携带人多能干细胞球体的核壳微胶囊的微流体制造

摘要

本文介绍了使用同轴流聚焦装置封装人多能干细胞（hPSC）。我们证明，这种微流体封装技术能够有效地形成hPSC球体。

摘要

人类多能干细胞（hPSCs）的三维（3D）或球状培养物具有改善分化结果和可扩展性的好处。在本文中，我们描述了一种用于hPSC球体的稳健且可重复形成的策略，其中利用同轴流聚焦装置将hPSC卡入核壳微胶囊内。核心溶液含有hPSCs的单细胞悬浮液，通过掺入高分子量聚乙二醇（PEG）和密度梯度培养基而变得粘稠。壳流由PEG-4臂马来酰亚胺或PEG-4-Mal组成，并沿着核心流流流向两个连续的油结。液滴形成发生在第一个油结处，壳溶液包裹在核心周围。壳的化学交联发生在第二个油连接处，通过向这些液滴引入二硫醇交联剂（1，4-二硫代噻嗪醇或DTT）。交联剂 通过 点击化学与马来酰亚胺官能团反应，导致在微胶囊周围形成水凝胶壳。我们的封装技术以每秒10粒胶囊的速度生产400μm直径的胶囊。由此产生的胶囊具有水凝胶壳和水性核心，允许单个细胞迅速组装成聚集体并形成球状体。包封过程不会对hPSCs的生存能力产生不利影响，包封后3天观察到>95%的存活率。为了进行比较，包封在固体凝胶微粒（无水性核心）中的hPSCs在包封后3天未形成球状体，并且具有<50%的活力。包封后48 h内核壳微胶囊内hPSCs的球状体形成，球体直径与细胞接种密度成函数关系。总体而言，该协议中描述的微流体封装技术非常适合hPSCs封装和球体形成。

引言

由于这种培养形式^1，2，3提供了改进的多能性和分化潜力，因此对人多能干细胞（hPSCs）的^3D培养物有相当大的兴趣。hPSC通常通过生物反应器，微孔，水凝胶和聚合物支架^4，5，⁶形成球体或其他3D培养形式。封装为将单个hPSC组织成球体提供了另一种方法。一旦封装了hPSC球体，就可以轻松处理并转移到微量滴定板中，以进行分化，疾病建模或药物测试实验。将hPSC包裹在水凝胶层中还可以保护细胞免受剪切损伤，并允许以高搅拌速率在生物反应器中培养球体⁷。

我们的干细胞封装方法随着时间的推移而发展。首先，我们专注于固体水凝胶微粒，并展示了小鼠胚胎干细胞（mESCs）的成功封装和培养⁸。然而，值得注意的是，当包封在这种水凝胶微粒中时，人类胚胎干细胞（hESCs）具有低活力，可能是由于这些细胞在包封后更需要重新建立细胞 - 细胞接触。我们推断，具有水性核心的异质微胶囊可能更适合于依赖于细胞 - 细胞接触的快速重建的细胞的包封。用于制造水性核/水凝胶壳微胶囊的同轴流聚焦微流体装置的概念改编自He等人^，但原始方法中采用了藻酸盐，而是将基于PEG的水凝胶掺入壳中。我们首先证明了核壳微胶囊¹⁰ 中原代肝细胞的成功包封和球体形成，以及最近描述的hES和iPS细胞⁷的包封。如图 1A所示，胶囊在流动聚焦装置中制造，其中壳和核心流动流在喷射到油相之前从一侧到另一侧过渡到同轴流。核心流含有增加溶液粘度的细胞和添加剂（非反应性PEG MW 35kD和碘克沙醇 - 商业名称OptiPrep），而壳流含有反应性分子（PEG-4-Mal）。连续的同轴流被离散化为保留核壳结构的液滴。通过暴露于二硫醇交联剂（DTT）使核壳结构永久化，DTT 通过 点击化学与PEG-4-Mal反应，并形成薄（〜10μm）的水凝胶表皮或壳。在乳液破碎并且胶囊被转移到水相之后，PEG分子从核心扩散并被水分子取代。这导致水性核心和水凝胶壳微胶囊。

下面提供了有关如何制造微流体器件，如何制备细胞以及如何进行hPSC封装的分步说明。

研究方案

1. 设备制造

1. 使用CAD软件^10，11进行微囊化装置和解离装置^的设计。
2. 在硅晶圆上依次纺涂三层SU-8光刻胶（图2A），以获得具有所需高度的结构:60，100和150μm。
   注:顶部和底部模具的工艺相同。
   1. 用SU-8 2025负光刻胶以1，100 rpm的速度旋转涂覆干净的10厘米硅片，以产生第一个60μm层。在热板上在65°C下软烘烤3分钟和95°C烘烤10分钟后，通过将核心通道图案的设计文件上传到μPG 101 PC，使用无掩模对准器暴露模具。然后，在65°C下进行暴露后烘烤3分钟，在95°C下烘烤10分钟。
   2. 以 1，500 rpm 的速度旋转涂覆第二层 SU-8 2025 层 （40 μm），并通过上传壳体通道图案的相应 CAD 文件进行暴露。
      注意:软烘焙和曝光后烘焙与上一步类似。
   3. 以1，400 rpm的速度旋转涂覆第三层SU-8 2025层以达到50μm高度，并重复上述过程，但暴露油相的结构。
   4. 通过浸没在SU-8显影剂中，一步完成所有三层的模具，直到所有未暴露的光刻胶被去除。
   5. 将模具在160°C的热板上硬烤10分钟，以提高附着力并密封显影后可能出现的轻微裂缝。
   6. 将模具暴露在下一步中，以避免弹性体粘合，并将其置于15厘米的培养皿中直至使用。
3. 以相同的方式制备解离装置模具，如图 1D 和 图2B所述。如前面的步骤1.2.3所述，在硅晶圆上旋转涂覆一层SU-8光刻胶，以实现所需高度:50μm的结构。进行软烘烤和曝光后烘烤、显影和硬烘烤，与上一步类似。
   注意:一系列三角形柱子覆盖了整个腔室，柱子之间的间距随着腔室宽度向出口减小而减小。三角形柱每侧200μm，间距范围从400μm（入口处）到30μm（出口处）。
4. 使用聚二甲基硅氧烷（PDMS）通过软光刻制备模具。
   1. 在行星离心机中以 10:1 w/w 的比例混合 PDMS 弹性体基料和弹性体固化剂。将混合物倒入微囊化主模和解离母模上，形成3-4毫米的层。
      注意:50 克弹性体基料与 5 克固化剂的混合物足以覆盖厚度为 3 mm 的主模。
   2. 将含有模具的培养皿置于真空干燥器中15分钟，以对未固化的PDMS进行脱气。
   3. 将培养皿移至烤箱中，在80°C下烘烤至少60分钟。
   4. 从烤箱中取出母模，让它们冷却。使用精密刀，按照晶圆的形状小心地切割PDMS，并从母模中剥离PDMS件。
   5. 通过用手术刀修剪每个设备的边缘来切割PDMS板坯，然后在解离设备中打出入口/出口流体端口，并且仅在使用不锈钢针的顶部微流体设备中。用魔术胶带盖住设备，以避免污染。
      注:针规分别为 14 G 和 15 G，用于入口和出口端口。
   6. 对于粘合，在等离子体蚀刻机上用O₂ 等离子体处理顶部和底部PDMS片的图案侧2分钟。
   7. 直接在微通道（2 μL）中加入一层薄的蒸馏水分离层后，在立体镜下对齐两个PDMS部件。
   8. 将对齐的PDMS器件置于80°C的烘箱中过夜，以完成粘合并将PDMS恢复到其原始疏水状态。存储设备，直到进一步使用。
      注意:这导致同轴流动聚焦装置具有三种不同的高度，核心为120μm，壳体为200μm，油道为300μm。
   9. 为了在等离子体粘合后立即使用该装置，小心但牢固地将30μL疏水涂层溶液注入流体通道中，以实现疏水涂层。然后，立即将空气吹扫到通道中，直到在设备中未观察到疏水涂层溶液的残留物。
   10. 通过首先用O₂ 等离子体处理设备的图案侧和清洁的载玻片2分钟来粘合解离装置，然后组装它们以在80°C的烘箱中进一步固化过夜。
       注意:设备可以存储，直到进一步使用。

2. 溶液的制备

1. 库存解决方案。首先，准备储备溶液（浓缩溶液），将其稀释至较低浓度以备实际使用。
   注意:在制备较低浓度的工作溶液时，储备溶液用于节省制备时间，节省材料，减少存储空间并提高准确性。
   1. 制备30 mL 2x核心溶液（16%PEG和34%密度梯度培养基）:混合4.8g 35 kDa PEG，10.2 mL密度梯度培养基和19.8 mL DMEM / F12培养基。使用0.22 μm注射器过滤器过滤此核心溶液。
   2. 用3%表面活性剂制备50 mL矿物油:混合48.5 mL矿物油和1.5 mL表面活性剂。通过0.22μm注射器过滤器过滤后保持无菌状态。
   3. 用0.5%表面活性剂制备50 mL矿物油:混合49.75 mL矿物油和0.25 mL表面活性剂。保持无菌状态。
   4. 制备1 M二硫热醇（DTT）:将1.5425gDTT溶解在10mL蒸馏水中。保持无菌状态。
   5. 制备1 M三乙醇胺（TEA）:在433.6μL蒸馏水中加入66.4μLTEA。保持无菌状态。
   6. 制备1%Pluronic F127（PF127）:将100mg PF127溶解在10mL蒸馏水中。保持无菌状态。
2. 工作解决方案
   1. 通过将4.5 mL矿物油与3%表面活性剂和300μL 1 M DTT（1:15比例）混合来制备交联剂乳液。涡旋溶液2分钟，并在20°C的超声浴中超声处理45-60分钟。 将此溶液装入带有27 G针头的5 mL注射器中。
      注:乳液是通过超声处理油/水混合物而产生的。
   2. 通过将矿物油与0.5%表面活性剂装入具有27G针头的5mL注射器中来制备屏蔽油溶液。
   3. 通过在400μL 1x DPBS中加入32mg PEG-4-Mal以形成8%w / v溶液，并涡旋溶液2分钟，制备壳（8%w / v PEG-4-Mal和15mM TEA）溶液。然后，加入6μL1M TEA（终浓度15mM TEA）。最后，通过旋转过滤器以13，000× g 离心5分钟，并将其保持在摇臂上的黑暗中30分钟。然后，用27G针头将此溶液加载到1mL注射器中。
      注意:在打开盖子之前，将PEG-4-Mal容器置于室温下10分钟，并在关闭盖子之前吹N₂气体以用N 2替换O ₂。在添加到溶液之前涡旋TEA。
3. 在核心溶液中制备细胞悬浮液
   1. 用胰蛋白酶在37°C下处理hPSCs5至10分钟。 然后，从盘子中收集它们。细胞分离后用培养基淬灭胰蛋白酶，然后将细胞转移到15mL锥形管中。
   2. 离心本体细胞悬浮液（400× g，5分钟）。小心地吸出上清液，然后使用最小体积的生长培养基重悬细胞沉淀。使用自动细胞计数器对细胞进行计数。
      注意:典型的细胞等分试样含有12-20 x 10⁶ 个细胞，足以制造400μL的核心溶液。
   3. 从本体细胞悬浮液中取出12-20 x 10⁶ 个细胞，离心细胞/培养基悬浮液（400× g，5分钟）。
   4. 小心地从细胞沉淀中吸取培养基。然后，加入200μL培养基和200μL2x PEG溶液（终浓度30-50×10⁶ 细胞/ mL）并轻轻混合。
      注意:低细胞浓度（小于20 x 10⁶ 个细胞/ mL）导致许多空胶囊。
   5. 向溶液中加入30μL1%PF127。
   6. 将微型搅拌棒（2 mm x 7 mm）插入1 mL注射器中，然后用27 G针头将含有核心溶液的电池加载到注射器中。在整个封装过程中用冰保持溶液冷却。

3. 实验设置

1. 将粘合的 PDMS 液滴装置、4 个 20 厘米长的 20 厘米长和一条 5 厘米长的入口微管（内径 0.38 毫米 x 外径 1.1 毫米）、1 根 10 厘米出口管（内径 0.5 毫米 x 外径 1.5 毫米）和 6 根 0.5 厘米的接头管（内径 1 毫米 x 外径 1.8 毫米）放置在杀菌光源（通常内置于生物安全柜中）下方，对 30 厘米进行灭菌最小值
2. 使用镊子将卡套管安装到流体入口端口和解离端口中。
3. 使用三片20厘米长的入口微管用于壳，油，交联剂乳液入口，一块用于解离装置的入口。然后，将管子的另一端与相应的溶液一起插入注射器的针头上。同时，用一个5cm的微管连接微流体装置的核心入口和解离装置的出口（图1C）。
   注意:入口微管应紧紧地固定在上一步插入的接头管内。
4. 将一个出口管插入流体出口，并将另一端放入收集储液器中。
5. 将设备放在显微镜载物台上并连接管子以避免移动。将显微镜对准并聚焦在设备喷嘴上，以进行流量检测。
6. 将每个注射器放在不同的注射器泵上并正确固定（图1B）。根据制造商的协议，对每个泵进行以速编程:核心（ 3 - 5 μL / min ）、壳体（ 3 - 5 μL / min ）、屏蔽油（ 20 - 80 μL / min ）和交联油（ 40 - 60 μL / min ）。启动所有泵中的流量。
7. 等待每种流体进入设备并填充通道，同时推出剩余的空气。
   注意:如果进气管中有大量的空气，请暂时增加每个流速，直到空气完全排出。请注意，过大的流速可能导致 PDMS 到 PDMS 键合失效。
8. 当胶囊形成稳定时（图3），将收集管的另一端放入具有5mL mTeSR培养基的新锥形管中。
   注意:培养基含有10μM ROCK抑制剂，100 U / mL青霉素和100μg / mL链霉素。
9. 收集足够数量的胶囊后，在37°C下用5%CO₂ 孵育10分钟。存在于油相中的胶囊将位于管的顶部（见 图4A）。轻轻敲击管子会使胶囊沉淀到底部。在此之后，大部分油和介质可能会被吸入。
10. 从锥形管的底部收集胶囊，将它们放在细胞过滤器（100μm孔径）上，并用大量的培养基洗涤。然后，使用2mL培养基在6孔培养板中收集微胶囊，方法是将培养基通过过滤器，因为它倒置在孔板顶部（见 图4A）。

4. 微胶囊中的hPSC培养和分析

1. 基本文化
   1. 将干细胞胶囊在37°C的6孔板培养皿中用5%CO_2孵育。
   2. 每隔一天更换培养基，方法是将胶囊收集在细胞过滤器过滤器上，用多余的培养基洗涤它们，然后像步骤3.10中那样将它们重悬到具有2mL培养基的6孔板中的新孔中。
   3. 培养胶囊至少10天。
2. 进行活/死测定以确定包封干细胞的活力。
   1. 解冻活/死测定溶液（同源二聚体-1和钙黄绿素AM）。
   2. 将4μL的2μM乙锭同源二聚体-1和1μL的4μM钙黄绿素AM溶液加入2mL无菌DPBS中。涡流确保完全混合。
   3. 在细胞过滤器上收集约100个微胶囊，并用无菌DPBS冲洗它们，以允许培养基从胶囊中扩散出来。
   4. 通过使用步骤4.2.2中制备的1mL溶液再次将它们收集到12孔培养板中。在37°C下孵育20分钟。
   5. 在荧光显微镜下观察细胞。
      注意:通过计算活细胞总数中活细胞的百分比来量化细胞活力，活细胞可视化为绿色。
3. 球体尺寸表征。
   1. 如果需要，将带有微胶囊的孔板置于显微镜下，并使用适当的比例尺测量相关软件上显示的球体直径。
   2. 测量和分析球体尺寸。

结果

通过遵循上述方案，阅读器将能够制造微流体装置并产生携带细胞的微胶囊。 图3A 显示了使用微流体液滴生成制造的最佳和次优微胶囊的示例。PEG-4-Mal的不同配方导致不同形态的胶囊 - 皱纹胶囊与凝胶化不良，机械完整性低且无法承受在搅拌生物反应器中培养有关。在PEG含量为>6%时观察到的光滑胶囊代表了所需的胶囊形态，并且对于细胞培养足够强大。通过将微珠掺入芯中...

讨论

这里描述的封装过程导致hPSC球体的可重复形成。微胶囊形式可以很容易地将球体分配到微量滴定板的孔中，用于旨在改善/优化分化方案或测试疗法的实验。包封的干细胞球体也可用于悬浮培养物，其中水凝胶壳保护细胞免受剪切诱导的损伤⁷。

协议中有几个关键步骤。将核心、壳和油流的流速保持在"协议"部分所述的范围内非常重要。如果壳流速太低，则流...

材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
0.22 µm Syringe Filters	Genesee Scientific	25-244
1 ml syringe luer-lock tip	BD	309628
1x DPBS	Corning	23220003
4-arm PEG maleimide, 10kDa	Laysan Inc.	164-68
5 ml syringe luer-lock tip	BD	309646
6-WELL NON-TREATED PLATE	USA Scientific	CC7672-7506
Aquapel Applicator Pack	Aquapel Glass Treatment	47100
CAD software	Autodesk	AutoCAD v2020
CELL STRAINER 100 µm pore size	cardinal	335583
Chlorotrimethylsilane	Aldrich	386529-100mL
Countess II FL Automated Cell Counter	Life technology	A27974
Digital hot plate	Dataplate
Digital vortex mixer	Fisher Scientific	215370
Distilled water	Gibco	15230-162
Dithiotheritol (DTT)	Sigma	D0632-10G
DMEM/F12 media	gibco	11320-033
Falcon 15 mL Conical Centrifuge Tubes	Fisher scientific	14-959-53A
Fisherbrand accuSpin Micro 17 Microcentrifuge	live	13-100-675
HERACELL VIOS 160i CO2 Incubator	Thermo Scientific	50144906
Inverted Fluorescence Motorized Microscope	Olympus	Olympus IX83
Laurell Spin Coaters	Laurell Technologies	WS-650MZ-23NPPB
Live/Dead mammalian staining kit	Fisher	L3224
Magic tape	Staples	483535
Micro Medical Tubing (0.015" I.D. x 0.043" O.D.)	Scientific Commodities, Inc	BB31695-PE/2
Micro stir bar	Daigger Scientific	EF3288E
MilliporeSigma Filter Forceps	Fisher scientific	XX6200006P
Mineral oil	Sigma	M8410-1L
mTeSR 1 Basal Medium	STEMCELL TECHNOLOGY	85850
Needles-Stainless Steel  14 Gauge	CML supply	901-14-025
Needles-Stainless Steel  15 Gauge	CML supply	901-15-050
OptiPrep	STEMCELL TECHNOLOGY	7820
Oven	Thermo Scientific	HERA THERM Oven
Penicillin:Streptomycin (10,000 U/mL Penicillin G, 10mg/mL Streptomycin)	Gemini	400-109
Petri Dish 150X20 Sterile Vent	Sarstedt, Inc.	82.1184.500
Plasma Cleaning System	Yield Engineering System, Inc.	YES-G500
Pluronic F-127	Sigma	P2443-250G
Poly(ethylene glycol) 35kDa	Sigma	94646-250G-F
PrecisionGlide Needle 27G	BD	305109
Rock inhibitor Y-27632 dihydrocloride	SELLECK CHEM	S1049-10mg
Silicon wafer 100mm	University Wafer	452
Slide glass (75mm ´ 25mm)	CardinalHealth	M6146
Span 80	Sigma	S6760-250ML
SpeedMixer	Thinky	ARE-310
Spin-X Centrifuge Tube Filter (0.22 µm)	Costar	8160
SU-8 2025	Kayaku Advanced Materials	Y111069 0500L1GL
SU-8 developer	Kayaku Advanced Materials	Y020100 4000L1PE
Surgical Design Royaltek Stainless Steel Surgical Scalpel Blades	fisher scientific	22-079-684
SYLGARD TM 184 Silicone Elastomer Kit (PDMS)	Dow Corning	2065622
Syringe pump	New Era Pump System, Inc	NE-4000
Triethanolamine	Sigma-aldrich	T58300-25G
TrypLE Express	Gibco	12604-013
Tygon Tubing (0.02" I.D. x 0.06" O.D.)	Cole-Parmer	06419-01
Tygon Tubing (0.04" I.D. x 0.07" O.D.)	Cole-Parmer	06419-04
Ultrasonic cleaner FS20D	Fisher Scientific	CPN-962-152R
Vacuum desiccator	Bel-Art	F42025-0000
Zeiss Stemi DV4 Stereo Microscope 8x-32x	ZEISS	435421-0000-000
μPG 101 laser writer	Heidelberg Instruments	HI 1128