JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

يتم تقديم بروتوكول مبسط لإنشاء نموذج التئام جروح الحروق في الفئران باستخدام جهاز تسخين رقمي. تسهل المواقع التجريبية الشبيهة برقعة الشطرنج التي تم إنشاؤها على الجلد مزيدا من التحليل الوظيفي لمقايسة التئام الجروح.

Abstract

تعد إصابات الحروق الشديدة من بين أكثر الحالات المؤلمة والمنهكة جسديا ، حيث تؤثر على كل جهاز أعضاء تقريبا وتؤدي إلى مراضة ووفيات كبيرة. نظرا لتعقيدها وتورط أعضاء متعددة ، تم إنشاء نماذج حيوانية مختلفة لتكرار جوانب مختلفة من إصابة الحروق. تختلف الطرق المستخدمة لإنتاج الأسطح المحترقة بين النماذج الحيوانية التجريبية. تصف هذه الدراسة نموذجا بسيطا وفعالا من حيث التكلفة وسهل الاستخدام لعمل حروق متسقة كاملة السماكة باستخدام جهاز تسخين رقمي. تم تطبيق طرف هذا الجهاز على ظهر الفئران لمدة 10 ثوان عند 97 درجة مئوية لإنشاء حرق يشبه رقعة الشطرنج وفحص التئام الجروح تحت علاج ضمادة تجريبية. تم جمع عينات الجلد للتحليل النسيجي ، بما في ذلك تلطيخ الهيماتوكسيلين والإيوسين (H & E) وتلوين ماسون. تم تقييم التئام الجروح من خلال تحليل منطقة الجرح والفحص المجهري للتسلل الالتهابي وإعادة الظهارة وتكوين الأنسجة الحبيبية. يمكن أن يكون نموذج إصابة حروق الفئران بمثابة أداة أساسية في دراسة الفيزيولوجيا المرضية للإصابات الحرارية وتقييم التدخلات العلاجية.

Introduction

تعتبر الحروق من الإصابات الخطيرة للجلد ، والتي تسببها التعرض للحرارة والكهرباء والمواد الكيميائية والتعرضللإشعاع 1،2. يمكن تصنيفها إلى أربع درجات حسب عمق الإصابة ، بدءا من البشرة إلى السماكة الكاملة للجلد ، وحتى العضلات والعظام. يمكن أن تؤدي الحروق الصغيرة إلى تكوين ندبات وتزيد من خطر الإصابة بالعدوى. لا تسبب مساحة كبيرة من إصابات الحروق أضرارا موضعية فحسب ، بل تحفز أيضا اضطرابات القلب والكلى والأعضاء أو الأنظمة الأخرى في الجسم من خلال الالتهابات الشديدة والطويلة الأمد والاستجابات المناعية ، مما يؤدي إلى عواقب جهازية خطيرة وارتفاع معدلاتالمراضة 3. يرافق معظم الناجين من إصابات الحروق إعاقات جسدية طويلة الأمد وضيق عاطفي وانخفاض نوعيةالحياة 4،5. لذلك ، من المهم دراسة العملية المرضية للحروق وآليات تجديد الأنسجة المحروقة.

تشارك في الاستجابات المناعية ، وتجديد الأنسجة ، والتوازن المنهجي ، لم تستطع الدراسات المختبرية التحقيق بشكل شامل في العملية المرضية لالتئام جروح الحروق. وهكذا ، على مدى العقدين الماضيين ، من أجل استكشاف التدخلات العلاجية المحتملة ، تم تطوير نماذج حيوانية مختلفة لشفاء جروح الحروق لتكرار السمات المختلفة لإصابة الحروق6،7. عادة ما تنتج جروح الحروق على السطح الظهري للخنازير والجرذان والفئران والأرانب الأخرى بعد إزالة الشعر. يمكن أن يستمر وقت الاحتراق لمدة 3 ثوان إلى 30 ثانية لتشكيل ضرر حراري جزئي إلى كامل السماكة مع نطاق من 5٪ إلى 30٪ من إجمالي مساحة سطح الجسم (TBSA) 8. لا توجد حاليا نماذج موحدة لهذه الأساليب في أبحاث الحروق بسبب التباين الكبير في التقنيات المستخدمة. تختلف الطرق المستخدمة لإنتاج الأسطح المحترقة بين النماذج الحيوانية التجريبية ، بما في ذلك لهب الغاز9 ، وحمام الإيثانول المحترق10 ، واللوح / القضيب المعدني المفرد المسخنمسبقا 11،12 ، والماء المغلي أو الساخن13،14. ومع ذلك ، فإن تقنية إحداث الحروق وعمق الحروق الناتج غالبا ما تكون غير متسقة وسيئة الوصف في الدراسات السابقة ، وهو أمر بالغ الأهمية في تحديد شدة الحرق وطريقة علاج الحروق.

تهدف هذه الدراسة إلى تطوير نموذج حيواني بسيط وفعال من حيث التكلفة وسهل الاستخدام لخلق حروق متسقة كاملة السماكة في سيناريوهات سريرية محاكاة. في هذا البروتوكول ، استخدمنا جهاز تسخين رقمي مناسب للتحكم في عمق الحرق عن طريق ضبط درجة الحرارة المطبقة على الجلد. يمكن تبديل طرف هذا الجهاز إلى أحجام مختلفة لإحداث حروق حرارية بنطاقات متفاوتة من TBSA. يسمح ذلك بإنشاء جرح حروق يشبه رقعة الشطرنج على ظهر الفأر ، مما يتيح مقارنة العديد من العلاجات التجريبية والعلاجات الضابطة داخل نفس. لاحظنا وسجلنا عملية إغلاق الجرح. تم حصاد عينات الجلد للتقييم النسيجي (تلطيخ الهيماتوكسيلين والإيوسين (H & E) وتلوين ماسون ثلاثي الألوان) في مراحل مختلفة من التئام الجروح. يقلل هذا النهج من عدد المستخدمة في التجربة ، وبالتالي يقلل من التكاليف الاقتصادية مع كونه أكثر توافقا مع أخلاقيات. ستزود هذه الدراسة الباحثين بالأدوات الأساسية لتسهيل تطوير علاجات جديدة لإصابات الحروق والكشف عن الآليات الفيزيولوجية المرضية لالتئام جروح الحروق.

Protocol

تمت مراجعة جميع الإجراءات الحيوانية في هذه الدراسة والموافقة عليها من قبل اللجنة الأخلاقية لكلية غرب الصين لطب الأسنان بجامعة سيتشوان (WCHSIRB-D-2024-499). تم استخدام أربعة وعشرين فأرا C57BL / 6 يبلغ من العمر ثمانية أسابيع (أنثى ، وزن الجسم 25-30 جم) في هذه الدراسة. تفاصيل الكواشف والمعدات المستخدمة مدرجة في جدول المواد.

1. تحضير المعدات والفأر قبل إصابة الحروق

  1. احصل على ووضعها في أقفاص لمدة 7 أيام عند وصولها للسماح لها بالتأقلم مع البيئة.
  2. تعقيم منطقة العمل عن طريق الرش والمسح بنسبة 70٪ من الإيثانول (v / v). قم بتغطية طاولة العمليات بضمادات ماصة جراحية معقمة.
  3. اضبط درجة حرارة جهاز التسخين الرقمي على 97 درجة مئوية. يتكون جهاز التسخين من ثلاثة أجزاء (الشكل 1).
    ملاحظة: يمكن ضبط درجة الحرارة من 50-450 درجة مئوية من خلال وحدة التحكم في درجة الحرارة (الشكل 1 أ). يتم استخدام قاعدة الحامل لوضع الطرف (الشكل 1 ب) ، والذي يمكن تفكيكه (الشكل 1 ج) لاستبدال أحجام الأدوات المختلفة. تطهير الطرف باليودوفور أو الكحول.
  4. قم بتخدير الفأر باستخدام 5٪ من الأيزوفلوران في 100٪ أكسجين في غرفة الحث لمدة 3 دقائق (معدل التدفق: 4 لتر / دقيقة) حتى يتباطأ التنفس. تقييم عمق التخدير باستخدام اختبار قرصة إصبع القدم.
    ملاحظة: قد يؤدي استنشاق الأيزوفلوران إلى النعاس وإلحاق الضرر بنظام القلب والأوعية الدموية. من الضروري ارتداء معدات واقية والتعامل معها داخل غطاء الدخان في منطقة جيدة التهوية.
  5. بمجرد تخدير الفأر بعمق ، انقله إلى وسادة ساخنة في وضع الانبطاح للحفاظ على الدفء ومنع انخفاض حرارة الجسم أثناء التعافي من التخدير. قلل الأيزوفلوران إلى 1. 5٪ أكسجين للصيانة عبر مخروط الأنف.
  6. ضع جل التشحيم على كلتا عيني الفأر بقطعة قطن لمنع جفاف القرنية.

2. إحداث إصابة حروق كاملة السماكة

ملاحظة: تظهر العملية العامة لتحريض الحرق وتحليله في الشكل 2.

  1. احلق جلد الفأر باستخدام ماكينة حلاقة كهربائية على مساحة يبلغ طولها حوالي 5 سم وعرضها 4 سم من الرقبة إلى الذيل. اعمل بلطف لتجنب إصابة الجلد عند الحلاقة (الشكل 3 ج).
  2. استخدمي قضيبا قطنيا لوضع كريم مزيل الشعر على منطقة الجلد المحلوقة لمدة 3 دقائق (الشكل 3 د).
    ملاحظة: تجنب وضع كريم إزالة الشعر على أجزاء أخرى من الماوس لمنع الحروق التي يصعب اكتشافها. تسبب الكريم في حدوث طفح جلدي إذا تم استخدامه لأكثر من 5 دقائق. تختلف المدة الدقيقة للفعالية المثلى بين المنتجات ويجب أن يحددها المشغل.
  3. امسحي الكريم باستخدام شاش رطب حتى لا يتم اكتشاف الكريم والشعر. تطهير المنطقة الجراحية بمقشر الكلورهيكسيدين متبوعا ب 70٪ إيثانول (v / v) ثلاث مرات لكل منهما. نظف وجفف المنطقة بشاش معقم.
  4. استخدم طرف ماصة معقم سعة 1 مل بقطر 9 مم (الشكل 3 أ) مغموس في حبر معقم لتحديد مواقع الجرح المرغوبة بدقة. يتميز الجلد الظهري للفأر بتضاريس غير متساوية. يعد تحديد منطقة الجرح بعيدا عن الحبل الشوكي للفئران أمرا ضروريا لضمان التكرار.
  5. قم بتغطية الجلد بستارة معقمة مشذبة مسبقا ، مع ترك منطقة الجراحة خالية (الشكل 3). ارتد قفازات مقاومة للحرارة وتحقق من درجة حرارة جهاز التسخين الرقمي. قبل وبعد تحريض الحرق ، قم بتعقيم طرف الجهاز بنسبة 70٪ من الإيثانول (v / v).
  6. ضع طرف جهاز التسخين على وسط مواقع الجرح الموجودة (97 درجة مئوية لمدة 10 ثوان) لإنشاء ستة جروح مستديرة بقطر 4 مم (الشكل 3 ب). الفاصل الزمني بين الحروق المجاورة هو 0.5-1 سم. تحديد عدد الحروق حسب التصميم التجريبي.
    ملاحظة: الحرق ناتج بشكل رئيسي عن التوصيل الحراري. لذلك ، ليس من الضروري ممارسة الضغط على القضيب ، أي إبقائه ملامسا للجلد عن طريق الجاذبية أثناء تحريض الحرق. كانت هناك ستة حروق للتصميم التجريبي. هذا هو الحد الأقصى لعدد جروح الحروق التي يمكن بناؤها وفقا للجهاز الذي استخدمناه ومساحة ظهر الفأر. يمكن تحقيق تكرارات متعددة من نفس المجموعة التجريبية على هذا الأساس.

3. رعاية وقياس ما بعد الحرق

  1. ضع الثلج على جرح الحروق لمدة 5 دقائق لتقليل الألم المحتمل لإدارة الألم (الشكل 3G).
  2. قم بإيقاف تشغيل الأيزوفلوران ، وإزالة مخروط الأنف بعد إصابة الحروق. انقل الماوس إلى وسادة تدفئة حتى يتحرك الماوس بشكل طبيعي (على سبيل المثال ، لا يجلس أو يرتجف).
  3. ضع كل فأر في قفص استرداد لمنعهم من خدش بعضهم البعض. قم بتليين بعض كريات الطعام عن طريق إضافة 5-10 قطرات من ماء الشرب إلى كل حبيبات وضعها على أرضية القفص لتسهيل التغذية.
    ملاحظة: تعقيم الأقفاص بالرش والمسح بنسبة 70٪ من الإيثانول (vol / vol). يجب استبدال الفراش بانتظام للحفاظ على دفء الفئران وامتصاص البول.
  4. يتم تطبيق البوبرينورفين (0.1 ملغ/كغ) تحت الجلد في مكان ذيلية مرتين يوميا لمدة 3 أيام، مع ضمان 8 ساعات على الأقل بين الحقن.
  5. نظف جميع الجروح بشاش معقم مبلل بالمحلول الملحي بعد 24 ساعة من تحريض الحروق. امسح الجلد بالشاش واستخدم كمية صغيرة من الجل المضاد للبكتيريا (TKH hydrogel) باستخدام حقنة لتغطية جرح الحروق12،14. كرر هذا الإجراء في الأيام 3 و 7 و 10 بعد ذلك.
  6. استخدم ضمادة شفافة ومسامية لتغطية الجروح. يجب أن يغطي حجم الضمادة حوالي 1 سم حول الجرح ويجب ألا يغطي المنطقة دون إزالة الشعر.
    ملاحظة: قم بتغيير ضمادة الجرح مرة واحدة على الأقل كل يومين. قد يؤدي الاستخدام المطول للضمادة دون استبدال إلى عدوى الجرح بتكوين القيح ، مما يؤدي إلى تأخر التئام الجروح.
  7. طوال فترة المتابعة ، قم بقياس الوزن كل 2-3 أيام. بشكل عام ، يجب التضحية بالفئران التي تفقد 15٪ -20٪ من وزن جسمها الأولي وإزالتها من التجربة.

4. جمع الجروح

  1. في 0 و 3 و 7 و 10 و 14 يوما ، ضع علامة على الجرح بطرف طرف ماصة معقمة سعة 1 مل ، وقم بتسجيله بكاميرا رقمية.
  2. القتل الرحيم للفئران عن طريق جرعة زائدة من التخدير وخلع عنق الرحم (باتباع البروتوكولات المعتمدة من المؤسسة).
    ملاحظة: كن حذرا أثناء خلع عنق الرحم لتجنب الشد المفرط ، مما قد يؤدي إلى تلف جروح الظهر.
  3. باستخدام المقص ، اعزل موقع الجرح والجلد المحيط به ، بما في ذلك العضلات الأساسية (1 سم × 1 سم). استعد لثلاث عينات على الأقل لكل مجموعة.
  4. ثبت عينات الجلد في 4٪ بارافورمالدهيد (PFA) لمدة 24 ساعة وتخزينها في 4 درجات مئوية. يجب أن يكون حجم التثبيت 30 ضعف حجم الأنسجة15،16.
    ملاحظة: PFA خطير. تأكد من العمل في منطقة جيدة التهوية واستخدام معدات الحماية المناسبة.

5. تقييم التئام الجروح

  1. اغسل مناديل الجرح مرتين باستخدام PBS وانشرها بورق ترشيح ، والذي يجب قصه بحجم مناسب (الشكل 2H). نظرا لوجود بعض المحتوى المخاطي داخل طبقة الأنسجة تحت الجلد ، فإنه يلتصق بسطح ورق الترشيح دون حركة أو تجعيد الأنسجة.
    1. ضع ورق الترشيح والعينة في كاسيت مناديل لتجفيف البارافين للحصول على عينات من الأنسجة الملساء نسبيا ثم قم بتضمين الأنسجة15،16. تخزين العينات في 4 درجات مئوية.
      ملاحظة: قم بتمديد الأنسجة قدر الإمكان وتجنب أي طي ، حيث ستصبح هذه الطيات دائمة بعد التثبيت.
  2. قم بقص العينات المضمنة في البارافين إلى أقسام بسماكة 5 ميكرومتر وشرائح البقع عبر H & E و Masson trichrome لتقييم مدى الأنسجة الحبيبية ، وتكوين الأوعية الدموية ، وترسب الكولاجين ، مما يوفر دليلا لتقييم المراحل المختلفة وتطور التئام الجروح17،18.
  3. التقط صورا لجميع العينات باستخدام مجهر بهدف 40x.
  4. استخدم برنامجا متوافقا لتحليل قسم الجلد الملطخ ، بما في ذلك البشرة والأدمة والأنسجة تحت الجلد وحالة العضلات.

النتائج

في هذا البروتوكول ، تم إنشاء جروح حروق تشبه رقعة الشطرنج بمدة حرق تبلغ 10 ثوان عند 97 درجة مئوية بواسطة جهاز التسخين الرقمي (الشكل 1). طرف الجهاز مصنوع من النحاس النقي المعروف بالتوصيل الحراري الممتاز وقدرات التسخين السريع. القبضة التي يحملها المجرب مصنوعة ?...

Discussion

بالنسبة لدراسات الحروق ، تركز النماذج المختبرية عادة على التأثيرات المثبطة للعوامل المضادة للميكروبات المحلية أو المضادات الحيوية على البكتيريا المرتبطة بالحروق ، مثل المكورات العنقودية الذهبية و Pseudomonas aeruginosa19 ، بالإضافة إلى تأثير المواد ?...

Disclosures

ويعلن أصحاب البلاغ عدم وجود تضارب في المصالح.

Acknowledgements

تم دعم هذا العمل من قبل برنامج سيتشوان للعلوم والتكنولوجيا (23ZYZYTS0120) ، ومنح مستشفى غرب الصين لطب الأسنان بجامعة سيتشوان (RD-03-202011) ، وبرنامج سيتشوان للعلوم والتكنولوجيا (2022NSFSC0614). تم إنشاء الأرقام باستخدام BioRender. كوم.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
1 mL pipette tipKIRGEN,USAKG1333Used to locate burn wound sites
3 M Tegaderm film3M,USA1624WCN 6 cm x 7 cmFor the wound cover after burn induction
4% paraformaldehyde(PFA)Biosharp,ChinaBL539AUsed to fix the skin samples
BuprenorphineSigma-Aldrich,USAPHR8955-50MGFor the pain management of the mice
C57BL/6 miceChengdu Dashuo experimental animal company,ChinanoneFor the establishment of burn model
Depilatory creamVeet,ChinaFor the dorsum hair removal of the mice
Digital Heating DeviceShenzhen Kapper Technology Company,ChinaNo.936DFor the burn induction of the mice
Electric shaverAUX,ChinaAUX-A5For the dorsum hair removal of the mice
Filter paperUsed to unfold of the skin samples
GraphPad softwareGraphPad prism 9.5.0For the analysis of burn wound area
Heat-resistant glovesUsed to hold the digital heating device tip
Hematoxylin and Eosin Stain kitSolarbio,ChinaG1120For the histological analysis of the slides
ImageJ softwareImageJ 1.54fFor the analysis of burn wound area
IsofluraneRWD,ChinaR510-22-10For the anesthesia of the mice
Masson's Trichrome Stain KitSolarbio,ChinaG1340For the histological analysis of the slides
MicroscopeOlympus,Japan VS200 ASWUsed to scan the H&E and Masson stained slides
Tissue cassetteCITOTEST LABWARE MANUFACTURING Co., LTD,China31050102WFor tissue paraffin dehydration and paraffin embedding

References

  1. Mofazzal Jahromi, M. A., et al. Nanomedicine and advanced technologies for burns: Preventing infection and facilitating wound healing. Adv Drug Deliv Rev. 123, 33-64 (2018).
  2. Burgess, M., Valdera, F., Varon, D., Kankuri, E., Nuutila, K. The immune and regenerative response to burn injury. Cells. 11 (19), 3073 (2022).
  3. Arbuthnot, M. K., Garcia, A. V. Early resuscitation and management of severe pediatric burns. Sem Pediatr Surg. 28 (1), 73-78 (2019).
  4. Smolle, C., et al. Recent trends in burn epidemiology worldwide: A systematic review. Burns. 43 (2), 249-257 (2017).
  5. Jeschke, M. G., et al. Burn injury. Nat Rev Dis Primers. 6, 11 (2020).
  6. Nomellini, V., Gomez, C. R., Gamelli, R. L., Kovacs, E. J. Aging and animal models of systemic insult: Trauma, burn, and sepsis. Shock. 31 (1), 11-20 (2009).
  7. Wong, V. W., Sorkin, M., Glotzbach, J. P., Longaker, M. T., Gurtner, G. C. Surgical approaches to create murine models of human wound healing. J Biomed Biotechnol. 2011, 969618 (2011).
  8. Abdullahi, A., Amini-Nik, S., Jeschke, M. G. Animal models in burn research. Cell Mol Life Sci. 71 (17), 3241-3255 (2014).
  9. Katakura, T., Yoshida, T., Kobayashi, M., Herndon, D. N., Suzuki, F. Immunological control of methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) infection in an immunodeficient murine model of thermal injuries. Clin Exp Immunol. 142 (3), 419-425 (2005).
  10. Dai, T., et al. Animal models of external traumatic wound infections. Virulence. 2 (4), 296-315 (2011).
  11. Tavares Pereira, D. D. S., Lima-Ribeiro, M. H. M., De Pontes-Filho, N. T., Carneiro-Leão, A. M. D. A., Correia, M. T. D. S. Development of animal model for studying deep second-degree thermal burns. J Biomed Biotechnol. 2012, 460841 (2012).
  12. Gong, Y., et al. Exudate absorbing and antimicrobial hydrogel integrated with multifunctional curcumin-loaded magnesium polyphenol network for facilitating burn wound healing. ACS Nano. 17 (22), 22355-22370 (2023).
  13. Dahiya, P. Burns as a model of sirs. Front Biosci. 14 (13), 4962-4967 (2009).
  14. Yergoz, F., et al. Heparin mimetic peptide nanofiber gel promotes regeneration of full-thickness burn injury. Biomaterials. 134, 117-127 (2017).
  15. Rao, G., et al. Rat burn model to study full-thickness cutaneous thermal burn and infection. J Vis Exp. 186, e64345 (2022).
  16. Yampolsky, M., Bachelet, I., Fuchs, Y. Reproducible strategy for excisional skin-wound-healing studies in mice. Nat Protoc. 19 (1), 184-206 (2024).
  17. Wang, C., et al. Engineering bioactive self-healing antibacterial exosomes hydrogel for promoting chronic diabetic wound healing and complete skin regeneration. Theranostics. 9 (1), 65-76 (2019).
  18. Papp, A., et al. The progression of burn depth in experimental burns: A histological and methodological study. Burns. 30 (7), 684-690 (2004).
  19. Barrett, J. P., et al. An in vitro study into the antimicrobial and cytotoxic effect of Acticoat dressings supplemented with chlorhexidine. Burns. 48 (4), 941-951 (2022).
  20. Lou, P., et al. Injectable self-assembling peptide nanofiber hydrogel as a bioactive 3D platform to promote chronic wound tissue regeneration. Acta Biomater. 135, 100-112 (2021).
  21. Gurtner, G. C., Werner, S., Barrandon, Y., Longaker, M. T. Wound repair and regeneration. Nature. 453 (7193), 314-321 (2008).
  22. Bielefeld, K. A., Amini-Nik, S., Alman, B. A. Cutaneous wound healing: Recruiting developmental pathways for regeneration. Cell Mol Life Sci. 70 (12), 2059-2081 (2013).
  23. Yildiz, S. C., Demir, C., Ayhanci, A. Examination of the effects of kefir on healing factors in a mice burn model infected with E. coli, S. aureus and P. aeruginosa using qRT-PCR. Burns. 49 (2), 425-431 (2023).
  24. Wang, Y., et al. Burn injury: Challenges and advances in burn wound healing, infection, pain and scarring. Adv Drug Deliv Rev. 123, 3-17 (2018).
  25. Chen, Y., et al. Research advances in smart responsive-hydrogel dressings with potential clinical diabetic wound healing properties. Mil Med Res. 10 (1), 37 (2023).
  26. Ito, M., et al. Stem cells in the hair follicle bulge contribute to wound repair but not to homeostasis of the epidermis. Nat Med. 11 (12), 1351-1354 (2005).
  27. Ito, M., et al. Wnt-dependent de novo hair follicle regeneration in adult mouse skin after wounding. Nature. 447 (7142), 316-320 (2007).
  28. Chen, K., et al. Pullulan-collagen hydrogel wound dressing promotes dermal remodeling and wound healing compared to commercially available collagen dressings. Wound Repair Regen. 30 (3), 397-408 (2022).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved