JoVE Logo

登录

需要订阅 JoVE 才能查看此. 登录或开始免费试用。

本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

The present protocol describes a mouse microsurgery infusion technique, which effectively delivers substances directly into the brain via the internal carotid artery.

摘要

Animal models of central nervous system (CNS) diseases and, consequently, blood-brain barrier disruption diseases, require the delivery of exogenous substances into the brain. These exogenous substances may induce injurious impact or constitute therapeutic strategy. The most common delivery methods of exogenous substances into the brain are based on systemic deliveries, such as subcutaneous or intravenous routes. Although commonly used, these approaches have several limitations, including low delivery efficacy into the brain. In contrast, surgical methods that locally deliver substances into the CNS are more specific and prevent the uptake of the exogenous substances by other organs. Several surgical methods for CNS delivery are available; however, they tend to be very traumatic. Here, we describe a mouse infusion microsurgery technique, which effectively delivers substances into the brain via the internal carotid artery, with minimal trauma and no interference with normal CNS functionality.

引言

中枢神经系统中的体内模型(CNS)的疾病需要有效递送的外源物质,如药物,病原体,或外来体,进入大脑。因此,一个理想的递送方法应引起创伤小的动物,保护神经元网络的完整性,并在大脑1达到高的物质的浓度。

本地物质递送的若干外科手术方法已被描述,包括内护套,脑内,脑室内和注射或植入2,3,4,5。这些方法,但是,被认为是创伤至CNS,并且只允许感兴趣的物质的量低的施用。此外,已经提出,外源物质可以通过脑脊液6被快速移除,和当采用上述技术的低渗透至大脑软组织已经观察到7。全身递送方法,如口服,肺部,皮下,和静脉内途径,在动物模型中比较常用的,尽管它们在物质递送至CNS表现出低效力,由于由其他器官8,9摄取。因此,分娩这些路线需要提升的剂量给药物质,增加副作用和毒性10,11的风险。

这里,我们描述了小鼠输注显微技术,其有效地提供了物质直接进入通过内部颈动脉的大脑。除了靶向递送至CNS,该技术不绕过正常的生理障碍,因此是biologica高度相关的涉及治疗剂或病原体进入大脑的通路升进程。

研究方案

涉及以下协议的程序已被批准的迈阿密机构动物护理和使用委员会的大学(IACUC)。此外,所有的手续正在由协会为实验动物国际评估和认可委员会(AAALAC)认证的工厂进行。

1.小鼠外科手术的准备

  1. 麻醉小鼠用异氟烷与氧混合,用实验室麻醉系统。在在2升4-5%之间,氧流量设定使用异氟醚/ min的商用机上(见材料表)。动物转移到手术表面,在立体显微镜下,并用鼻锥维持麻醉( - 以2升/分钟2.5和氧气流中使用异氟烷设置为1.5)。
    1. 确保鼠标的呼吸率大约为1 - 2呼吸/秒,而没有喘气。此外,确保动物不会出现晶须刺激的反应和踏板řeflex(趾捏)。监控呼吸率和精力的手术过程中,至少每5分钟遵循特定的机构动物护理和使用委员会和兽医准则啮齿类动物麻醉监测。
  2. 应用以防止干燥使用无菌拭子上的每个眼用润滑剂的下降。推荐的抗炎和镇痛以减轻不适施用。
  3. 与动物躺在它的后面,保持用鼻锥麻醉。
  4. 经擦拭的面积与70%乙醇和洗必泰三次清洁动物的颈部。用剃刀(下文详述)刮胡子动物的手术区域。

2.解剖颈总动脉(CCA)

  1. 立体显微镜下完成整个显微操作。使用手术剪刀和镊子颈部执行浅正中切口,从胸骨上方低于T他颚(约3到4厘米)。
  2. 使用镊子小心分离脂肪和结缔组织,以暴露气管。
  3. 放置在鼠标的颈后枕头(圆形物体,约0.5厘米,直径),以延伸颈部,进一步暴露的区域。
  4. 单独使用一个组织牵开器或钩组织。
  5. 上气管的动物的左侧,小心tweeze相距结缔组织以露出左CCA。
  6. 使用镊子小心地取出所有的结缔组织,显露CCA分叉和外部和内部颈动脉的开始。

3. CCA的准备输液物质

  1. 将下颈外动脉尼龙线(约1厘米的每一个)的两段(ECA),使用镊子。
  2. 将尽可能在ECA的最高点的永久性结。
  3. 在最低点可能在ECA的,马上以上CCA分叉,地方一个可移动的结。相比上结这个结要宽松。
  4. 用血管夹关闭CCA,以尽可能低的点。
  5. 收用血管夹颈内动脉(ICA)。
  6. 采用显微弹簧剪刀执行在ECA(约2mm)的一小截,两节之间。

4. 通过 ICA物质输液

  1. 组装的输液系统。附上毛细管的6英寸(理想尺寸2.5毫米×1.2毫米),含有250微升的物质的结核菌素注射器要输注(药物,病原体,细胞外囊泡,等等),并轻轻插入毛细管尖端进入执行切口在步骤3.6。
  2. 继续,直到它到达分叉和剪辑关闭CCA之间的中点滑下毛细管。
  3. 阕较低ECA结。验证结宽松足以让毛细血管的流动性和拧紧,以防止leakinG。
  4. 从ICA删除片段。
  5. 轻轻施加压力的注射器活塞允许物质输注每秒大约10微升。

5.后输液过程

  1. 放置夹回到了ICA。
  2. 轻轻取下毛细管。
  3. 完全牵制下ECA结。
  4. 取下ICA和CCA剪辑。

6.切口关闭和术后护理

  1. 删除拉钩或组织挂钩和枕头。
  2. 用无菌生理盐水清洗缝合区。
  3. 关闭使用尼龙线/针和镊子的切口。
  4. 施用抗炎和镇痛,以减轻术后不适。
  5. 将动物笼放置在加热垫至少1小时,显示器恢复。

结果

这里所描述的小鼠输注显微外科技术是非常灵活,并已用于传递不同的物质直接进入脑,包括肿瘤细胞中的脑转移形成1,12是代表模型的交付。

这种技术也适用于评估在CNS不同病原体的病理方面。在HIV感染的小鼠模型,输液手术被用于直接注射的病毒颗粒进入CCA。我们发现,手术后...

讨论

这里所描述的输液显微已被证明是在提供各种生物特征外源物质进入中枢神经系统,以防止整个身体1,12不需要的传播非常成功。血 - 脑屏障的破坏为几种中枢神经系统有关的疾病的病理学特征;因此评估外源物质与血脑屏障的关系是非常重要和兴趣。

提出这种手术模型导致有限创伤给动物,并且具有非常低的死亡率

披露声明

The authors have nothing to disclose.

致谢

We would like to thank Dr. Lei Chen (Icahn School of Medicine at Mount Sinai, NY) who first established the use of this model in our laboratory, and to Dr. Gretchen Wolff (German Cancer Research Center, Heidelberg, Germany) for disseminating the technique in our laboratory. Supported in part by HL126559, DA039576, MH098891, MH63022, MH072567, DA027569, and NSC 2015/17/B/NZ7/02985.

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
Anesthesia instrumentVetequip901806
Surgical scissorsFine Science Tool14558-09
Surgical forceps straight tipFine Science Tool00108-11
Surgical forceps angled tipFine Science Tool00109-11
Spring scissorsFine Science Tool15000-08
Nylon sutureBraintree ScientificSUT-S 104
Capillary tubing (Micro-Renathane 0.010” x 0.005” per ft.) Braintree ScientificMRE01050
Closing sutureVWR95057-036
IsofluranePiramal
2,3,5-Triphenyltetrazolium chlorideFisherScientific50-121-8005

参考文献

  1. Chen, L., Swartz, K. R., Toborek, M. Vessel microport technique for applications in cerebrovascular research. J Neurosci Res. 87 (7), 1718-1727 (2009).
  2. Frisella, W. A., et al. Intracranial injection of recombinant adeno-associated virus improves cognitive function in a murine model of mucopolysaccharidosis type VII. Mol Ther. 3 (3), 351-358 (2001).
  3. Wei, L., Erinjeri, J. P., Rovainen, C. M., Woolsey, T. A. Collateral growth and angiogenesis around cortical stroke. Stroke. 32 (9), 2179-2184 (2001).
  4. Wu, G., et al. Targeted delivery of methotrexate to epidermal growth factor receptor-positive brain tumors by means of cetuximab (IMC-C225) dendrimer bioconjugates. Mol Cancer Ther. 5 (1), 52-59 (2006).
  5. Pignataro, G., Studer, F. E., Wilz, A., Simon, R. P., Boison, D. Neuroprotection in ischemic mouse brain induced by stem cell-derived brain implants. J Cereb Blood Flow Metab. 27 (5), 919-927 (2007).
  6. Sugiyama, Y., Kusuhara, H., Suzuki, H. Kinetic and biochemical analysis of carrier-mediated efflux of drugs through the blood-brain and blood-cerebrospinal fluid barriers: importance in the drug delivery to the brain. J Control Release. 62 (1-2), 179-186 (1999).
  7. Pardridge, W. M. Drug and gene delivery to the brain: the vascular route. Neuron. 36 (4), 555-558 (2002).
  8. Vantyghem, S. A., Postenka, C. O., Chambers, A. F. Estrous cycle influences organ-specific metastasis of B16F10 melanoma cells. Cancer Res. 63 (16), 4763-4765 (2003).
  9. Huang, R. Q., et al. Efficient gene delivery targeted to the brain using a transferrin-conjugated polyethyleneglycol-modified polyamidoamine dendrimer. FASEB J. 21 (4), 1117-1125 (2007).
  10. Liu, R., Martuza, R. L., Rabkin, S. D. Intracarotid delivery of oncolytic HSV vector G47Delta to metastatic breast cancer in the brain. Gene Ther. 12 (8), 647-654 (2005).
  11. Kumar, P., et al. Transvascular delivery of small interfering RNA to the central nervous system. Nature. 448 (7149), 39-43 (2007).
  12. Wrobel, J. K., Wolff, G., Xiao, R., Power, R. F., Toborek, M. Dietary Selenium Supplementation Modulates Growth of Brain Metastatic Tumors and Changes the Expression of Adhesion Molecules in Brain Microvessels. Biol Trace Elem Res. , (2015).

转载和许可

请求许可使用此 JoVE 文章的文本或图形

请求许可

探索更多文章

119

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

政策

使用条款

隐私

科研

教育

关于 JoVE

版权所属 © 2025 MyJoVE 公司版权所有,本公司不涉及任何医疗业务和医疗服务。