الكتاب قد لا شكر وعرفان لجعل.

جميع إجراءات أقرها "مجلس الكلية الطبية تونغجى" في الحيوان رعاية اللجنة هواتشونغ جامعة للعلوم والتكنولوجيا (ووهان، الصين). أعدت المخطوطة وفقا سيصلون (بحوث الحيوان: الإبلاغ عن التجارب في فيفو )6من المبادئ التوجيهية.
1-تربية
<ol><li>استخدام الفئران سبراغ داولي (SD) (n = 20، 10 ذكور، يزن ز 261 إلى 291، يعني عمره الأسبوع 8، = 272.85 ±9.07 ز) من جامعة العلوم والتكنولوجيا "مركز هواتشونغ الحيوانات التجريبية" والحفاظ على الفئران وفقا للدليل لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية التي نشرتها "لنا المعهد الوطني للصحة" (المعاهد الوطنية للصحة المنشور No.85-23، تنقيح عام 1996)</li>
	<li>منزل تحت الظروف القياسية مع حرية الوصول إلى الغذاء ومياه الشرب. الاحتفاظ بالفراش الفئران في أقفاص2 سم 530 مع حلق الخشب. بيت الفئران اثنين في كل قفص. إبقاء جميع الأقفاص مفتوحة إلى غرفة البيئة (لا الصغرى والعزل أو حبس التهوية)</li>
	<li>ضمان معالجة الموظفين المشاركين في البروتوكول التجريبي بانتظام على الفئران.</li>
	<li>الحفاظ على درجة حرارة الغرفة بين 21 درجة مئوية و 23 درجة مئوية. تعطي معدلات غذائي ملح عادي (0.3% كلوريد الصوديوم) طوال فترة الدراسة.</li>
</ol>2-الدم جمع الإجراءات
ملاحظة: يتكون نظام جمع الدم فراغ إبرة سهماً مزدوج [ز 22 (0.7 مم × 25 مم)]، حامل بلاستيك، وسلسلة من أنابيب فراغ (2 مل) مع سدادات مطاطية (الشكل 1).
<ol><li>وضع الفئران في حامل زجري بلاستيك وتغسل الذيل مع الماء الدافئ (20-30 درجة مئوية) لإزالة أي أوساخ مرئية أو البراز. بينما يشغل مساعد الذيل في وضع موسعة، يمسح الذيل مع الإيثانول 70%، وتنظيف مع الشاش لجعل هذا السياق واضحة.</li>
	<li>إدراج تلميح إبرة الفراشة ز 22 في أحد الأوردة الذيل الأفقي (حوالي 5 ملم) في وضع يمكنها من 2-3 سم تقريبا بعيداً عن غيض الذيل في زاوية من حوالي 20 درجة (الشكل 2). جمع الدم في أنبوب جمع الفراغ عن طريق إدراج نهاية إبرة الفراشة المطاط إلى أنبوب جمع الدم فراغ (الشكل 3). ملاحظة: حجم الدم جمع القصوى هو 1.2 مل7.</li>
	<li>وبعد جمع الدم، وإزالة الإبرة والضغط بلطف إلى موقع الثقب مع الشاش عن 15-30 ثانية لوقف تدفق الدم. ثم الإفراج عن الفئران من صاحب الزجري البلاستيك وتعود الفئران إلى قفصة.</li>
	<li>استخدام أنابيب تحتوي على يدتا تخثر لجمع بلازما الدم. برفق عكس الأنبوب عدة مرات مزيج تخثر في الدم ووضع العينات في الثلج رأسياً.</li>
	<li>الطرد المركزي أنابيب جمع عينة الدم في أجهزة الطرد مركزي مبردة في 2,000 س ز لمدة 10 دقائق لفصل البلازما أو المصل.</li>
	<li>استخراج البلازما/المصل، مع الحرص على عدم تعكير طبقات خلايا الدم الحمراء والبيضاء. جمع مصل الدم، استخدام أنابيب دون تخثر الدم. كلا النوعين من عينة يمكن استخدامها فورا، أو تخزينها في-80 درجة مئوية لمدة تصل إلى سنة واحدة. ملاحظة: يعرف أنه جمع الدم نجاح الحصول على الدم 1.2 مل كل مرة. تم تعيين وقت ثقب القصوى إلى ثلاث محاكمات، إذا كان حجم الدم الإجمالي أقل من 1.2 مل بعد الثقب الثالث، تم تعريفه كمجموعة دم فاشلة. يبدأ فترة أخذ العينات من ثقب الوريد ذيل إزالة إبرة فراشة بعد جمع الدم.</li>
	<li>
جمع الدم مرتين في غضون أسبوعين7.
	<ol>
<li>لاختبار والتحقق من جدوى هذا الأسلوب، تدريب طلاب الطب اثنين (للمبتدئين) ح 2 قبل تنفيذ هذا البروتوكول جمع الدم. استخدام الفئران العشرين وسحب الدم من الفئران 10 من الزملاء ذوي الخبرة 2 (المجموعة التجريبية) ومن الفئران 10 من طلاب الطب 2 (مجموعة المبتدئين).</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. التحليل الإحصائي
<ol><li>التعبير عن البيانات كقيمة متوسط ± انحراف المعياري، وتحليل الإحصاءات الإحصائي للعلوم الاجتماعية 17. تم اختيار قيمة α 0.05، ولذلك ف < 0.05 اعتبرت يعتد به إحصائيا.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Brown, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blood+collection+from+the+tail+of+a+rat.">Blood collection from the tail of a rat.</a> Lab Anim (NY). 35 (8), 24-25 (2006).</li><li>Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blood+sample+collection+in+small+laboratory+animals.">Blood sample collection in small laboratory animals.</a> J Pharmacol Pharmacother. 1 (2), 87-93 (2010).</li><li>Staszyk, C., Bohnet, W., Gasse, H., Hackbarth, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blood+vessels+of+the+rat+tail:+a+histological+re-examination+with+respect+to+blood+vessel+puncture+methods.">Blood vessels of the rat tail: a histological re-examination with respect to blood vessel puncture methods.</a> Lab Anim. 37 (2), 121-125 (2003).</li><li>Lee, G., Goosens, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sampling+blood+from+the+lateral+tail+vein+of+the+rat.">Sampling blood from the lateral tail vein of the rat.</a> J. Vis. Exp. (99), (2015).</li><li>. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> WHO Guidelines on Drawing Blood: Best Practices in Phlebotomy WHO Guidelines Approved by the Guidelines Review Committee. , (2010).</li><li>Kilkenny, C., Altman, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improving+bioscience+research+reporting:+ARRIVE-ing+at+a+solution.">Improving bioscience research reporting: ARRIVE-ing at a solution.</a> Lab Anim. 44 (4), 377-378 (2010).</li><li>Diehl, K. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+good+practice+guide+to+the+administration+of+substances+and+removal+of+blood,+including+routes+and+volumes.">A good practice guide to the administration of substances and removal of blood, including routes and volumes.</a> J Appl Toxicol. 21 (1), 15-23 (2001).</li><li>Eder, J. M., Cutter, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+device+for+collecting+cord+blood.">A new device for collecting cord blood.</a> Obstet Gynecol. 86 (5), 850-852 (1995).</li><li>Reynolds, B. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+a+new+device+for+blood+sampling+in+cats+with+a+vacuum+tube+collection+system+-+plasma+biochemistry,+haematology+and+practical+usage+assessment.">Comparison of a new device for blood sampling in cats with a vacuum tube collection system - plasma biochemistry, haematology and practical usage assessment.</a> J Feline Med Surg. 9 (5), 382-386 (2007).</li><li>Wiwanitkit, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+blood+specimens+from+plain+and+gel+vacuum+blood+collection+tubes.">Comparison of blood specimens from plain and gel vacuum blood collection tubes.</a> J Med Assoc Thai. 84 (5), 723-726 (2001).</li><li>Wollowitz, A., Bijur, P. E., Esses, D., John Gallagher, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+butterfly+needles+to+draw+blood+is+independently+associated+with+marked+reduction+in+hemolysis+compared+to+intravenous+catheter.">Use of butterfly needles to draw blood is independently associated with marked reduction in hemolysis compared to intravenous catheter.</a> Acad Emerg Med. 20 (11), 1151-1155 (2013).</li></ol>

الكتاب لا تمت بصلة إلى الكشف عن

ويصف هذا التقرير أسلوب جمع دم سهلة لتعلم في الفئران. وأظهرت النتائج التي توصلنا إليها أن هذا الأسلوب من الممكن جمع كمية كبيرة من الدم مرارا وتكرارا من الفئران. وعلاوة على ذلك، يمكن بسهولة يتقن هذا الأسلوب مع منحنى التعلم قصيرة الأجل. هذا الإجراء يمكن أن يؤديها في الفئران غير تخديره وإلا تسبب الإجهاد الحد الأدنى للحيوانات.
ويمكن جمع الدم من الفئران في أماكن مختلفة. وعلى المنوال الذيل موقع متفوقة ل أخذ عينات الدم4. بيد أنها ليست دائماً سهلة للحصول على ما يكفي من حجم الدم من الوريد ذيل تدفق الدم رقيقة ومنخفضة من الفئران. نظام جمع الدم فراغ عادة ما تستخدم لجمع عينات الدم من المرضى في الممارسة السريرية اليومية. قد استخدمت هذا النظام جمع الدم فراغ في المرضى وأبحاث الحيوانات لوقت طويل8،،من910. يتكون هذا النظام من أنبوب جمع الدم فراغ سيليكون الأنبوب الداخلي المغلفة بالجدار والفراشة إبرة. أنها كانت تقوم على مبدأ الضغط السلبي فراغ ويسمح الرسم المستمر للدم دون التعرض لخطر لجمع الدم، مما يقلل أيضا من فرصة ل التلوث وانحلال الدم11. حجم عينة الدم في القسطرة حوالي 0.3 مل. بعد سحب الإبرة من الوريد الذيل، سوف يتدفق الدم منعت في القسطرة إلى أنبوب جمع بسبب الفراغ. هذا الأسلوب ينطبق أيضا لجمع الدم من الفئران وزنها أقل من 100 غرام باستخدام إبرة الثقب أصغر.
هذا أسلوب جمع الدم على العديد من المزايا. يؤدي هذا الإجراء سوى الحد الأدنى من الضرر للفئران وجمع الدم يمكن القيام بها دون استخدام المسكنات، وهكذا يمكن تجنب تأثير إجهاد استجابة والمسكنات في عينة الدم. ملاحظاتنا أظهرت أن الفئران كانت هادئة في حامل الزجري البلاستيك أثناء الإجراء وكانت هناك أية وفيات خلال هذه التجارب. ثانيا، وكرر جمع الدم كل واحد أو يومين من الممكن، التي تمكن المتكررة لأخذ العينات من الدم مع وحدة تخزين كافية لأغراض بحثية مختلفة. وأخيراً، هذا الأسلوب سهلة التعلم وكان بسهولة يتقن من المبتدئين وبعد فترة قصيرة (ح 2) تعلم، كما يتبين من معدلات نجاح مماثل وأوقات ثقب بين المجموعات التجريبية والمبتدئين في هذا التقرير. في تقرير سابق، أظهر لي et al. أسلوب مماثل لأخذ عينات من الدم من الوريد الذيل الأفقي من الفئران4. أسلوبنا أبسط من ذلك عنها لي et al. 4 في هذا نحن مباشرة إدراج ثقب الإبرة في الوريد الذيل وعلى الطرف الآخر من الأنبوب متصل مباشرة بالانبوب لجمع الدم، دون استخدام حقنه إضافية والشفط اليدوي للدم، ودون الحاجة إلى ' الحليب جي ' السياق لتسهيل تدفق الدم. جمع الدم مع هذا النظام المغلق يقلل من فرصة تلوث الدم. استخدام حامل الزجري البلاستيك أيضا يقلل من الإجهاد للفئران ويسهل تثبيت الذيل.
اثنين الخطوات التالية حاسمة بالنسبة لنجاح تطبيق هذا الأسلوب. 1) تمديد الذيل وتجنب حركة الذيل؛ 2) برفق ثقب في الاتجاه بزاوية مقدارها 20 درجة تجنب ثقب عن طريق الوريد، وإبقاء ثقب الإبرة في الوريد.
وفي الختام، أسلوب جمع الدم الفراغ الذي اعتمد في الفئران آمنة ومجدية وسهلة للممارسة. يتيح هذا الأسلوب المتكرر لأخذ العينات من الدم مع حجم دم كافية التي تم الحصول عليها من الفئران غير تخديره.

أخذ عينات من الدم من الفئران مطلوب لمجموعة متنوعة من الدراسات التجريبية. وتشمل تقنيات لجمع الدم من الفئران ثقب القلب والضفيرة الرجعية-المداري، حبل الوريد، الوريد الصافن، والأوعية الدموية الذيل، والشريان السباتي، الشريان الاورطي البطني، والوريد الأجوف. تتطلب معظم التقنيات (ما عدا الوريد الصافن وثقب السفينة الدم الذيل) التخدير1،2. يتم ثقب الأوردة ذيل الفئران بصورة روتينية لأخذ عينات من الدم وحقن الأوعية الدموية. بعد علاج الذيل مع الماء الدافئ، الأوعية الدموية المتوسعة جيد ومناسب للتلاعب، حتى عندما تكون الفئران تخديره من3.
وعلى الرغم من تطوير تقنيات جديدة ومحسنة للحصول على عينات الدم في الحيوانات المختبرية الصغيرة2، ليس دائماً سهلة للحصول على ما يكفي من الدم عند أخذ العينات من الحيوانات الصغيرة. والسياق ذيل الفئران موقع متفوقة ل أخذ عينات الدم4. بيد أن على المنوال الذيل رقيقة، وبالتالي من الصعب في بعض الأحيان للثقب وسوف يستغرق وقتاً طويلاً للحصول على ما يكفي من الدم بسبب تدفق الدم منخفض عن. جمع الدم عن طريق نظام أنبوب استخراج بالمحجم أسلوب نموذجي في الممارسة السريرية اليومية. هذا نظام مغلق لجمع الدم يقلل من خطر التعرض المباشر للدم، وجعلت من الأسهل لأخذ عينات متعددة من فينيبونكتوري واحد5. ويصف هذا التقرير طريقة أخذ عينات دم الوريد ذيل بسيط في الفئران تخديره من عدم استخدام نظام أنبوب الاستخراج بالمحجم. هذا الأسلوب السهل لإتقان ويمكن استخدامها للحصول على كمية كبيرة من الدم مرارا وتكرارا في الفئران.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="634">
	<tbody>
		<tr height="71">
			<td height="71" style="height:71px;width:192px;">a double-pointed needle</td>
			<td style="width:244px;">Shanghai Kang Nong medical instrument co., LTD, China</td>
			<td style="width:120px;">22G&#160;</td>
			<td style="width:79px;">(0.7&#215;25mm)</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:192px;">vacuum tubes</td>
			<td style="width:244px;">Wuhan Zhi Yuan, medical science and technology co., LTD, China</td>
			<td style="width:120px;">2 ml</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:192px;">rat restraining holder&#160;</td>
			<td style="width:244px;">Shanghai Kang Nong medical instrument co., LTD, China</td>
			<td style="width:120px;">250g rat hoder model</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="140">
			<td height="140" style="height:140px;width:192px;">normal salt diet for rats</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td style="width:79px;">Rats received a normal salt diet (0.3% NaCl) throughout the study</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:192px;">SPSS software for statistical analysis</td>
			<td>SPSS Inc,&#160; Chicago; USA&#160;</td>
			<td style="width:120px;">Version 17.0.&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

repeated blood collection from tail vein of non-anesthetized rats with a vacuum blood collection system

ويمكن جمع الدم من الفئران في عدد من مواقع أخذ العينات. على سبيل المثال، السياق الذيل موقع متفوقة لأخذ عينات من الدم. ومع ذلك، السياق ذيل رقيقة حيث أنه من الصعب في بعض الأحيان للثقب. وبالإضافة إلى ذلك، السياق ذيل تدفق الدم منخفضة ويتطلب وقتاً طويلاً أخذ عينات للحصول على الدم كافية. ويصف هذا التقرير أسلوب أخذ عينات دم بسيطة، طريقة جمع الدم الفراغ، الذي يستخدم عادة للحصول على عينات دم من المرضى، وهنا تستخدم للفئران غير تخديره. نصيحة إبرة الفراشة ز 22 تم إدراجه في أحد شرايين الذيل الأفقي وجمعت حوالي 2-3 سم من طرف الذيل بزاوية مقدارها حوالي 20 درجة، والدم في أنبوب جمع الفراغ عن طريق إدراج نهاية إبرة الفراشة المطاط في التحالف أنابيب جمع الدم كووم. وتبين النتائج التجريبية الحالية أن معدل النجاح كان 95 في المائة في المجموعة التجريبية و 90% في مجموعة المبتدئين. أن معدل النجاح وأوقات ثقب متشابهة بين الفريقين. وكانت مدة أخذ العينات أقصر بكثير في المجموعة التجريبية مقارنة بالمجموعة المبتدئين. وفي الختام، هذا الأسلوب جمع الدم فراغ لأخذ عينات من الدم متسلسلة من هذا السياق ذيل من غير تخديره من الفئران ممكنة وسهلة لتعلم، التي قد تكون بمثابة إيجاد بديل موثوق للآخر تقليديا تستخدم تقنيات أخذ عينات الدم الفئران.

مدة أخذ العينات، وكتلة الجسم، وحجم جمع الدم بين الفريقين تم جمع الدم من الفئران 10 (5 ذكور) مرتين في غضون أسبوعين في كل مجموعة. كانت كتلة الجسم يعني في كلتا المجموعتين مماثلة (272.00 ±9.66 ز وز 273.70 ±8.87). أخذ عينات من مدة كان أقصر بكثير في المجموعة التجريبية مقارنة بالمجموعة المبتدئين (2.77 ±0.53 دقيقة مقابل ±0.83 3.28 دقيقة، ف < 0.05) (الجدول 1).
نجاح معدل وثقب مرات مجموعتين وكان معدل نجاح 95% (19/20) في المجموعة التجريبية و 90 في المائة (18/20) في مجموعة المبتدئين (p > 0.05). مرات ثقب لم تكن تختلف اختلافاً كبيرا بين المجموعتين (1.50 دقيقة ±0.61 مقابل 1.85 ±0.75 دقيقة, p > 0.05) (الجدول 2). تشير هذه النتائج إلى هذا الأسلوب من السهل على التعلم، ويمكن أن يتقن هذه التقنية بعد تدريب ح 2.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55852/55852fig1.jpg"> الشكل 1 : 2 مل جمع الدم فراغ أنبوب (يسار)؛ ز 22 الفراشة إبرة (في الوسط)؛ صاحب الزجري البلاستيك (يمين)- <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/55852/55852fig1large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55852/55852fig2.jpg"> الشكل 2 : تم إدراج تلميح إبرة الوريد الذيل الأفقي (حوالي 5 ملم) في الموضع 2-3 سم تقريبا بعيداً عن غيض الذيل في زاوية 20 درجة تقريبية. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/55852/55852fig2large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55852/55852fig3.jpg"> الشكل 3 : نجاح فينيبونكتوري. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/55852/55852fig3large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td colspan="5">المجموعة التجريبية</td>
			<td></td>
			<td colspan="5">مجموعة المبتدئين</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>نوع الجنس</td>
			<td>وزن الجسم (ز)</td>
			<td>حجم الدم التي تم جمعها (mL)</td>
			<td>أخذ العينات المدة (دقيقة)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>نوع الجنس</td>
			<td>وزن الجسم (ز)</td>
			<td>حجم الدم التي تم جمعها (mL)</td>
			<td>أخذ العينات المدة (دقيقة)</td>
		</tr>
<tr>
<td>هاء-1-1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>291</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.12</td>
			<td></td>
			<td>B1-1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>282</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.18</td>
		</tr>
<tr>
<td>هاء-1-2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>291</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.73</td>
			<td></td>
			<td>B1-2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>282</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.18</td>
		</tr>
<tr>
<td>هاء-2-1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>276</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.3</td>
			<td></td>
			<td>B2-1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>264</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.73</td>
		</tr>
<tr>
<td>هاء-2-2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>276</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.37</td>
			<td></td>
			<td>B2-2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>264</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.47</td>
		</tr>
<tr>
<td>هاء-3-1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>267</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.73</td>
			<td></td>
			<td>B3-1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>265</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.52</td>
		</tr>
<tr>
<td>هاء-3-2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>267</td>
			<td>1.0</td>
			<td>3.88</td>
			<td></td>
			<td>B3-2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>265</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.53</td>
		</tr>
<tr>
<td>هاء-4-1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>263</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.41</td>
			<td></td>
			<td>B4-1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>289</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.32</td>
		</tr>
<tr>
<td>هاء-4-2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>263</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.52</td>
			<td></td>
			<td>B4-2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>289</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.62</td>
		</tr>
<tr>
<td>E5-1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>265</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.61</td>
			<td></td>
			<td>B5-1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>277</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.48</td>
		</tr>
<tr>
<td>E5-2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>265</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.42</td>
			<td></td>
			<td>B5-2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>277</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.12</td>
		</tr>
<tr>
<td>E6-1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>285</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.33</td>
			<td></td>
			<td>(ب) 6-1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>274</td>
			<td>0.9</td>
			<td>4.87</td>
		</tr>
<tr>
<td>E6-2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>285</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.03</td>
			<td></td>
			<td>B6-2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>274</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.37</td>
		</tr>
<tr>
<td>E7 1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>271</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.82</td>
			<td></td>
			<td>B7-1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>268</td>
			<td>1.0</td>
			<td>3.93</td>
		</tr>
<tr>
<td>E7-2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>271</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.42</td>
			<td></td>
			<td>B7-2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>268</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.82</td>
		</tr>
<tr>
<td>E8-1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>268</td>
			<td>1.2</td>
			<td>1.93</td>
			<td></td>
			<td>B8-1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>262</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.07</td>
		</tr>
<tr>
<td>E8-2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>268</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.05</td>
			<td></td>
			<td>ب 8-2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>262</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.67</td>
		</tr>
<tr>
<td>E9-1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>273</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.52</td>
			<td></td>
			<td>B9-1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>281</td>
			<td>1.2</td>
			<td>4.38</td>
		</tr>
<tr>
<td>E9-2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>273</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.17</td>
			<td></td>
			<td>B9-2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>281</td>
			<td>1.2</td>
			<td>4.57</td>
		</tr>
<tr>
<td>E10-1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>261</td>
			<td>1.2</td>
			<td>1.82</td>
			<td></td>
			<td>B10-1</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>275</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.53</td>
		</tr>
<tr>
<td>E10-2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>261</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.25</td>
			<td></td>
			<td>B10 2</td>
			<td>أنثى</td>
			<td>275</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.28</td>
		</tr>
<tr>
<td>في المتوسط</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>2.77</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>3.28</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="11">أون-1: الرقم التسلسلي للفئران في المجموعة التجريبية لجمع الدم الأولى.</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="11">أون-2: الرقم التسلسلي للفئران في المجموعة التجريبية لجمع الدم الثاني.</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="11">Bn-1: الرقم التسلسلي للفئران في مجموعة المبتدئين لجمع الدم الأولى.</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="11">Bn-2: الرقم التسلسلي للفئران في مجموعة المبتدئين لجمع الدم الثاني.</td>
		</tr>
</tbody></table>الجدول 1: نتائج الدم التي تم جمعها في مجموعة المبتدئين ومجموعة تجريبية.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td></td>
			<td>أوقات جمع الدم</td>
			<td>مرات ثقب متوسط</td>
			<td>ثقب مرة واحدة</td>
			<td>ثقب مرتين</td>
			<td>ثقب ثلاث مرات</td>
			<td>فشل</td>
			<td>معدل النجاح</td>
		</tr>
<tr>
<td>المجموعة التجريبية</td>
			<td>20</td>
			<td>1.50 ±0.61</td>
			<td>11</td>
			<td>8</td>
			<td>0</td>
			<td>1</td>
			<td>95 في المائة</td>
		</tr>
<tr>
<td>مجموعة المبتدئين</td>
			<td>20</td>
			<td>1.85 ±0.75</td>
			<td>7</td>
			<td>9</td>
			<td>2</td>
			<td>2</td>
			<td>90%</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="6">ثقب مرة واحدة: عدد من الفئران بجمع الدم ناجحة بعد الثقب الأول</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="6">ثقب مرتين: عدد الفئران مع جمع الدم ناجحة بعد ثقب الثانية</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="6">ثقب ثلاث مرات: عدد الفئران مع جمع الدم ناجحة بعد الثقب الثالث</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="5">فشل: فشل عدد من الفئران بجمع الدم بعد الثقب الثالث</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
</tbody></table>الجدول 2: مقارنة بين أوقات ثقب ومعدلات النجاح للمجموعة التجريبية والمجموعة المبتدئين.

Watch this Scientific Journal Video about Repeated Blood Collection from Tail Vein of Non-Anesthetized Rats with a Vacuum Blood Collection System at JoVE.com

Repeated Blood Collection from Tail Vein of Non-Anesthetized Rats with a Vacuum Blood Collection System

هنا، نحن تصف طريقة أخذ عينات دم الوريد ذيل بسيط في الفئران تخديره من عدم استخدام نظام أنبوب استخراج بالمحجم. هذا الأسلوب يقلل من خطر التعرض المباشر للدم، ويبسط بأخذ عينات متعددة من فينيبونكتوري واحد.

وكرر جمع الدم من الوريد الذيل من الفئران غير تخديره مع نظام لجمع دم فراغ

Blood can be collected from rats in a number of sampling locations. For instance, the tail vein is a superior location for blood sampling. However, the ...

repeated-blood-collection-from-tail-vein-non-anesthetized-rats-with

Research

JoVE Journal

Medicine

35.4K Views.  Jianghan University. هنا، نحن تصف طريقة أخذ عينات دم الوريد ذيل بسيط في الفئران تخديره من عدم استخدام نظام أنبوب استخراج بالمحجم. هذا الأسلوب يقلل من خطر التعرض المباشر للدم، ويبسط بأخذ عينات متعددة من فينيبونكتوري واحد.

Video: Repeated Blood Collection from Tail Vein of Non-Anesthetized Rats with a Vacuum Blood Collection System

Collection Protocol for Human Pancreas

This dissection and sampling procedure was developed for the Network for Pancreatic Organ Donors with Diabetes (nPOD) program to standardize preparation of pancreas recovered from cadaveric organ donors. The pancreas is divided into 3 main regions (head, body, tail) followed by serial transverse sections throughout the medial to lateral axis. Alternating sections are used for fixed paraffin and fresh frozen blocks and remnant samples are minced for snap frozen sample preparations, either with or without RNAse inhibitors, for DNA, RNA, or protein isolation. The overall goal of the pancreas dissection procedure is to sample the entire pancreas while maintaining anatomical orientation.
Endocrine cell heterogeneity in terms of islet composition, size, and numbers is reported for human islets compared to rodent islets 1. The majority of human islets from the pancreas head, body and tail regions are composed of insulin-containing &beta;-cells followed by lower proportions of glucagon-containing &alpha;-cells and somatostatin-containing &delta;-cells. Pancreatic polypeptide-containing PP cells and ghrelin-containing epsilon cells are also present but in small numbers. In contrast, the uncinate region contains islets that are primarily composed of pancreatic polypeptide-containing PP cells 2. These regional islet variations arise from developmental differences. The pancreas develops from the ventral and dorsal pancreatic buds in the foregut and after rotation of the stomach and duodenum, the ventral lobe moves and fuses with the dorsal 3. The ventral lobe forms the posterior portion of the head including the uncinate process while the dorsal lobe gives rise to the rest of the organ. Regional pancreatic variation is also reported with the tail region having higher islet density compared to other regions and the dorsal lobe-derived components undergoing selective atrophy in type 1 diabetes4,5.
Additional organs and tissues are often recovered from the organ donors and include pancreatic lymph nodes, spleen and non-pancreatic lymph nodes. These samples are recovered with similar formats as for the pancreas with the addition of isolation of cryopreserved cells. When the proximal duodenum is included with the pancreas, duodenal mucosa may be collected for paraffin and frozen blocks and minced snap frozen preparations.

This video demonstrates a dissection procedure for processing human pancreas into multiple storage formats. Anatomical orientation is maintained throughout the pancreatic regions to allow definition of regional islet composition and density.

بروتوكول لجمع البنكرياس الإنسان

This dissection and sampling procedure was developed for the Network for Pancreatic Organ Donors with Diabetes (nPOD) program to standardize preparation ...

Dried Blood Spot Collection of Health Biomarkers to Maximize Participation in Population Studies

Biomarkers are directly-measured biological indicators of disease, health, exposures, or other biological information. In population and social sciences, biomarkers need to be easy to obtain, transport, and analyze. Dried Blood Spots meet this need, and can be collected in the field with high response rates. These elements are particularly important in longitudinal study designs including interventions where attrition is critical to avoid, and high response rates improve the interpretation of results. Dried Blood Spot sample collection is simple, quick, relatively painless, less invasive then venipuncture, and requires minimal field storage requirements (i.e.&#160;samples do not need to be immediately frozen and can be stored for a long period of time in a stable freezer environment before assay). The samples can be analyzed for a variety of different analytes, including cholesterol, C-reactive protein, glycosylated hemoglobin, numerous cytokines, and other analytes, as well as provide genetic material. DBS collection is depicted as employed in several recent studies.

Biomarkers are directly-measured biological indicators of disease or health. In population and social sciences, biomarkers need to be easy to obtain, transport, and analyze. Dried Blood Spot (DBS) collection meets this need, can be collected in the field with high response rates&#160;and analyzed for a variety of biomarkers.

المجففة الدم بقعة مجموعة من المؤشرات الحيوية الصحية لتحقيق أقصى قدر من المشاركة في الدراسات السكانية

Biomarkers are directly-measured biological indicators of disease, health, exposures, or other biological information. In population and social sciences, ...

Collection, Isolation, and Flow Cytometric Analysis of Human Endocervical Samples

Despite the public health importance of mucosal pathogens (including HIV), relatively little is known about mucosal immunity, particularly at the female genital tract (FGT). Because heterosexual transmission now represents the dominant mechanism of HIV transmission, and given the continual spread of sexually transmitted infections (STIs), it is critical to understand the interplay between host and pathogen at the genital mucosa. The substantial gaps in knowledge around FGT immunity are partially due to the difficulty in successfully collecting and processing mucosal samples. In order to facilitate studies with sufficient sample size, collection techniques must be minimally invasive and efficient. To this end, a protocol for the collection of cervical cytobrush samples and subsequent isolation of cervical mononuclear cells (CMC) has been optimized. Using ex vivo flow cytometry-based immunophenotyping, it is possible to accurately and reliably quantify CMC lymphocyte/monocyte population frequencies and phenotypes. This technique can be coupled with the collection of cervical-vaginal lavage (CVL), which contains soluble immune mediators including cytokines, chemokines and anti-proteases, all of which can be used to determine the anti- or pro-inflammatory environment in the vagina.

The use of cytobrush sampling to collect lymphocytes and monocytes from the endocervix is a minimally invasive technique that provides samples for analysis of female genital tract immunity. In this protocol, we describe the collection of cytobrush samples and immune cell isolation for flow cytometry assays.

جمع وعزل، وتحليل تدفق Cytometric العينات باطن عنق الرحم الإنسان

Despite the public health importance of mucosal pathogens (including HIV), relatively little is known about mucosal immunity, particularly at the female ...

Embolic Middle Cerebral Artery Occlusion (MCAO) for Ischemic Stroke with Homologous Blood Clots in Rats

Clinically, thrombolytic therapy with use of recombinant tissue plasminogen activator (tPA) remains the most effective treatment for acute ischemic stroke. However, the use of tPA is limited by its narrow therapeutic window and by increased risk of hemorrhagic transformation. There is an urgent need to develop suitable stroke models to study new thrombolytic agents and strategies for treatment of ischemic stroke. At present, two major types of ischemic stroke models have been developed in rats and mice: intraluminal suture MCAO and embolic MCAO. Although MCAO models via the intraluminal suture technique have been widely used in mechanism-driven stroke research, these suture models do not mimic the clinical situation and are not suitable for thrombolytic studies. Among these models, the embolic MCAO model closely mimics human ischemic stroke and is suitable for preclinical investigation of thrombolytic therapy. This embolic model was first developed in rats by Overgaard et al.1 in 1992 and further characterized by Zhang et al. in 19972. Although embolic MCAO has gained increasing attention, there are technical problems faced by many laboratories. To meet increasing needs for thrombolytic research, we present a highly reproducible model of embolic MCAO in the rat, which can develop a predictable infarct volume within the MCA territory. In brief, a modified PE-50 tube is gently advanced from the external carotid artery (ECA) into the lumen of the internal carotid artery (ICA) until the tip of the catheter reaches the origin of the MCA. Through the catheter, a single homologous blood clot is placed at the origin of the MCA. To identify the success of MCA occlusion, regional cerebral blood flow was monitored, neurological deficits and infarct volumes were measured. The techniques presented in this paper should help investigators to overcome technical problems for establishing this model for stroke research.

Embolic Middle Cerebral Artery Occlusion MCAO for Ischemic Stroke with Homologous Blood Clots in Rats

In this paper, we demonstrate a standard method for producing an embolic middle cerebral artery occlusion with homologous blood clots (fibrin-rich) in adult rat. This model closely mimics human ischemic stroke and is suitable for preclinical study of thrombolytic therapy for ischemic stroke.

صمي الأوسط انسداد الشريان الدماغي (MCAO) لالدماغية السكتة الدماغية مع مثلي تجلط الدم في الجرذان

Clinically, thrombolytic therapy with use of recombinant tissue plasminogen activator (tPA) remains the most effective treatment for acute ischemic ...

Routine Screening Method for Microparticles in Platelet Transfusions

Platelet inventory management based on screening microparticle content in platelet concentrates is a new quality improvement initiative for hospital blood banks. Cells fragment off microparticles (MP) when they are stressed. Blood and blood components may contain cellular fragments from a variety of cells, most notably from activated platelets. When performing their roles as innate immune cells and major players in coagulation and hemostasis, platelets change shape and generate microparticles. With dynamic light scattering (DLS)-based microparticle detection, it is possible to differentiate activated (high microparticle) from non-activated (low microparticle) platelets in transfusions, and optimize the use of this scarce blood product. Previous research suggests that providing non-activated platelets for prophylactic use in hematology-oncology patients could reduce their risk of becoming refractory and improve patient care. The goal of this screening method is to routinely differentiate activated from non-activated platelets. The method described here outlines the steps to be performed for routine platelet inventory management in a hospital blood bank: obtaining a sample from a platelet transfusion, loading the sample into the capillary for DLS measurement, performing the DLS test to identify microparticles, and using the reported microparticle content to identify activated platelets.

Platelet inventory management based on screening microparticle content in platelet concentrates is a new quality improvement initiative in hospital blood banks. The goal is to differentiate activated from non-activated platelets to optimize the use of platelets. Providing non-activated platelets to hematology-oncology patients might reduce their high risk to become refractory.

روتين فحص الطريقة المجهرية الدقيقة في عمليات نقل الدم الصفيحات

Platelet inventory management based on screening microparticle content in platelet concentrates is a new quality improvement initiative for hospital blood ...

Subclavian Vein Puncture As an Alternative Method of Blood Sample Collection in Rats

Blood collection with enough blood volume is essential in animal experiments. Blood collection from the tail vein of rats is popular and less stressful compared to other more aggressive methods such as retro-orbital plexus sample collection. However, this blood collection method is sometimes limited by an unsatisfactory success rate. Here, we introduce a method for blood collection through the subclavian vein puncture. The subclavian vein is located just under the clavicle and this vein is large enough to fulfill the volume requirements of blood collection. Our results show that this method is safe and applicable for blood collection sampling with the required blood volume. Blood collection through the subclavian vein puncture could serve as an alternative blood collection method in case of failed tail vein blood sampling in rats.

Here, we present a protocol to collect blood samples from the rat subclavian vein.

ثقب الوريد Subclavian كطريقة بديلة لجمع عينات الدم في الفئران

Blood collection with enough blood volume is essential in animal experiments. Blood collection from the tail vein of rats is popular and less stressful ...

Simultaneous Electrocardiography Recording and Invasive Blood Pressure Measurement in Rats

For studies related to cardiovascular physiology or pathophysiology, blood pressure (BP) and electrocardiography are basic observational parameters. Research focusing on cardiovascular disease models, potential cardiovascular therapeutic targets or pharmaceutical agents requires assessment of systemic arterial pressure and heart rhythm changes. In situations where radio telemetry systems are not available or affordable, the technique of femoral artery cannulation is an alternative way to obtain intra-arterial pressure waveform recordings and systemic BP measurements. This technique is economical and can be performed with standard equipment in animal facilities. However, invasive arterial pressure recording requires cannulation of small arteries, which can be a challenging surgical skill. Here, we present step-by-step protocols for femoral artery cannulation procedures. Key procedures include the calibration of the data acquisition system, tissue dissection and femoral artery cannulation, and setup of the arterial cannulation system for pressure recording. Surface electrocardiography recording procedures are also included. We also present examples of BP recordings from normotensive and hypertensive rats. This protocol allows reliable direct recordings of systemic BP with simultaneous electrocardiography.

Here, we describe a setup for simultaneous recording of electrocardiography and intra-arterial blood pressure (BP) in experimental rats, which can be done with standard equipment in animal facilities and can be applied to physiological or pharmacological studies to investigate pathogenic or therapeutic mechanisms in cardiovascular medicine.

تسجيل كهربية متزامنة والدم الغازية الضغط القياس في الفئران

For studies related to cardiovascular physiology or pathophysiology, blood pressure (BP) and electrocardiography are basic observational parameters. ...

A New Best Practice for Validating Tail Vein Injections in Rat with Near-infrared-Labeled Agents

Intravenous (IV) administration of agents into the tail vein of rats can be both difficult and inconsistent. Optimizing tail vein injections is a key part of many experimental procedures where reagents need to be introduced directly into the bloodstream. Unwittingly, the injection can be subcutaneous, possibly altering the scientific outcomes. Utilizing a nanoemulsion-based biological probe with an incorporated near-infrared fluorescent (NIRF) dye, this method offers the capability of imaging a successful tail vein injection in vivo. With the use of a NIRF imager, images are taken before and after the injection of the agent. An acceptable IV injection is then qualitatively or quantitatively determined based on the intensity of the NIRF signal at the site of injection.

Here we present a method to validate tail vein injections in rats by utilizing near-infrared fluorescence imaging data from dyes incorporated into agents or biological probes. The tail is imaged before and after the injection, the fluorescent signal is quantified, and an assessment of the injection quality is made.

أفضل طريقة جديدة للتحقق من صحة ذيل حقن الوريد في الفئران مع وكلاء قرب الأشعة تحت الحمراء-المسمى

Intravenous (IV) administration of agents into the tail vein of rats can be both difficult and inconsistent. Optimizing tail vein injections is a key part ...

Blood Collection Through Subclavian Vein Puncture in Mice

The mouse is the foremost mammalian model for studying human disease and human health. However, blood sample collection from mice is challenging in research work. Tail blood collection is a popular method when a small amount of blood sample is needed. Orbital artery could be considered if a large amount of blood is needed but this blood collection method has ethical issues. Formerly, we demonstrated the feasibility and safety of blood sample collection through subclavian vein puncture in rats, and here we investigate whether this method could be used in mice. We report that this method is safe and practical for blood collection in mice. Blood collection through the subclavian vein puncture in mice can be a convenient method in daily research works.

Here, we present a protocol to take blood samples from the subclavian vein of mice.

جمع الدم من خلال ثقب الوريد تحت الترقوة في الفئران

The mouse is the foremost mammalian model for studying human disease and human health. However, blood sample collection from mice is challenging in ...

Simultaneous Flow Cytometric Characterization of Multiple Cell Types Retrieved from Mouse Brain/Spinal Cord Through Different Homogenization Methods

Recent advances in viral vector and nanomaterial sciences have opened the way for new cutting-edge approaches to investigate or manipulate the central nervous system (CNS). However, further optimization of these technologies would benefit from methods allowing rapid and streamline determination of the extent of CNS and cell-specific targeting upon administration of viral vectors or nanoparticles in the body. Here, we present a protocol that takes advantage of the high throughput and multiplexing capabilities of flow cytometry to allow a straightforward quantification of different cell subtypes isolated from mouse brain or spinal cord, namely microglia/macrophages, lymphocytes, astrocytes, oligodendrocytes, neurons and endothelial cells. We apply this approach to highlight critical differences between two tissue homogenization methods in terms of cell yield, viability and composition. This could instruct the user to choose the best method depending on the cell type(s) of interest and the specific application. This method is not suited for analysis of anatomical distribution, since the tissue is homogenized to generate a single-cell suspension. However, it allows to work with viable cells and it can be combined with cell-sorting, opening the way for several applications that could expand the repertoire of tools in the hands of the neuroscientist, ranging from establishment of primary cultures derived from pure cell populations, to gene-expression analyses and biochemical or functional assays on well-defined cell subtypes in the context of neurodegenerative diseases, upon pharmacological treatment or gene therapy.

We present a flow cytometry method to identify simultaneously different cell types retrieved from mouse brain or spinal cord. This method could be exploited to isolate or characterize pure cell populations in neurodegenerative diseases or to quantify the extent of cell targeting upon in vivo administration of viral vectors or nanoparticles.

توصيف التدفق الخلوي المتزامن لأنواع الخلايا المتعددة التي تم استردادها من الدماغ/الحبل الشوكي من خلال أساليب تجانس مختلفه

Recent advances in viral vector and nanomaterial sciences have opened the way for new cutting-edge approaches to investigate or manipulate the central ...