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摘要

海七鳃鳗失去变态在胆囊和胆管,类似于人类的胆道闭锁的过程。一种新的固定和澄清方法(CLARITY)进行了修改,使用可视化激光扫描共聚焦显微镜在整个胆道系统。这种方法提供了一个强大的工具来研究胆管变性。

摘要

胆道闭锁是婴儿期一种罕见的疾病,估计有1 15,000频率在美国东南部,但在东亚国家较为常见,与1台5000报频率。虽然知道关于胆道闭锁的管理,其发病机制仍不清楚。海七鳃鳗(Petromyzon马里努斯 )提供了一个独特的机会来审视胆管变性的机制和进展。海七鳃鳗发展经历三个不同的人生阶段:幼虫,寄生,和成人。在从幼虫寄生少年的过渡,海七鳃鳗经历蜕变与戏剧性的重组和重构的外部形态和内部器官。在肝脏中,整个胆道系统丢失,包括胆囊和胆管树。一个名为"清晰度"新开发的方法进行了修改,以澄清整个肝脏和结与变质海七鳃鳗肠道。该胆管变性过程是通过使用激光扫描共聚焦显微镜观察和海七鳃鳗变态过程中看出端倪。这种方法提供了一个强大的工具来研究胆道闭锁在一个独特的动物模型。

引言

海七鳃鳗通过三个不同的人生阶段发展1,2。幼虫海七鳃鳗(L)的花费大部分时间在洞穴作为底栖滤食性动物。在经历的外部形态和重组内脏3剧变7变质阶段,由此产生的少年(合资)输入期间,他们吸食血液和组织液从宿主鱼寄生阶段,增加体重的100倍以上。经过1.0〜1.5年在海洋或大湖主机喂鱼,大人在早春停止喂养和迁移到河流产卵,然后死亡1,2。

变态期间,海七鳃鳗肝脏失去胆囊和整个胆管树,进化的突变表型,模仿人类婴儿疾病胆道闭锁。婴儿胆道闭锁是一种罕见的小儿肝脏疾病严重的并发症4,5,6,7,8,9,10,但是胆道闭锁的发病机制和病因在很大程度上是未知4。出生后的两年内病人胆道闭锁死去,除非手术治疗(葛西程序)执行5。随后,这些患者需要丰富的临床管理及常肝移植6。胆道闭锁的发病机理许多理论被提出,如病毒感染,先天性畸形,自身免疫性疾病,并且毒性损伤。然而,每到胆道闭锁的发展所作的贡献仍未有定论7,8,9,10。

不像遭受病理胆道闭锁的婴儿,海七鳃鳗经受发育编程胆道闭锁没有广泛的坏死性炎症,纤维化或肝硬化10。在此过程中10,动物可能会受到短暂的胆汁淤积,但适应这种发展的条件通过从头合成和胆汁盐在发育胆道闭锁,除了已知的机制,如在肝11减少胆汁盐合成后肠的分泌。这在海七鳃鳗的发展过程提供了唯一的已知的机会检查胆道闭锁的进展。

一个名为"清晰度"新开发的方法,通过将完整的组织成一个光学透明的纳米多孔水凝胶12可实现高清晰度成像在复杂的哺乳动物神经系统。使用海七鳃鳗的肝脏和修改CLARITY协议,胆道病变的完好组织成像可以记录整个肝脏变态。

研究方案

1,溶液配制

  1. 使1升10倍的0.1M磷酸盐缓冲盐水(PBS,pH值为7.4):称取26.2克磷酸钠(一元),115克磷酸钠(二元),并87.66克NaCl等。溶于约800ml蒸馏水H 2 O,调节pH值,并把音量开到1升,用蒸馏水H 2 O
    1. 使1升0.1M磷酸缓冲盐水(pH 7.4):取100毫升10倍的PBS中,并加入900毫升蒸馏H 2 O。
    2. 使1升0.1M磷酸缓冲液(pH 7.4)中含0.1%的Triton X-100:取百毫升10倍的PBS中,加入1 ml曲通X-100,和使体积达1升,用蒸馏水H 2 O。
  2. 使1微升10x 0.1M磷酸盐缓冲液(PB,pH值为7.4):称取26.2克磷酸钠(一元)和115克磷酸钠(二元)。溶于约800ml蒸馏水H 2 O,调节pH值,并把音量开到1升,用蒸馏水H 2 O
    1. 使1升0.1M磷酸缓冲液(pH7.4):取100毫升10倍的PB,并添加900毫升蒸馏H 2 O
    2. 使1升0.1M磷酸缓冲液(pH7.4),0.1%的Triton X-100:取百毫升10倍的PB,加入1 ml曲通X-100,和使体积达1升,用蒸馏水H 2 O。
  3. 使400毫升水凝胶单体溶液(4%丙烯酰胺,0.25%双丙烯酰胺,4%的多聚甲醛,0.0075%过硫酸铵,在0.1M的PBS 0.0005%皂苷):称取0.3克过硫酸铵和0.2克皂甙。添加210毫升蒸馏水H 2 O的加入40ml 40%的丙烯酰胺,将10毫升2%双丙烯酰胺加入40ml 10倍的PBS(pH 7.4)中,加入100毫升16%的多聚甲醛,拌匀。
  4. 使4升清溶液(4%SDS在0.2M硼酸):称取49.464克硼酸和160g的SDS。溶于约3.5升蒸馏水H 2 O,调节pH值至8.5,用NaOH,并把音量开到4 L。
  5. 让1升80%的甘油溶液:测量800毫升甘油,加入200毫升蒸馏水H 2 O,拌匀。

2,组织准备

  1. 制备水凝胶的单体溶液和等份10毫升各15ml离心管中。
  2. 解剖整个组织,并在4℃下在水凝胶2天固定确保该水凝胶溶液是至少10倍的组织的体积。
  3. 使水凝胶固定的组织(在15ml离心管)到通风橱。
  4. 聚合水凝胶固定的组织,加入5μLTEMED,拌匀,让坐在通风柜在室温下放置2-3小时。
  5. 彻底去除多余的胶。注:额外的胶会阻碍染色在清算过程中和抗体的渗透。
  6. 孵育固定的组织在10毫升的培养箱摇床设定在70rpm和50℃下进行数日清溶液直至组织变得透明。改变结算解决方案,至少每天一次,并从组织改变结算解决方案时,去除多余的胶。
  7. 冲洗组织在10毫升0.1M的PB,0.1%的Triton X-100在70 R下午和37℃过夜。重复此步骤3次,并从该组织改变缓冲溶液时,除去过量的凝胶。
  8. 孵育在PB中的第一抗体溶液澄清的组织用0.1%的Triton X-100在70rpm和37℃下进行2天。注意:请足够的初级抗体溶液淹没整个组织。
  9. 漂洗在10毫升PB的组织用0.1%的Triton X-100,在70转和37℃培养过夜。重复此步骤3次,并从该组织改变缓冲溶液时,除去过量的凝胶。
  10. 执行在一个黑暗的房间或昏暗光线下面的步骤。盖上铝箔样品,以防止照片褪色。
  11. 孵育澄清组织与在PB中的荧光二抗溶液用0.1%的Triton X-100,并在70转和37℃下进行1天封闭血清。
  12. 漂洗在10毫升PB的组织用0.1%的Triton X-100,在70转和37℃培养过夜。重复此步骤3次,去除多余的凝胶f改变缓冲溶液时,ROM中的组织。
  13. 冲洗的组织在10毫升PBS中,在70转和37℃培养过夜。重复此步骤3次,并从该组织改变缓冲溶液时,除去过量的凝胶。
  14. 孵育澄清组织在80%甘油中,在70转和37℃培养过夜。
  15. 存储荧光染色的组织在4℃之前,激光共聚焦显微镜。

结果

发生于肝胆系统的几个重要发展事件海七鳃鳗变态过程。胆管和胆囊发生凋亡和退化( 图1)。与肝细胞标志物细胞角蛋白19(CK19,存在于两个胆管上皮细胞和肝细胞前和变态13之后),并使用共聚焦显微镜的抗凋亡BCL2基因标记物相结合的改性澄清法和染色法,在整个胆道系统沿Z轴(捕获图2)和3 -维结构被重建( 图3)。激光扫描共聚焦显微镜通过?...

讨论

这个协议是由一个称为"净"12新方法,该交联完整的组织与聚丙烯酰胺以形成纳米多孔水凝胶,然后除掉组织的细胞膜,以实现光学透明性及透气性高分子修饰。 "清晰度"允许远程投射和神经系统局部电路接线完好组织成像。这种新方法可用于变态过程中可视化整个胆道系统在海七鳃鳗肝脏。这是生物学中的挑战,获得高分辨率的信息和保持从一个复杂的系统,例如在整个胆道系统或使用?...

披露声明

作者什么都没有透露。

致谢

作者承认哈蒙德湾生物站,大湖科学中心,美国地质调查局的贡献。我们也感谢梅林达帧博士在中心高级显微镜在密歇根州立大学在激光扫描共聚焦显微镜她的技术支持。这项研究是由赠款从大湖区渔业委员会YWCD和WML的支持。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
40% acrylamide Bio-Rad161-0140
2% bis-acrylamide Bio-Rad161-0142
TEMEDBio-Rad161-0800
ammonium persulfate SigmaA3678-25G
boric acidSigmaB7901-1KG
saponin Sigma47036
sodium dodecyl sulfate SigmaL337-500G
sodium phosphate (monobasic)Sigma04269-1KG
sodium phosphate (dibasic)SigmaS5136-1KG
Triton X-100SigmaX100-500ML
glycerol SigmaG9012-500ML
16% paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences15710-S
NaOH pellets EMDSX0590-3
15 ml centrifuge tubesAny brand
dissecting tools Any brand

参考文献

  1. Applegate, V. C. Natural history of the sea lamprey (Petromyzon marinus) in Michigan. US Fish and Wildlife Service Special Science Report on Fishery Service. (55), (1950).
  2. Hardisty, M. W., Potter, I. C., Hardisty, M. W., Potter, I. C. The general biology of adult lampreys. The biology of lampreys. 1, 127-206 (1971).
  3. Youson, J. H., Potter, I. C. A description of the stages in the metamorphosis of the anadromous sea lamprey, Petromyzon marinus L. Can. J. Zool. 57, 1808-1817 (1979).
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  5. Kasai, M., Suzuki, H., Ohashi, E., Ohi, R., Chiba, T., Okamoto, A. Technique and results of operative management of biliary atresia. World J. Surg. 2, 571-580 (1978).
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  14. Youson, J. H., Ogilvie, D. R. Ultrastructural features of degeneration of the gallbladder during lamprey biliary atresia. Tissue and Cell. 22, 477-492 (1990).
  15. Morii, M., et al. Onset of apoptosis in the cystic duct during metamorphosis of a Japanese lamprey, Lethenteron reissneri. Anat. Rec. 293, 1155-1166 (2010).

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