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血管纹对于内耳蜗电位的产生至关重要。在这里,我们介绍了成年小鼠血管纹的解剖以进行单核测序或免疫染色。
由血管纹产生的内耳蜗电位对于维持有利于适当的毛细胞机械转导和最终听力的环境至关重要。血管纹的病变可导致听力下降。解剖成体血管纹可以集中捕获单核,随后进行单核测序和免疫染色。这些技术用于在单细胞水平上研究血管纹的病理生理学。
单核测序可用于血管纹的转录分析。同时,免疫染色在识别特定细胞群方面仍然有用。这两种方法都需要适当的血管纹夹层作为先决条件,这可能被证明在技术上具有挑战性。
耳蜗由三个充满液体的腔室组成,即前庭鳞片、中鳞片和鼓鳞片。前庭鳞片和鼓鳞片均含有外淋巴液,其具有高浓度的钠(138 mM)和低浓度的钾(6.8 mM)1。Scala介质含有内淋巴液,其具有高浓度的钾(154mM)和低浓度的钠(0.91mM)1,2,3。这种离子浓度的差异可以称为耳蜗内电位(EP),主要是由钾离子沿着耳蜗侧壁通过血管纹(SV)中的各种离子通道和间隙连接产生的4,5,6,7,8,9,10,11 .SV是一种异质的,高度血管化的组织,排列在耳蜗侧壁的内侧,包含三种主要细胞类型:边缘细胞,中间细胞和基底细胞12(
所有动物实验和程序均按照美国国立神经系统疾病和中风研究所动物护理和使用委员会以及国立卫生研究院国家耳聋和其他沟通障碍研究所批准的协议进行。所有实验方案均由美国国立神经系统疾病和中风研究所动物护理和使用委员会以及美国国立卫生研究院国家耳聋和其他沟通障碍研究所批准。所有方法均按照美国国立神经系统疾病和中风研究所动物护理和使用委员会以及国立卫生研究院国家耳聋和其他沟通障碍研究所的相关指南和规定进行。
1. 动物安乐死
2. 露出骨迷宫
我们提出了一种分离用于sNuc-Seq或免疫染色的SV的方法。耳蜗相对于SV的相关解剖结构(图1)可以帮助用户更好地了解SV的组织和解剖方案的步骤。
相关视频详细介绍了从P30鼠标显微解剖SV的每个步骤, 图2显示了这种解剖和分离SV的关键步骤的快照。
sNuc-Seq可用于研究异质SV中各种细胞的转录谱。一种可视化方?.......
在单细胞测序出现之前,许多研究人员使用批量组织分析,这只能分析跨细胞平均的转录组。特别是,单细胞和sNuc-Seq使得分离单细胞或单核的转录组成为可能,分别32。在这种情况下,可以鉴定边缘细胞、中间细胞和基底细胞以及梭形细胞的单核转录组30。这使得能够研究SV细胞类型之间的转录异质性,并可用于将来研究这些细胞类型对SV功能的贡献,包括EP的?.......
作者没有什么可透露的。
这项研究得到了美国国立卫生研究院校内研究计划,NIDCD到MH(DC000088)的部分支持
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
10-µm filter (Polyethylenterephthalat) | PluriSelect | #43-50010-01 | Filter tissue during sNuc-Seq |
18 x 18 mm cover glass | Fisher Scientific | 12-541A | Cover slip to mount SV |
30-µm filter (Polyethylenterephthalat) | PluriSelect | #43-50030-03 | Filter tissue during sNuc-Seq |
75 x 25 mm Superfrost Plus/Colorforst Plus Microslide | Daigger | EF15978Z | Microslide to mount SV on |
C57BL/6J Mice | The Jackson Laboratory | RRID: IMSR_JAX:000664 | General purpose mouse strain that has pigment more easily seen in the intermediate cells of the SV. |
Cell Counter | Logos Biosystems | L20001 | Used for cell counting |
Chalizon curette 5'', size 3 2.5 mm | Biomedical Research Instruments | 15-1020 | Used to transfer SV |
Chromium Next GEM single Cell 3' GEM Kit v3.1 | Chromium | PN-1000141 | Generates single cell 3' gene expression libraries |
Clear nail polish | Fisher Scientific | NC1849418 | Used for sealing SV mount |
Corning Falcon Standard Tissue Culture Dishes, 24 well | Corning | 08-772B | Culture dish used to hold specimen during dissection |
DAPI | Invitrogen | D1306, RRID: AB_2629482 | Stain used for nucleus labeling |
Dounce homogenizer | Sigma-Aldrich | D8938 | Used to homogenize tissue for sNuc-seq |
Dumont #5 Forceps | Fine Science Tools | 11252-30 | General forceps for dissection |
Dumont #55 Forceps | Fine Science Tools | 11255-20 | Forceps with fine tip that makes SV manipulation easier |
Fetal Bovine Serum | ThermoFisher | 16000044 | Used for steps of sNuc-Seq |
Glue stick | Fisher Scientific | NC0691392 | Used for mounting SV |
GS-IB4 Antibody | Molecular Probes | I21411, RRID: AB-2314662 | Antibody used for capillary labeling |
KCNJ10-ZsGreen Mice | n/a | n/a | Transgenic mouse that expresses KCNJ10-ZsGreen, partiularly in the intermediate cells of the SV. |
MgCl2 | ThermoFisher | AM9530G | Used for steps of sNuc-Seq |
Mounting reagent | ThermoFisher | #S36940 | Mounting reagent for SV |
Multiwell 24 well plate | Corning | #353047 | Plate used for immunostaining |
NaCl | ThermoFisher | AAJ216183 | Used for steps of sNuc-Seq |
Nonidet P40 | Sigma-Aldrich | 9-16-45-9 | Used for steps of sNuc-Seq |
Nuclease free water | ThermoFisher | 4387936 | Used for steps of sNuc-Seq |
Orbital shaker | Silent Shake | SYC-2102A | Used for steps of immunostaining |
PBS | ThermoFisher | J61196.AP | Used for steps of immunostaining and dissection |
RNA Later | Invitrogen | AM7021 | Used for preservation of SV for sNuc-Seq |
Scizzors | Fine Science Tools | 14058-09 | Used for splitting mouse skull |
Tris-HCl | Sigma-Aldrich | 15506017 | Used for steps of sNuc-Seq |
Trypan blue stain | Gibco | 15250061 | Used for cell counting |
Tween20 | ThermoFisher | AAJ20605AP | Used for steps of sNuc-Seq |
Zeiss STEMI SV 11 Apo stereomicroscope | Zeiss | n/a | Microscope used for dissections |
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