرة مع الأحماض الأمينية في زراعة الخلايا) أو عن طريق العلامات الكيميائية مثل ICAT (علامات التقارب المرمزة بالنظائر)، TMT (علامة الكتلة جنبا إلى جنب) أو iTRAQ (علامة النظائر للكمية النسبية والمطلقة). النهج القائمة على التسمية لديها ميزة كمية أكثر دقة من البروتينات واستخدام تسميات isobaric، يمكن تحليل عينات متعددة في تجربة واحدة. ويوفر النهج الخالي من الملصقات بديلا فعالا من حيث التكلفة للنهج القائمة على الملصقات. يمكن تحليل مئات عينات المرضى المنتمين إلى مجموعة معينة ومقارنتها بالأفواج الأخرى استنادا إلى الميزات السريرية. هنا ، وصفنا سير عمل البروتيوم الكمي الأمثل لعينات الأنسجة باستخدام طرق التنميط البروتيوم الخالية من الملصقات والقائمة على التسمية ، وهو أمر بالغ الأهمية للتطبيقات في علوم الحياة ، وخاصة المشاريع القائمة على اكتشاف العلامات الحيوية.

Introduction

تقنيات البروتيوميات لديها القدرة على تمكين تحديد وتحديد كمي من علامات المرشح المحتملة التي يمكن أن تساعد في الكشف عن المرض^{وتكهناته 1}. وقد عجلت التطورات الأخيرة في مجال قياس الطيف الكتلي البحوث السريرية على مستوى البروتين. يحاول الباحثون التصدي لتحدي علم الأحياء المرضية المعقد للعديد من الأمراض باستخدام البروتيوميات القائمة على قياس الطيف الكتلي ، والتي توفر الآن حساسية متزايدة لتحديد البروتين وتحديد كميته^2. قياس دقيق كمي للبروتينات أمر بالغ الأهمية لفهم التعاون الديناميكي والمكاني بين البروتينات في الأفراد الأصحاء والمرضى³; ومع ذلك ، فإن مثل هذا التحليل على نطاق واسع البروتيوم ليس سهلا.

أحد القيود الرئيسية للتنميط البروتيني للعينات السريرية هو تعقيد العينات البيولوجية. وقد تم التحقيق في العديد من أنواع مختلفة من العينات لدراسة البروتيوم المرض، مثل خطوط الخلايا والبلازما والأنسجة^4،5. وتستخدم خطوط الخلايا على نطاق واسع كنماذج في التجارب المختبرية لمحاكاة مراحل مختلفة من تطور المرض. ومع ذلك, أحد القيود الرئيسية مع خطوط الخلية هو أنها تكتسب بسهولة genotypic والتغيرات phenotypic أثناء عملية زراعة الخلايا⁶. يمكن أن تكون سوائل الجسم مثل البلازما مصدرا جذابا لاكتشاف العلامات الحيوية؛ ومع ذلك ، نظرا للبروتينات وفيرة للغاية ومجموعة ديناميكية من تركيز البروتين ، البلازما بروتيوميات قليلا أكثر تحديا⁷. هنا، الببتيدات نشأت من البروتينات الأكثر وفرة يمكن قمع تلك المستمدة من البروتينات وفيرة منخفضة حتى لو كانت نسبة الكتلة / تهمة هو نفسه⁶. على الرغم من أن هناك تقدما في تقنيات الاستنفاد والتفكك في السنوات القليلة الماضية ، والحصول على تغطية جيدة لا يزال قيدا رئيسيا من بروتيوم البلازما^8،9. ويفضل استخدام الأنسجة للتحقيق proteomic من بيولوجيا المرض وعينات الأنسجة هي الأكثر قريبة من مواقع المرض وتقديم معلومات فسيولوجية ومرضية عالية لتوفير رؤى أفضل في بيولوجيا المرض^10،11.

في هذه المخطوطة، قدمنا بروتوكولا مبسطا لعلم البروتينات الكمي لعينات الأنسجة. لقد استخدمنا عازلة تحتوي على 8 M اليوريا لإعداد الأنسجة lysate كما هذا العازلة متوافقة مع التحقيقات القائمة على قياس الطيف الكتلي. ومع ذلك ، فإنه إلزامي لتنظيف الببتيدات لإزالة الأملاح قبل حقنها في مطياف الكتلة. نقطة واحدة مهمة أن نتذكر هو تقليل تركيز اليوريا إلى أقل من 1 M قبل إضافة التريبسين لهضم البروتين كما يظهر تريبسين نشاط منخفض في تركيز اليوريا 8 M. لقد شرحنا نهجين من البروتيات العالمية الكمية: القياس الكمي القائم على التسمية باستخدام iTRAQ (علامات إيسوباك للقياس الكمي النسبي والمطلق) والتحديد الكمي الخالي من الملصقات (LFQ). يستخدم البروتيوم الكمي القائم على iTRAQ بشكل رئيسي لمقارنة عينات متعددة تختلف في حالتها البيولوجية (على سبيل المثال ، طبيعي مقابل المرض أو عينات المعالجة). يستخدم هذا النهج الكواشف الإسوباريك لتسمية الأمينات الأولية N-المحطة من الببتيدات¹². تحتوي كاشفات iTRAQ على مجموعة مراسل N-methyl piperazine ، ومجموعة موازنة ، ومجموعة إستر N-hydroxy succinimide التي تتفاعل مع الأمينات الأولية N-terminal من الببتيدات¹³. يتم تسمية الببتيدات المهضومة من كل حالة مع كاشف iTRAQ معين. بعد وضع العلامات ، يتم إيقاف رد الفعل ويتم تجميع الببتيدات المسماة من ظروف مختلفة في أنبوب واحد. يتم تحليل خليط العينة المشترك هذا بواسطة مطياف الكتلة لتحديده وتحديد كمي. بعد تحليل MS / MS ، يتم إنشاء شظايا أيون المراسل ذات الكتل الجزيئية المنخفضة وتستخدم كثافة أيونات المراسل هذه للقياس الكمي للبروتينات.

وثمة نهج آخر، وهو القياس الكمي الخالي من الملصقات، يستخدم لتحديد العدد النسبي للبروتينات في العينات المعقدة دون وضع علامات على الببتيدات ذات النظائر المستقرة.

Protocol

وقد استعرضت هذه الدراسة ووافقت عليها مجالس المراجعة المؤسسية ولجنة الأخلاقيات التابعة للمعهد الهندي للتكنولوجيا بومباي (IITB-IEC/2016/026). قدم المرضى / المشاركون موافقتهم الخطية للمشاركة في هذه الدراسة.

1. إعداد lysate الأنسجة

ملاحظة: تنفيذ كافة الخطوات التالية على الجليد للحفاظ على proteases غير نشط. تأكد من أن المشرط وأي أنابيب تستخدم معقمة لتجنب أي تلوث متقاطع.

1. اتخاذ ~ 30 ملغ من الأنسجة في أنبوب الضرب حبة، إضافة 200 ميكرولتر من 1x الفوسفات العازلة المالحة (PBS) ودوامة ذلك.
   ملاحظة: في هذه الدراسة، تم أخذ أنسجة ورم الدماغ البشري المجمدة الطازجة لإعداد اليستات. يمكن استخدام البروتوكول لأي أنسجة مجمدة طازجة مع بعض التغييرات اعتمادا على نوع الأنسجة (الأنسجة الرخوة أو الصلبة) والتعقيد الخلوي للأنسجة.
2. بعد ذلك، تدور أنبوب لتسوية الأنسجة وإزالة بعناية برنامج تلفزيوني باستخدام ماصة. إجراء آخر يغسل برنامج تلفزيوني إذا كان لا يزال هناك آثار الدم اليسار في الأنسجة.
3. إضافة 300 ميكرولتر من العازلة تحلل اليوريا (8 M اليوريا، 50 mM تريس درجة الحموضة 8.0، 75 mM NaCl، 1 mM MgCl₂₎و كوكتيل مثبطات البروتيز (PIC) وفقا لبروتوكول الشركة المصنعة.
   ملاحظة: حجم العازلة تحلل ينبغي أن تكون كافية لطحن الأنسجة أثناء عملية سونيكيشن وتعليق ما يتم استخراجه. قد يؤدي القليل جدا من عازل التحلل إلى تحلل غير فعال للأنسجة ، في حين أن الكثير من احتياطي التحلل سيضعف تحلل البروتين.
4. ضع الأنبوب على الثلج وصوتيت الأنسجة على سعة 40٪ لمدة 2.5 دقيقة مع دورات نبض 5 ثوان (ON / OFF، على التوالي).
5. إضافة حبات الزركونيوم إلى الأنابيب وتجانس الأنسجة باستخدام الخافق حبة لمدة 90 ق مع حضانة 5 دقائق على الجليد. كرر هذه الخطوة مرتين.
6. بمجرد تجانس الأنسجة بشكل كاف ، احتضن الأنبوب على الجليد لمدة 10 دقائق.
7. بعد الحضانة، طارد مركزي العينة في 6،018 × ز لمدة 15 دقيقة في 4 درجة مئوية لفصل حطام الخلية من supernatant.
8. جمع supernatant في أنبوب جديد المسمى وتخزينها في -80 درجة مئوية كما aliquots حتى مزيد من الاستخدام.

2. تحديد كمية البروتين وفحص جودة الأنسجة lysates

1. تحديد تركيز البروتين في الأنسجة lysate باستخدام كاشف برادفورد على النحو المبين في الملف التكميلي 1.
2. بعد تحديد كمية البروتين، قم بتشغيل 10 ميكروغرام من lysate الأنسجة على هلام SDS-PAGE 12٪ للتحقق من جودة اللحواف.
   ملاحظة: يجب إجراء معالجة المتلقين للمعلومات إضافية فقط ل lysates مسح تدقيقات الجودة.

3. الهضم الأنزيمي للبروتينات

ملاحظة: تظهر خطوات الهضم الأنزيمي في الشكل 1أ.

1. للهضم، خذ 50 ميكروغرام من البروتينات وأضف ddH₂O لتعويض الحجم إلى 20 ميكرولتر.
2. الآن، وإعداد 20 mM تريس (2-carboxyethyl) فوسفين (TCEP) من المخزون (0.5 M TCEP) عن طريق إضافة 0.8 ميكرولتر من المخزون إلى ليسات البروتين للحد من الروابط ثاني كبريتيد في البروتينات واحتضان العينة في 37 درجة مئوية لمدة 60 دقيقة.
3. إعداد 40 mM iodoacetamide (IAA) في DDH₂O وإضافة 1.6 ميكرولتر إلى الألكيلات بقايا السيستين انخفاض. احتضان في الظلام لمدة 10 دقيقة في درجة حرارة الغرفة.
4. إضافة تخفيف العازلة التي تحتوي على 25 mM تريس pH 8.0 و 1 MM CaCl₂ في نسبة 1:8 لتخفيف تركيز اليوريا إلى أقل من 1 M في العينة. عند هذه النقطة، تحقق من درجة الحموضة.
   ملاحظة: إذا كنت تستخدم التريبسين كأنزيم الهضم، تأكد من تركيز اليوريا أقل من 1 M.
5. لإجراء عملية الهضم، أضف التريبسين بنسبة إنزيم/ركيزة 1:50. احتضان الأنابيب في 37 درجة مئوية في حمام جاف تهتز لمدة 16 ساعة للهضم بين عشية وضحاها.
   ملاحظة: إنزيم التريبسين هو بروتياز تفاعلي للغاية عرضة للهضم الذاتي. اتخاذ مزيد من الحذر وأداء إضافة تريبسين بسرعة على الجليد.
6. بعد 16 ساعة من الحضانة، وتجفيف الببتيدات المهضومة في تركيز فراغ.

4. إزالة الببتيدات المهضومة

ملاحظة: لتنفيذ تحلية الببتيدات، استخدم نصائح المرحلة C18.

1. قم بتنشيط طرف المرحلة C18 بإضافة 50 ميكرولتر من الميثانول. الطرد المركزي الطرف في 1000 × ز لمدة 2 دقيقة في RT. تجاهل filtrate التي تم جمعها في الجزء السفلي من الأنبوب. كرر مرتين.
2. إضافة 50 ميكرولتر من أسيتونيتريل في 0.1٪ حمض الفورميك لغسل طرف المرحلة. طرد مركزي الأنبوب في 1000 × غرام لمدة 2 دقيقة في RT. تجاهل filtrate التي تم جمعها في الجزء السفلي من الأنبوب. كرر هذه الخطوة مرتين.
3. إضافة 50 ميكرولتر من 0.1٪ (v/v) FA لتوازن العمود. مرة أخرى، قم بإجراء الطرد المركزي عند 1000 × غرام لمدة دقيقتين في RT وتجاهل الفيلترات.
4. إعادة تشكيل الببتيدات المجففة المهضومة في 50 ميكرولتر من حمض الفورميك 0.1٪.
   ملاحظة: تجنب تشكيل فقاعة الهواء داخل نصائح المرحلة أثناء تمرير العينة. يجب عدم تجفيف نصائح المرحلة تماما أثناء خطوة الطرد المركزي ، حيث يمكن أن يؤدي التجفيف إلى فقدان الببتيد.
5. أضف الببتيدات المعاد تشكيلها إلى طرف المرحلة المنشط ومرر العينة عبر طرف المرحلة عن طريق الطرد المركزي عند 1000 × غرام لمدة دقيقتين. كرر هذه الخطوة أربع مرات على الأقل. تخزين التدفق من خلال في 4 °C.
6. لغسل العينة، أضف 50 ميكرولتر من 0.1٪ (v/v) حمض الفورميك. كرر خطوة الطرد المركزي وتجاهل الخيوط.
7. ل elution من الببتيدات، إضافة 50 ميكرولتر من 40٪ (v/v) ACN في حمض الفورميك 0.1٪ (v/v) وتمريره من خلال طرف المرحلة عن طريق الطرد المركزي. جمع filtrate في أنبوب جديد. كرر الخطوة مع 50٪ و 60٪ ACN في حمض الفورميك 0.1٪ وجمع الفيلترات في نفس الأنبوب الطازج.
8. جفف الببتيدات المجففة التي تم جمعها في الأنبوب الطازج باستخدام مكثف فراغ.
   ملاحظة: الببتيدات المجففة المجففة جاهزة للحقن، أو يمكن تخزينها عند -20 درجة مئوية لمدة 6 أشهر. للتخزين على المدى الطويل (>6 أشهر)، تخزين الببتيدات في -80 درجة مئوية.

5. تحديد كمي للببتيدات المجففة

1. إعادة تشكيل الببتيدات المجففة المجففة في 0.1٪ الاتحاد الإنجليزي.
2. مسح لوحة قياس قياس قياس الوبر مع الأنسجة الخالية باستخدام الإيثانول 70٪.
3. استخدم 2 ميكرولتر من 0.1٪ FA لتعيين الفراغ.
4. إضافة 2 ميكرولتر من عينات المعاد تشكيلها على لوحة في النسخ المتماثلة.
5. ضع اللوحة في مطياف وقياس الامتصاص عند 205 نانومتر و280 نانومتر.
6. حساب الأفراط المولار (ε) باستخدام الصيغة التالية:
   ε = 27 / [1 - 3.85 * A280 / A205]
   ملاحظة: مبتهل المولار (ε) هو مقياس لاحتمال الانتقال الإلكتروني أو مدى امتصاص الأنواع للطول الموجي الخاص للإشعاع الذي يحدث عليه. يجب أن تكون قيمة ε في نطاق 31 مل ملغ^-1سم^-1 إلى 33 مل ملغ^-1سم^-1. إذا لم تقع القيمة في النطاق، فهذا يشير إلى أن العينات لا يتم هضمها بشكل صحيح.
7. احسب تركيز الببتيد في μg/μL باستخدام الصيغة التالية:
   تركيز الببتيد = صافي OD (205) / 0.051 * ε

6. الكمية الخالية من الملصقات (LFQ) للببتيدات المهضومة

ملاحظة: للحصول على الكمية الخالية من التسمية، استخدم معلمات LC وMS المذكورة في الملف التكميلي 2. وتم الحصول على بيانات تغطية عالية عندما تم تشغيل ثلاث نسخ بيولوجية من نفس النوع من العينة في مطياف الكتلة.

1. إعداد الكروماتوغرافيا السائلة
   1. بعد القياس الكمي للببتيدات المجففة ، خذ 2 ميكروغرام من الببتيدات في قارورة واجعل الحجم يصل إلى 10 ميكرولتر باستخدام 0.1٪ FA. وسيكون تركيز الببتيدات المجففة 200 نانوغرام/ميكرولتر.
   2. افتح العينات التلقائية لنظام الكروماتوغرافيا السائلة (انظر جدول المواد)وضع القارورة داخل autosampler.
   3. استخدم 0.1٪ (v/v) FA لتكميل العمود السابق والعمود التحليلي.
   4. خذ 1 ميكروغرام من الببتيد المهضوم من القارورة وحمله على العمود.
   5. تعيين تدرج LC وفقا تعقيد العينة. في هذه التجربة، تم استخدام تدرج LC لمدة 120 دقيقة لكمية خالية من التسمية من عينات الأنسجة.
2. MS الإعداد: قبل تحسين أي المقايسات بروتيوميكس، إجراء فحص مراقبة الجودة من الصك من خلال رصد بعض الببتيدات من المصل البقري الألبومين (BSA) باستخدام أي برنامج لملاءمة النظام وتحليل تغطية BSA (الشكل 2A،B). تم تعيين معلمات الاستحواذ في الأداة باستخدام برنامج اكتساب بيانات MS (انظر جدول المواد).
   1. فتح البرنامج، انقر نقرا مزدوجا على إعداد الصك وحدد القالب من الببتيدات معرف مع المعلمات الافتراضية.
   2. تعيين المعلمات MS باستخدام ملف التكميلية 2 وحفظه كطريقة جديدة.
   3. الآن، افتح البرنامج لملء تفاصيل العينة؛ انقر نقرا مزدوجا فوق إعداد التسلسل، وملء تفاصيل مثل نوع العينة واسم العينة وموقع حفظ الملف وملف طريقة الأداة وحجم الحقن وموضع العينة.
   4. بمجرد تعبئة كافة المعلومات، حدد الصف وابدأ تشغيل.

7. الكمية القائمة على التسمية (iTRAQ) من الببتيدات المهضومة

ملاحظة: يمكن إجراء القياس الكمي المستند إلى التسمية باستخدام تسميات إيزوباريك مختلفة مثل كاشفات iTRAQ أو TMT، إلخ. هنا، تم استخدام iTRAQ 4-plex لتسمية الببتيدات المهضومة من ثلاث عينات من الأنسجة. يتم ذكر إجراء وضع العلامات iTRAQ 4-plex أدناه.

1. وضع العلامات على الببتيدات المهضومة باستخدام كاشفات iTRAQ.
   ملاحظة: في هذه التجربة، يتم استخدام الببتيدات من ثلاث عينات من الأنسجة. من كل عينة نسيج، يتم أخذ 80 ميكروغرام من الببتيدات المهضومة في أربعة أنابيب للوسم بكواشف iTRAQ (114 و115 و116 و117) (انظر الملف التكميلي 3 للاطلاع على المعلمات التجريبية التفصيلية).
   1. قبل استخدام كاشف iTRAQ، أحضر كل قارورة من الكاشف إلى درجة حرارة الغرفة (حوالي 5 دقائق). إعطاء تدور قصيرة من حوالي 30 ق لجلب الحل في الجزء السفلي من كل قارورة.
      ملاحظة: تأكد من أنه في كل قارورة، يجب أن يكون حل 10-15 ميكرولتر موجودا.
   2. بالنسبة إلى وضع العلامات على iTRAQ، إعادة تشكيل الببتيدات المجففة في 20 ميكرولتر من العازلة للحل المتوفرة في مجموعة وضع العلامات iTRAQ.
   3. إعادة تشكيل التسميات بإضافة 70 ميكرولتر من الإيثانول من القارورة المقدمة في المجموعة وخلط الحل لمدة 30 ثانية وتدور لمدة 10 ثانية.
      ملاحظة: من المستحسن أن يتم تنفيذ كافة الخطوات وفقا لتعليمات الشركة المصنعة.
   4. أضف ملصقات iTRAQ المختلطة بشكل متجانس (114 و115 و116 و117) إلى أنابيبها التي تحتوي على عينات الببتيد والسماح بتفاعل وضع العلامات.
   5. خلط مكونات كل أنبوب عن طريق دوامة أنبوب لمدة 30 ق، ومن ثم تدور أنبوب لمدة 10 ق لجلب الخليط مرة أخرى إلى الجزء السفلي من الأنبوب.
      ملاحظة: تحقق من رقم الحموضة للحل باستخدام ورق pH. يجب أن يكون pH أكبر من 8; إذا لم يكن كذلك، أضف ما يصل إلى 10 ميكرولتر من العازلة حل لضبط درجة الحموضة.
   6. احتضان كل أنبوب في درجة حرارة الغرفة لمدة 90 دقيقة. في نهاية رد الفعل، إرواء أي تسمية غير منضمة الزائدة في الأنبوب عن طريق إضافة MS درجة المياه.
   7. احتضان الأنابيب في درجة حرارة الغرفة لمدة 30 دقيقة إلى 1 ساعة.
   8. بمجرد انتهاء الحضانة ، قم بنقل جميع المحتويات المسماة إلى أنبوب واحد وجفف الببتيدات المسماة في مكثف فراغ.
      ملاحظة: يمكن اتباع إجراء وضع العلامات مشابهة للتسمية TMT.
2. إعداد الكروماتوغرافيا السائلة
   1. إعادة تشكيل العينات في حمض الفورميك 0.1٪، وفتح autosampler من LC نانو، ووضع العينات داخل autosampler. استخدم المعلمات المذكورة في الملف التكميلي 2 لإعداد LC.
   2. تعيين التدرج LC وفقا لتعقيد العينة. تم استخدام تدرج LC البالغ 180 دقيقة في هذه التجربة للكمية القائمة على التسمية (iTRAQ) لعينات الأنسجة.
      ملاحظة: بالنسبة للعينات الأقل تعقيدا، يمكن للتدرج القصير فصل معظم الببتيدات بكفاءة. ومع ذلك، إذا كانت العينة معقدة جدا، استخدم تدرجا أطول لفصل أفضل للببتيدات.
3. إعداد MS لتقنية iTRAQ
   1. قم بإعداد كافة معلمات MS للكمية المستندة إلى التسمية بنفس الطريقة المستخدمة للكمية الخالية من التسمية باستثناء طاقة الاصطدام، والتي تم تعيينها إلى 35٪ لتجزئة MS/MS في الكمية المستندة إلى التسمية.

8. تحليل البيانات

1. تحليل ملفات RAW (طيف MS/MS) التي تم الحصول عليها من مطياف كتلة LC باستخدام برنامج تحليل متاح تجاريا (انظر جدول المواد).
   ملاحظة: تم استخدام قاعدة بيانات Proteome مرجع الإنسان من Uniprot (UP000005640) التي تضم تسلسلات البروتينات 71,785 للحصول على هويات البروتين باستخدام Sequest HT والتميمة (v2.6.0) محركات البحث. يتم وصف معلمات الكمية الخالية من التسمية والكمية المستندة إلى التسمية في الملف التكميلي 4.

النتائج

لقد استخدمنا نهجين مختلفين لاكتشاف بروتيوميات: نهج البروتيوميات الخالية من الملصقات والقائمة على التسمية. وأظهرت ملامح البروتين من عينات الأنسجة على SDS-PAGE البروتينات سليمة ويمكن النظر للتحليل بروتيوميك(الشكل 2A). مراقبة الجودة فحص الصك تم رصدها عن طريق نظام ملاءمة ال?...

Discussion

بروتيوم الأنسجة من العينات البيولوجية تمكننا من استكشاف المؤشرات الحيوية المحتملة الجديدة المرتبطة بمراحل مختلفة من تطور المرض. كما يشرح آلية الإشارات والمسارات المرتبطة بتطور المرض. يوفر البروتوكول الموصوف لتحليل البروتيوم الكمي للأنسجة بيانات تغطية جيدة قابلة للاستنساخ. وقد تم تكيي?...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Reagents
Acetonitrile (MS grade)	Fisher Scientific	A/0620/21
Bovine Serum Albumin	HiMedia	TC194-25G
Calcium chloride	Fischer Scienific	BP510-500
Formic acid (MS grade)	Fisher Scientific	147930250
Iodoacetamide	Sigma	1149-25G
Isopropanol (MS grade)	Fisher Scientific	Q13827
Magnesium Chloride	Fischer Scienific	BP214-500
Methanol (MS grade)	Fisher Scientific	A456-4
MS grade water	Pierce	51140
Phosphate Buffer Saline	HiMedia	TL1006-500ML
Protease inhibitor cocktail	Roche Diagnostics	11873580001
Sodium Chloride	Merck	DF6D661300
TCEP	Sigma	646547
Tris Base	Merck	648310
Trypsin (MS grade)	Pierce	90058
Bradford Reagent	Bio-Rad	5000205
Urea	Merck	MB1D691237
Supplies
Hypersil Gold C18 column	Thermo	25002-102130
Micropipettes	Gilson	F167380
Stage tips	MilliPore	ZTC18M008
Zirconia/Silica beads	BioSpec products	11079110z
Equipment
Bead beater (Homogeniser)	Bertin Minilys	P000673-MLYS0-A
Microplate reader (spectrophotometer)	Thermo	MultiSkan Go
pH meter	Eutech	CyberScan pH 510
Probe Sonicator	Sonics Materials, Inc	VCX 130
Shaking Drybath	Thermo	88880028
Orbitrap Fusion mass spectrometer	Thermo	FSN 10452
Nano LC	Thermo	EASY-nLC1200
Vacuum concentrator	Thermo	Savant ISS 110
Software
Proteome Discoverer	Thrermo	Proteome Discoverer 2.2.0.388