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Method Article
我们开发了一种定量的DNA结合,基于ELISA的测定法来测量与DNA的转录因子相互作用。高特异性的RUNX2蛋白与共识的DNA寡核苷酸识别和特异性单克隆抗体来实现。比色检测用酶偶联抗体底物反应的实时监测。
许多DNA结合测定法,如电泳迁移率变动分析(EMSA),化学发光测定法,染色质免疫沉淀(ChIP)为基础的检测,和多孔基测定法用于测量转录因子的活性。然而,这些测定是非定量,缺乏特异性,可能涉及使用放射性标记的寡核苷酸,并且可能并不适用于DNA结合的抑制剂的筛选。另一方面,用一个定量的DNA结合的酶联免疫吸附测定法(D-ELISA)测定中,我们展示了核蛋白质相互作用与DNA的使用依赖于特定的关联与存在于生物素共有DNA结合序列的RUNX2转录因子标记的寡核苷酸。细胞的制备,提取核蛋白,和双链寡核苷酸的设计进行说明。抗生物素蛋白包被的96孔板中是固定的碱性缓冲液,温育在核苷酸封闭缓冲液中的核蛋白质。傅杰仕由于板的彻底清洗,特定的一抗和二抗孵育,随后加入比色反应的辣根过氧化物酶底物和发展。停止反应模式或连续动力学监测被用来定量测量与DNA蛋白相互作用。我们讨论了相应的特异性控制,包括与非特异性IgG或无蛋白质或初级抗体治疗。该测定的申请中描述,包括其在药物筛选程序和代表正和负的结果进行了讨论。
DNA结合分析在测量转录因子与DNA相互作用的能力效用。检测DNA结合包括电泳迁移率变动分析(EMSA)依赖于放射性标记的寡核苷酸1或化学发光检测2。染色质immuneprecipitation(芯片)为基础的分析3以及测定使用96孔格式4也被描述。然而,EMSA是一个非定量测定要求使用放射性标记的寡核苷酸。当核的蛋白质相关联的特定核苷酸序列的启动子,结合复合体是滞后于聚丙烯酰胺凝胶和特定的转录因子可与抗体“超迁移”进行验证。我们已经开发出利用酶联免疫格式(D-ELISA),它能够测量与对应于所定义的启动子元件的DNA结合序列,RUNX2的相互作用的定量DNA结合测定法我ÑRUNX2靶基因。使用防RUNX2抗体提供了特异性的检测和缺乏放射性标记的从传统的凝胶迁移实验5分辨这个实验。检测结合复合体是可能的使用结合到辣根过氧化物酶(HRP),它的HRP底物四甲基联苯胺(TMB)转化成有色产物进行分光光度分析的二次抗体。本文报道的测定可以合并使用突变的DNA的寡核苷酸作为对照,并可以用于检测的DNA的竞争性或非竞争性抑制剂结合。新颖的抗肿瘤化合物的筛选,也可以用此试验。
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的时间被执行几个步骤前进,几个试剂制备和储存的过程之前:(1)细胞培养和蛋白质分离,(2)制备的寡核苷酸,(3)制备的96孔板,(4)核提取孵育过夜。程序要求,因为核蛋白质与DNA寡核苷酸孵育过夜2天。
1。缓冲液的制备
1.1核蛋白分离
1.2制备测定板的
1.3洗涤缓冲液和抗体稀释液
注:链霉亲和洗涤缓冲液是用于在添加之间洗涤板并以稀释初级和次级抗体。
1.4 DNA结合缓冲液
注意:这个缓冲区存放于-20℃。
2。细胞培养和核蛋白质分离
T“>注:编制,需要约3小时细胞的刺激将取决于实验中使用的每一个实验的细胞数量会有所不同,所有卷反映了一个典型的实验中使用3×10 7细胞/点调整量,以适应。在实验6中实际使用的细胞数目。注:此步骤有助于摆脱一些核膜蛋白和设立裂解步骤:低盐第一(重悬沉淀,涡旋),然后高盐(涡流)优化这一步骤。保持提取物置于冰上30分钟,在第一10分钟后涡旋。
注:预计产量:30×10 6 CELLS将产生5微克/微升蛋白120微升。 5×10 6个细胞将产生2.2微克/微升的蛋白质在40微升。
3。的双链寡核苷酸的制备
注:确定有三种RUNX2结合位点和单端标记生物素产生的最重复性的结果试点实验。
4。 96孔板准备
注意:不要用牛奶蛋白质的洗涤缓冲液。
注意:不要使用移液器吸头从板块中删除流体,因为这可能会刮抗生物素蛋白:生物素:从井DNA复合物。这样做对所有后续的洗涤步骤。
5。孵化与核提取物
注意:请不要用鲑鱼或鲱鱼精DNA的聚DI / DC阻断缓冲区。避免阻塞板与牛奶蛋白质。这两种封闭剂的导致高背景值。
6。另外一抗
注:一抗稀释液应新鲜配制 - 存储是不推荐。
7。此外二级抗体
注:二级抗体稀释液可以是申通快递红色,在4℃过夜,如果需要的第二天。
8。 HRP基质及产品开发
9。反应测量
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对D-ELISA法是高度特异性的针对指定的DNA结合蛋白,只要使用含有共识RUNX2结合位点(ACACCA)的三个拷贝的序列特异性双链寡核苷酸。第一抗体识别的蛋白因子也提高了特异性。二次抗体包含共价连接的辣根过氧化物酶(HRP),一个透明基底(四甲基联苯胺)转换为有色产物,便于检测( 图1)。出于这些原因,一些重要的背景控制需要被包括在每个测定板,以确保特定的DNA结合。这些...
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DNA结合测定法来测量的转录因子与DNA的相互作用的能力。检测DNA结合包括电泳迁移率(EMSA)1和染色质immuneprecipitation(芯片)为基础的分析3以及检测采用96孔格式4,如化学发光检测2。该EMSA是非定量和使用放射性标记(32 P)的寡核苷酸。这些孵育核蛋白质和结合复合体上分离的琼脂糖或聚丙烯酰胺凝胶。与此相反,定量的D-ELISA是能够测量对应于在RUNX2靶?...
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我们什么都没有透露。
技术援助和马里兰大学Greenebaum癌症中心转化核心设施,尤其是博士的仪器。瑞纳拉皮迪和MARIOLA Sadowska,表示诚挚的谢意。负责该实验的发展工作是由美国国立卫生研究院RO1CA108846,AHA格兰特在急救GRNT2130014,一个VA优异奖美联社报道,由马里兰州卷烟归还资金提供给马琳和斯图尔特大学(CRF)的部分资助Greenebaum癌症中心。
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
Poly dI/dC | GE Healthcare, Piscataway, NJ | US20539-5UN | 1 U ~50mg |
RUNX2 antibody | MBL International Corp., Woburn, MA | D130-3 | 1 mg/ml |
Fab-specific peroxidase conjugated antibody | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | A9917 | 7.1 mg/ml |
TMB Substrate (tetramethyl benzidine) | EXALPHA Biologicals, Shirley, MA | X1189S | 100 ml |
Sodium carbonate | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | 57995 | Plate-fixing |
Sulfuric Acid | VWR, West Chester, PA | BDH-39922-1 | Stop solution |
Multi-well plates | Greiner Bio-One, Basel, Switzerland | 655996 | Avidin-coated, black sides |
HALT | Thermo-Scientific/Pierce, Rockford, IL | 78440 | Protease and phosphatase inhibitors |
Chemicals | Various manufacturers | Laboratory grade | |
Table 1. Reagents | |||
Spectrophotometer: Biotrak II Visible plate reader | Amersham Biosciences | For use with stop reaction method | |
Spectrophotometer: Bio-Tek Synergy HT Multi-reaction microplate reader | Bio-Tek Instruments, Inc. | For use with continuous kinetic monitoring | |
Table 2. Equipment |
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