JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

هنا ، يتم تقديم بروتوكول إنتاج AAV قائم على الخلايا HEK293 ، مما يؤدي إلى تقليل الوقت والعمالة اللازمة لإنتاج النواقل باستخدام المكونات المتاحة لأغراض البحث من البائعين التجاريين.

Abstract

النواقل الفيروسية المرتبطة بالغدي (AAVs) هي أداة رائعة للتحقيق في الجهاز العصبي المركزي (CNS). قفيصات مبتكرة ، مثل AAV. PHP.eB ، تظهر نقيضا واسعا للجهاز العصبي المركزي عن طريق الحقن في الوريد في الفئران. لتحقيق نقل مماثل ، هناك حاجة إلى عيار أعلى بمقدار 100 ضعف (الحد الأدنى من 1 × 1011 نسخة جينوم / فأر) مقارنة بالحقن المباشر في حمة الجهاز العصبي المركزي. في مجموعتنا ، إنتاج AAV ، بما في ذلك AAV. يعتمد PHP.eB على خلايا HEK293T الملتصقة وطريقة النقل الثلاثي. إن تحقيق غلات عالية من AAV مع الخلايا الملتصقة يستلزم عملية كثيفة العمالة والمواد. دفع هذا القيد إلى تطوير بروتوكول لزراعة الخلايا القائمة على التعليق في الأنابيب المخروطية. تمت مقارنة AAVs المتولدة في الخلايا الملتصقة بطريقة إنتاج التعليق. تمت مقارنة الثقافة في التعليق باستخدام كواشف النقل Polyethylenimine أو TransIt. تم تنقية ناقلات AAV بواسطة الطرد المركزي الفائق التدرج اليوديكسانول متبوعا بتبادل المخزن المؤقت والتركيز باستخدام مرشح الطرد المركزي. باستخدام طريقة الالتصاق ، حققنا متوسط 2.6 × 1012 نسخة جينوم إجمالا (GC) ، في حين أن طريقة التعليق و Polyethylenimine أنتجت 7.7 × 1012 GC في المجموع ، وأسفرت TransIt عن 2.4 × 1013 GC في المجموع. لا يوجد فرق في كفاءة النقل في الجسم الحي بين النواقل المنتجة مع الالتصاق مقارنة بنظام خلية التعليق. باختصار ، تم تقديم بروتوكول إنتاج AAV قائم على خلية التعليق HEK293 ، مما أدى إلى تقليل مقدار الوقت والعمالة اللازمة لإنتاج النواقل مع تحقيق عوائد أعلى من 3 إلى 9 مرات باستخدام المكونات المتاحة من البائعين التجاريين لأغراض البحث.

Introduction

تم اكتشاف الفيروس المرتبط بالغدي (AAV) في عام 1965 ومنذ ذلك الحين تم استخدامه في عدد لا يحصى من التطبيقات1. تم تطبيق AAVs في أبحاث علم الأعصاب لدراسة الجينات والوظيفة العصبية ، أو رسم خرائط للدوائر العصبية ، أو إنتاج نماذج حيوانية للمرض2. تقليديا ، يتم ذلك عن طريق الحقن مباشرة في موقع الاهتمام ، لأن معظم الأنماط المصلية الطبيعية لا تعبر حاجز الدم في الدماغ أو تحتاج إلى جرعة عالية للقيام بذلك1،2،3.

مع اكتشاف AAV. PHP.B4 والجيل التالي من القفيصات مثل AAV. PHP.eB5 و AAV. CAP-B106 ، من الممكن استهداف الجهاز العصبي المركزي (CNS) باستخدام حقن جهازي بسيط. يكشف رسم الخرائط المكانية عن الخلايا التي تستهدفها AAV. PHP.eB على المستوى الخلوي 6,7. بالاقتران مع المروجين / المعززات المحددة ، توفر هذه القفيصات فرصا واسعة لعلماء الأعصاب لدراسة الجينات ووظائف المخ عن طريق توصيل AAV غير الغازية 4,8.

في حين أن هناك حاجة إلى جرعة أقل ل AAV. PHP.eB (عادة من 1 إلى 5 × 1011 نسخة جينوم (GC) / ماوس) مقارنة ب AAV9 (4 × 1012 GC / ماوس) 7 ، لا يزال يتعين إنتاج المزيد من المتجهات مقارنة باستراتيجيات الحقن المباشر (عادة 1 × 109 GC / μL حقن). يمكن إنتاج معظم الأنماط المصلية الطبيعية باستخدام نظام زراعة الخلايا الملتصقة الكلاسيكي بالاشتراك مع تنقية اليوديكسانول9،10،11،12. ل AAV. PHP.eB يستلزم هذا عملية كثيفة العمالة لزراعة الخلايا ونقلها للحصول على ناقلات كافية لتجربة واحدة8. لذلك ، تم تطوير إنتاج AAV في زراعة الخلايا المعلقة في الأنابيب المخروطية. الأنابيب المخروطية ، بسعة تصل إلى 300 مل ، مدمجة ، مما يوفر مساحة الحاضنة والبلاستيك. خلايا التعليق أسهل بكثير في الزراعة والتعامل بكميات كبيرة من الخلايا الملتصقة على ألواح 15 سم. تظل مكونات النقل في البروتوكول كما هي. لذلك ، يمكن بسهولة استخدام البلازميدات المستخدمة سابقا مع النظام الملتصق في هذا البروتوكول بناء على الإنتاج في الخلايا المعلقة. تم نقل البروتوكول بنجاح إلى باحثين آخرين في المختبر واستخدم بنجاح لمختلف القفيصات والتركيبات.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

تمت الموافقة على جميع الإجراءات التجريبية من قبل اللجنة المؤسسية لرعاية واستخدام التابعة للأكاديمية الملكية الهولندية للعلوم (KNAW) وكانت متوافقة مع القانون الهولندي بشأن التجارب على بموجب المشروع رقم AVD8010020199126. في الشكل 1 ، يتم توفير نظرة عامة تخطيطية للبروتوكول الكامل. من خلايا البذر إلى تنقية AAV ، يستغرق البروتوكول 6 أيام حتى يكتمل.

1. إعداد الكاشف

  1. تنقية البلازميد
    1. إجراء استخراج البلازميد كما هو موضح من قبل الشركة المصنعة مع بعض التعديلات لضمان عقم البلازميدات.
    2. تحضير 70 ٪ من الإيثانول باستخدام الماء المقطر المعقم والإيثانول المطلق.
    3. بعد خطوة الطرد المركزي الأيزوبروبانول ، جفف البلازميدات في غطاء خزانة التدفق وأضف 70٪ إيثانول معقم إلى الأنابيب. بعد ترسيب الإيثانول ، جفف البلازميدات في غطاء خزانة التدفق وأعد تعليق البلازميد في الماء المقطر المعقم. احرص على استخدام أنابيب الطرد المركزي الدقيقة المعقمة.
    4. خذ حصة للقياس الكمي ، وتحليل التقييد ، وإذا لزم الأمر ، التسلسل. ينصح بالتحقق من سلامة التكرارات الطرفية المقلوبة (ITR) لأن الطفرات يمكن أن يكون لها تأثير سلبي على العائد. اضبط تركيز العينة على 1 ميكروغرام / ميكرولتر.
  2. إعداد 10x المخزن المؤقت لتحلل توين
    1. قم بإذابة 30.3 جم من محلول Tris و 2.033 جم MgCl2.6H 2O في 400 مل من الماء المقطر المعقم ، واضبط الرقم الهيدروجيني على 8.0 ، وقم بزيادة الحجم الكلي إلى 450 مل.
    2. حافظ على Tween 20 معقما ، وأضف 50 مل من Tween 20 إلى محلول المخزن المؤقت في غطاء المحرك ، وقم بتعقيم المرشح باستخدام مرشح تفريغ 0.2 ميكرومتر.
  3. تخفيفات يوديكسانول
    1. يتم توفير محلول يوديكسانول بتركيز 60٪. استخدم حل البدء لعمل حلول 15٪ و 25٪ و 40٪.
    2. بالنسبة لمحلول 15٪ ، قم بتخفيف 60 مل من محلول 60٪ مع 48 مل من 5 M NaCl و 48 مل من PBS-MK (5x PBS مع 5 mM MgCl2 و 12.5 mM KCl) ، وأضف الماء المقطر حتى 240 مل.
    3. بالنسبة لمحلول 25٪ ، قم بتخفيف 67 مل من محلول 60٪ و 32 مل من PBS-MK. أضف الماء المقطر حتى 160 مل. تخلط جيدا وتضاف 1.6 مل من محلول الفينول الأحمر.
    4. بالنسبة لمحلول 40٪ ، قم بتخفيف 160 مل من محلول 60٪ مع 48 مل من PBS-MK وأضف الماء المقطر حتى 240 مل. بالنسبة لمحلول 60٪ ، أضف 1 مل من الفينول الأحمر إلى 100 مل من محلول 60٪.
  4. برنامج تلفزيوني 5٪ محلول السكروز
    1. أضف 25 جم من السكروز إلى زجاجة سعة 500 مل من DPBS بدون الكالسيوم أو المغنيسيوم. رج العبوة جيدا وقم بالتصفية باستخدام مرشح تفريغ زجاجة 0.2 ميكرومتر.
  5. محلول البولي إيثيلين جلايكول (PEG) 8000
    1. قم بإذابة 400 جم من PEG 8000 و 24 جم من كلوريد الصوديوم في ماء مقطر معقم واضبطه على الحجم النهائي البالغ 1000 مل. يقلب مع التدفئة حتى يذوب تماما. اضبط الرقم الهيدروجيني على 7.4 باستخدام ورق الأس الهيدروجيني.
    2. تعقيم الفلتر باستخدام مرشح تفريغ زجاجة 0.2 ميكرومتر للحصول على محلول PEG 8000 بنسبة 40٪. لاحظ أن الترشيح سيستغرق بعض الوقت بسبب لزوجة مخزن المحلول عند 4 درجات مئوية.

2. ثقافة خلايا التعليق HEK293

  1. استخدم مناديل مبللة بنسبة 70٪ من الإيثانول للتنظيف. تنظيف غطاء السلامة الحيوية وإعداد وتنظيف جميع المواد اللازمة لزراعة الخلايا.
  2. سخن 30 مل من الخلية المعلقة المتوسطة إلى 37 درجة مئوية في أنبوب زراعة مخروطي 50 مل. استرجع خلايا الإنتاج الفيروسي من النيتروجين السائل. قم بإذابة الخلايا بسرعة في حمام مائي بدرجة حرارة 37 درجة مئوية. قبل إذابة القارورة تماما ، قم بتنظيفه بمنديل منقوع في 70٪ من الإيثانول ونقل القارورة إلى غطاء الأمان الحيوي.
    ملاحظة: يتم توفير تفاصيل خلايا الإنتاج الفيروسي المستخدمة هنا في جدول المواد.
  3. انقل الخلايا بسرعة إلى أنبوب الزراعة المخروطي سعة 50 مل المسخن مسبقا. خلايا استزراع في حاضنة اهتزاز عند 37 درجة مئوية ، رطوبة 80٪ ، 8٪ CO2 ، 200 دورة في الدقيقة (RPM) ، وقطر اهتزاز 50 مم. خلايا المرور ، بمجرد أن تكون الصلاحية أعلى من 90٪ وكثافة الخلية أعلى من 1-3 × 106 خلايا / مل.
    ملاحظة: الحاضنة المستخدمة لها قطر اهتزاز 50 مم ؛ يجب ضبط ظروف الاستزراع لقطر اهتزاز مختلف.
  4. خلايا المرور 3-4 أيام بعد ذوبان الجليد. فحص أنبوب (أنابيب) المزرعة للتأكد من عدم وجود علامات تلوث ؛ على سبيل المثال ، ستظهر الفطريات كحلقة متغيرة اللون (سوداء أو خضراء).
  5. قم بإعداد 400 ميكرولتر من محلول تريبان الأزرق 0.4٪ لكل عينة باستخدام شريط 1 مل.
  6. استرداد الخلايا المعلقة بسرعة من الحاضنة. استخراج 500 ميكرولتر على الفور من الأنبوب باستخدام شريط 1 مل. ماصة بلطف صعودا وهبوطا.
  7. أضف 100 ميكرولتر من تعليق الخلية إلى أنبوب التريبان الأزرق المحضر. اقلب الأنبوب برفق لخلطه ؛ لا تخلط الماصة ، لأن هذا سيؤدي إلى موت الخلايا. إعادة الخلايا إلى الحاضنة.
  8. خذ 50 ميكرولتر من تعليق الخلايا المعالجة باللون الأزرق المثقب وقم بتطبيقه على شريحة مقياس الدم. عد إجمالي الخلايا القابلة للحياة واحسب كمية تعليق الخلية والوسط اللازم للمرور أو النقل في اليوم التالي.
  9. وسط دافئ في الحاضنة لمدة 10-15 دقيقة. أضف تعليق الخلية إلى الوسط الدافئ والعودة إلى الحاضنة. لتمرير الخلايا لمدة 3 أيام (أي من الاثنين إلى الخميس) ، اضبط على 0.5 × 106 خلايا / مل ؛ لتمرير الخلايا لمدة 4 أيام (أي من الخميس إلى الاثنين) ، اضبط على 0.3 × 106 خلايا / مل.
    ملاحظة: وفقا للشركة المصنعة ، تتضاعف خلايا الإنتاج الفيروسي كل 26 ساعة ويجب أن تكون بين 3.5 × 106 و 5.5 × 106 قبل المرور. يمكن الاحتفاظ بالخلايا لمدة تصل إلى الممر 20.

3. النقل

  1. اليوم 1
    1. في 24 ساعة قبل النقل ، ثقافة 1 × 106 خلايا لكل / مل في 300 مل من الوسائط.
  2. اليوم 2
    1. وسط دافئ ، بلازميدات ، وكاشف نقل إلى درجة حرارة الغرفة. وللاطلاع على المبالغ التي يتعين إعدادها، انظر الجدول 1.
    2. لفترة وجيزة البلازميدات الدوامة والكواشف. أضف البلازميدات إلى الوسط المحضر ، دوامة. أضف كاشف النقل والدوامة لفترة وجيزة. لا تحرك الخليط بعد هذه الخطوة. احتضان في درجة حرارة الغرفة لمدة 30 دقيقة.
    3. في غضون ذلك ، عد الخلايا المعدة في اليوم 1. يجب أن تكون الخلايا بين 2 و 2.5 × 106 خلايا لكل مل > 95٪ قابلة للحياة.
    4. بعد الحضانة ، بالتنقيط ، أضف خليط النقل إلى الخلايا أثناء تدوير الأنبوب برفق. احتضان لمدة 72-96 ساعة.

4. حصاد الخلايا

  1. اليوم 5
    1. أضف 33 مل من محلول تحلل الخلايا 10x (500 مللي متر Tris pH 8 ، 10٪ Tween 20 ، 20 mMMgCl 2) ، اخلطه بالرج برفق ، واحتضنه عند 37 درجة مئوية لمدة 1.5 ساعة مع الرج.
    2. جهاز طرد مركزي عند 3428 × جم عند 4 درجات مئوية لمدة 60 دقيقة. قم بالتصفية من خلال مرشح فراغ PES 0.45 ميكرومتر لتوضيح تحلل الخلية ، مع ترك المحللة الموضحة في حاوية الفلتر.
      ملاحظة: اختياري بعد الترشيح: خذ 50 ميكرولتر من العينة لتفاعل البوليميراز المتسلسل الكمي (Q-PCR).
    3. أضف 90 مل من محلول PEG 8000 بنسبة 40٪ إلى 360 مل من محلول الخلايا المفلترة.
    4. نظف شريط التحريك بنسبة 70٪ إيثانول وأضفه إلى العينة. يقلب على الجليد أو في الغرفة الباردة عند 300 دورة في الدقيقة لمدة 1 ساعة. احتضان على حرارة 4 درجة مئوية دون التقليب طوال الليل.
      ملاحظة: تم اختبار أوقات الحضانة من 1 ساعة إلى 72 ساعة. أوقات الحضانة الأطول لها تأثير سلبي على ترسيب البروتين الكلي.

5. تنقية يوديكسانول

  1. اليوم 6
    1. انقل عينة حجم الاستزراع المترسب PEG بالكامل إلى أنبوب مخروطي كبير نظيف وجهاز طرد مركزي عند 2820 × جم و 4 درجات مئوية لمدة 15 دقيقة.
    2. تخلص من المادة الطافية وأعد تعليق حبيبات PEG في 15 مل من DPBS مع الكالسيوم والمغنيسيوم. من الصعب إنعاش الحبيبات ؛ خذ الوقت الكافي للقيام بذلك بعناية.
    3. انقل الجزء المعاد تعليقه إلى أنبوب نظيف سعة 50 مل. سيبقى PEG على جانبي أنبوب المفاعل الحيوي. أضف 10 مل إضافية ، مع الحرص على جمع كل راسب PEG. انقل الكل إلى حاوية سعة 50 مل لحجم إجمالي يتراوح بين 25 و 30 مل.
    4. أضف 40 ميكرولتر من DNaseI (10 وحدة / ميكرولتر). ضعه في الحاضنة لمدة 1 ساعة 37 درجة مئوية.
      ملاحظة: اختياري بعد حضانة DNase: خذ 50 ميكرولتر من العينة ل Q-PCR.
    5. نظف قضبان التقليب التي تم استخدامها لترسيب PEG جيدا بمحلول كلوريد متبوعا ب 70٪ إيثانول. اترك قضبان التحريك في 70٪ إيثانول للتجربة التالية.
    6. املأ أنبوب بولي ألومر 25 مم × 89 مم باستخدام ماصة باستور زجاجية مع 15.5 مل من محللات الخلايا المركزة في كل أنبوب. بعد إضافة محللة الخلية ، استبدل ماصة باستور الزجاجية بأخرى جديدة.
    7. أضف محاليل اليوديكسانول من 15٪ -60٪: اغرس 9 مل من محلول اليوديكسانول 15٪ برفق تحت محلول الخلية. بعد ذلك ، أضف 5 مل من محاليل اليوديكسانول 25٪ و 40٪ ، وأخيرا ، أضف 5 مل من محلول اليوديكسانول 60٪.
    8. قم بإغلاق الأنبوب باستخدام حقنة مع DPBS +/+ لإزالة معظم فقاعات الهواء ، مع الحرص على عدم إزعاج طبقات اليوديكسانول. أغلق الأنبوب باستخدام غطاء أنبوب كهربائي.
    9. جهاز طرد مركزي في دوار غير متأرجح لمدة 1 ساعة و 10 دقائق عند 490000 × جم عند 16 درجة مئوية في جهاز طرد مركزي فائق. قم بإزالته من أجهزة الطرد المركزي الفائقة ، وقم بتجميع الأنابيب في قفل معدني ، وقم بإعداد أنابيب التجميع. افتح الدوار في غطاء المحرك في حالة الانسكابات أثناء الدوران.
    10. قم بإعداد أنبوب واحد سعة 50 مل (للتخلص من الأنبوب الدوار) ، وأنبوب واحد سعة 15 مل (لتجميع الفيروسات) ، ومحقنة سعة 5 مل ، وإبرة 30 جم و 19 جم لكل تدرج.
    11. ثقب ثقب في الجزء العلوي من الأنبوب بإبرة 30G. اترك الإبرة في مكانها. ضع إبرة 19G على المحقنة.
    12. ثقب الأنبوب بعناية أسفل واجهة 40٪ / 60٪ مباشرة ، والتي يمكن رؤيتها بواسطة مؤشر الفينول الأحمر. تأكد من أن شطبة الإبرة تواجه طبقة 40٪.
    13. قم بإزالة إبرة 30G من أعلى الأنبوب باستخدام اليد غير المهيمنة. مع مشطوفة الإبرة ، استخرج الفيروس / اليوديكسانول ببطء. الهدف هو استخراج ما بين 3 مل و 4.5 مل. في منتصف الطريق تقريبا وفي الطبقة الشفافة 40٪ / ، قم بتدوير الإبرة حتى يصبح الشطبة متجهة لأسفل واستمر في الاستخراج لتجنب التجمع من طبقة البروتين.
    14. قم بإعداد أنبوب 50 مل باليد غير المهيمنة ، واستخرج الإبرة بعناية أثناء وضع الأنبوب في أنبوب 50 مل وتخلص منه. قم بتخفيف تعليق AAV / iodixanol 5x في DPBS عن طريق ملء ما يصل إلى 15 مل.
    15. نقل إلى أنبوب مرشح الطرد المركزي وأجهزة الطرد المركزي في 3428 × ز ، 4 درجة مئوية لمدة 10 دقائق. تجاهل التدفق من خلال ؛ قم بإزالة حامل الفلتر برفق وقم بقلب الحاوية السفلية في زجاجة نفايات. أضف 15 مل من السكروز PBS-5٪ للترشيح وإعادة التأهيل.
    16. أجهزة الطرد المركزي عند 3428 × جم عند 4 درجات مئوية لمدة 20 دقيقة. كرر تبادل المخزن المؤقت 3x على الأقل. تخزين الفيروس (~ 150-250 ميكرولتر) في 4 °C (PHP. المتغيرات B بحد أقصى 3 أشهر) أو القسمة إلى 50 ميكرولتر من القسمة وتخزينها عند -80 درجة مئوية على المدى الطويل.
      ملاحظة: PHP. متغيرات قفيصة B حساسة للتجميد / الذوبان ، لذلك يجب تجنب ذلك.
    17. قم بإجراء المعايرة بالتحليل الحجمي كما هو موضح في البروتوكولالسابق 10.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

النتائج

تستخدم معظم المختبرات الأكاديمية خلايا HEK293T الملتصقة لإنتاج AAV 8,9. في حين أن هذا يعمل بشكل جيد نسبيا عندما تكون هناك حاجة إلى كميات صغيرة من AAV للحقن المباشر ، هناك حاجة إلى عيار أعلى 100 مرة (الحد الأدنى 1 ×10 11 GC / الماوس) لتحقيق نقل مماثل مع قفيصات جهازية م?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

الإدارة الجهازية ل AAV هي أداة قوية لنقل الجينات إلى الجهاز العصبي المركزي. ومع ذلك ، فإن إنتاج AAV هو عملية مكلفة وشاقة. باستخدام خلايا التعليق ، يتم تقليل العمالة والبلاستيك مقارنة بالثقافة الملتصقة HEK293T على ألواح 15 سم2 . علاوة على ذلك ، فإن الأنابيب المخروطية المنفذة هنا سهلة التعامل ?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

تم تقديم عينة مجانية من TransIT بواسطة Mirus للاختبار الأولي ، وبعد ذلك تم شراء الكاشف لمزيد من الاستخدام. ليس لدى المؤلفين مصالح مالية متنافسة أخرى للإبلاغ عنها.

Acknowledgements

تم دعم هذا العمل بمنحة من صندوق أبحاث الأكاديمية الملكية الهولندية للفنون والعلوم (KNAW) ومنحة من Start2Cure (0-TI-01). نشكر ليشا كوب على مساهمتها ونصائحها في إعداد البروتوكول. تم إنشاء الأرقام باستخدام Biorender.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
39 mL, Quick-Seal Round-Top Polypropylene Tube, 25 x 89 mm - 50PkBeckman Coulter342414
Adapter 600 mL conical tubes, for rotor S-4x1000, eppendorf5920701002
Adapter Plate fits 16 bioreactors of 600 mlInfors HT/ TPP587633
Aerosol-tight caps, for 750 mL round bucketseppendorf5820747005
Centrifuge 5920 R G, 230 V, 50-60 Hz, incl. rotor S-4x1000, round buckets and adapter 15 mL/50 mL conical tubeseppendorf5948000315
Distilled WaterGibco15230147
DNase I recombinant, RNase-freeRoche4716728001
DNase I recombinant, RNase-freeRoche4716728001
DPBS, calcium, magnesiumGibco14040091
DPBS, no calcium, no magnesiumGibco14190144
Fisherbrand Disposable PES Filter Units 0,2FisherFB12566504
Fisherbrand Disposable PES Filter Units 0,45FisherFB12566505
Holder for 50 ml culture tubes also fits falcon tubeInfors HT/ TPP31362
Holder for 600 ml cell culture tubeInfors HT/ TPP66129
Incubator Minitron 50 mmInfors HT500043
LV-MAX Production MediumGibcoA3583401
N-Tray UniversalInfors HT/ TPP31321
OptiPrep - IodixanolSerumwerk bernburg1893
PEI MAX - Transfection Grade Linear Polyethylenimine Hydrochloride (MW 40,000)Poly-sciences24765-100
Phenol red solution Sigma-Aldrich72420100
Poly(ethylene glycol) 8000Sigma-Aldrich89510
TransIT-VirusGENMirusMir 6706
Trypan Blue Solution, 0.4%Gibco5250061
TubeSpin Bioreactors-50mlTTP87050
TubeSpin Bioreactors-600mlTTP87600
Viral Production CellsGibcoA35347
Vivaspin 20 MWCO 100 000Cytvia28932363

References

  1. Zhou, K., Han, J., Wang, Y., Zhang, Y., Zhu, C. Routes of administration for adeno-associated viruses carrying gene therapies for brain diseases. Front Mol Neurosci. 15, 988914(2022).
  2. Pietersz, K. L., et al. PhP.B Enhanced adeno-associated virus mediated-expression following systemic delivery or direct brain administration. Front Bioeng Biotechnol. 9, 679483(2021).
  3. Zhang, H., et al. Several rAAV vectors efficiently cross the blood–brain barrier and transduce neurons and astrocytes in the neonatal mouse central nervous system. MolTher. 19 (8), 1440-1448 (2011).
  4. Deverman, B. E., et al. Cre-dependent selection yields AAV variants for widespread gene transfer to the adult brain. Nat Biotechnol. 34 (2), 204-209 (2016).
  5. Chan, K. Y., et al. Engineered AAVs for efficient noninvasive gene delivery to the central and peripheral nervous systems. Nat Neurosci. 20, 1172-1179 (2017).
  6. Goertsen, D., et al. AAV capsid variants with brain-wide transgene expression and decreased liver targeting after intravenous delivery in mouse and marmoset. Nat. Neurosci. 25 (1), 106-115 (2022).
  7. Foust, K. D., et al. Intravascular AAV9 preferentially targets neonatal neurons and adult astrocytes. Nat Biotechnol. 27 (1), 59-65 (2008).
  8. Challis, R. C., et al. Systemic AAV vectors for widespread and targeted gene delivery in rodents. Nat Protoc. 14 (2), 379-414 (2019).
  9. Fripont, S., Marneffe, C., Marino, M., Rincon, M. Y., Production Holt, M. G. purification, and quality control for adeno-associated virus-based vectors. J Vis Exp. (143), e58960(2019).
  10. Fagoe, N. D., Eggers, R., Verhaagen, J., Mason, M. R. J. A compact dual promoter adeno-associated viral vector for efficient delivery of two genes to dorsal root ganglion neurons. Gene Thr. 21 (3), 242-252 (2014).
  11. Verhaagen, J., et al. Retinal gene therapy, methods and protocols. Meth Mol Biol. 1715, 3-17 (2018).
  12. Nasse, J. S., et al. Addgene AAV data hub: A platform for sharing AAV experimental data. Nat Meth. 20 (9), 1271-1272 (2023).
  13. Grieger, J. C., Soltys, S. M., Samulski, R. J. Production of recombinant adeno-associated virus vectors using suspension HEK293 cells and continuous harvest of vector from the culture media for GMP FIX and FLT1 clinical vector. Mol Ther. 24 (2), 287-297 (2016).
  14. Blessing, D., Déglon, N., Schneider, B. L. Recombinant protein expression in mammalian cells, methods and protocols. Meth Mol Biol. 1850, 259-274 (2018).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

206

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved