Neonatal Cardiac Scaffolds: Neuartige Matrices für Regenerative Studies

Zusammenfassung

In diesen Studien bieten wir Methodik für Roman, Neugeborenen, murine Herzgerüste für den Einsatz in der regenerativen Studien.

Zusammenfassung

The only definitive therapy for end stage heart failure is orthotopic heart transplantation. Each year, it is estimated that more than 100,000 donor hearts are needed for cardiac transplantation procedures in the United States^1-2. Due to the limited numbers of donors, only approximately 2,400 transplants are performed each year in the U.S.². Numerous approaches, from cell therapy studies to implantation of mechanical assist devices, have been undertaken, either alone or in combination, in an attempt to coax the heart to repair itself or to rest the failing heart³. In spite of these efforts, ventricular assist devices are still largely used for the purpose of bridging to transplantation and the utility of cell therapies, while they hold some curative promise, is still limited to clinical trials. Additionally, direct xenotransplantation has been attempted but success has been limited due to immune rejection. Clearly, another strategy is required to produce additional organs for transplantation and, ideally, these organs would be autologous so as to avoid the complications associated with rejection and lifetime immunosuppression. Decellularization is a process of removing resident cells from tissues to expose the native extracellular matrix (ECM) or scaffold. Perfusion decellularization offers complete preservation of the three dimensional structure of the tissue, while leaving the bulk of the mechanical properties of the tissue intact⁴. These scaffolds can be utilized for repopulation with healthy cells to generate research models and, possibly, much needed organs for transplantation. We have exposed the scaffolds from neonatal mice (P3), known to retain remarkable cardiac regenerative capabilities,^5-8 to detergent mediated decellularization and we repopulated these scaffolds with murine cardiac cells. These studies support the feasibility of engineering a neonatal heart construct. They further allow for the investigation as to whether the ECM of early postnatal hearts may harbor cues that will result in improved recellularization strategies.

Einleitung

Herzinsuffizienz ist häufig und tödlich. Es ist eine progressive Erkrankung, die zu einer verminderten Kontraktilität des Herzens führt, die Durchblutung von Organen und lässt die metabolischen Anforderungen des Körpers unerfüllten beeinträchtigt. Es wird geschätzt , dass 5,7 Millionen Amerikaner an Herzinsuffizienz leiden , und es ist die Hauptursache für Hospitalisierung in den Vereinigten Staaten ^9. Die kollektive Kosten der Patienten bei Herzinsuffizienz in den Vereinigten Staaten die Behandlung von mehr als 300.000.000.000 $ Dollar pro Jahr ^9-10. Die einzige definitive Therapie für Endstadium Herzinsuffizienz ist orthotope Herztransplantation. Jedes Jahr wird geschätzt , dass mehr als 100.000 Spenderherzen für Herztransplantationsverfahren in den Vereinigten Staaten ^1-2 benötigt werden. Aufgrund der begrenzten Anzahl von Spendern werden nur rund 2.400 Transplantationen pro Jahr in den USA ² durchgeführt. Offensichtlich muss diese Organmangel behandelt werden als andere Strategien erforderlich sind, für transplanta zusätzliche Organe zu produzierention und im Idealfall würden diese Organe autologe, um die Komplikationen, die mit Ablehnung und Lebensdauer Immunsuppression verbunden zu vermeiden.

Mammalian adulten Kardiomyozyten zeigen eine begrenzte Regenerationsfähigkeit auf Verletzung aber die jüngsten Hinweise darauf , dass Säugetier-neonatalen Herzen eine bemerkenswerte Regenerationsfähigkeit nach Verletzungen ^5-8 halten. Insbesondere folgende Teil chirurgische Resektion, ein regeneratives Fenster wurde zwischen der Geburt und der postnatalen Tag entdeckt 7. Diese regenerative Periode wird durch einen Mangel an fibrotische Narbe, die Bildung von Neovaskularisation, die Freisetzung von angiogenen Faktoren aus dem Epikard und Kardiomyozyten Proliferation ^{5-8 , 11.} Diese regenerative Zeitfenster bietet das Potenzial für die Neugeborenen-Herz als neuartige Materialquelle für die Entwicklung eines bioartifiziellen Herz verwenden.

Die extrazelluläre Matrix ist bekannt, wichtige Hinweise zur Verfügung zu stellen cardiomyocyt zu förderne Proliferation und Wachstum. Deutliche Unterschiede in der Verfügbarkeit von Molekülen in der neonatalen und adulten Matrizen ¹² und ihre Fähigkeit , die Regeneration zu fördern , wurden ¹³ untersucht. ein ECM-Gerüsts für zellulare Repopulation zu bieten und die Erzeugung eines bioartifizielle Herz dezellularisierte erwachsenen Matrices wurden in mehreren Studien verwendet. Während diese Studien und neue Entdeckungen in der Stammzellentechnologien werden schnell voran, haben mehrere Hürden noch erfüllt werden. Zum Beispiel, Einschränkungen bei der Erhaltung native Struktur der Matrix, zellulären Integration in die Matrix Wand, und die Fähigkeit, die Proliferation und das Wachstum aller begrenzen den Erfolg dieses Ansatzes zu unterstützen. Während überlegen haben regenerative Attribute der Neugeborenen-Herz zugeschrieben worden ist, haben sich die praktischen Aspekte der Verwendung eines solchen Gewebes seine Explorations begrenzt.

Basierend auf der nachgewiesenen Regenerationsfähigkeit des Neugeborenen-Herz haben wir durch die Entwicklung eines neuartigen Matrizen entwickeltTechnik der Dezellularisierung für die P3 Maus Herz. Der P3 Herz wurde für diese Studien ausgewählt , da es innerhalb des Fensters von Herzregeneration wie zuvor ⁶ bestimmt aber das Herz ist groß genug , um zu ernten, und Dezellularisieren recellularize. Das Ziel dieser Studie ist es, die Durchführbarkeit der Schaffung einer Matrix aus einer neonatalen Mäuseherz zu demonstrieren. Unsere Studien belegen für die Machbarkeit von Dezellularisieren einer Minute, Neugeborenen-Herz, während die strukturelle und proteinöse Integrität des ECM beibehalten wird. Wir zeigen auch die Fähigkeit, dieses Herz-ECM mit mCherry exprimierenden Kardiomyozyten recellularize und wir haben diese Kardiomyozyten für die Expression von verschiedenen kardialen Marker folgende Rezellularisierung sucht. Diese Technologie wird für die Prüfung der Überlegenheit einer neonatalen Matrix für die Entwicklung eines bioartifiziellen Herzens ermöglichen.

Protokoll

Alle Maus-Experimente wurden in Übereinstimmung mit den US-Tierschutzgesetz durchgeführt und wurden von der Institutional Animal Care und Use Committee an der University of Minnesota genehmigt.

1. Verfahren zur Maus Herz Isolation

1. Euthanize eine Neugeborenen-Maus durch Enthauptung mit einem einzigen Einsatz Klinge.
2. Tupfer, um den Brustkorb mit 70% Ethanol.
3. Präparieren Sie die Haut von der Brust, indem sie es weg von der Brustwand mit Standard-Schere schneiden, während die Haut seitlich mit einem Paar # 5 Pinzette ziehen.
4. Perforieren den Bauch unmittelbar unterhalb des Brustbeins mit der Schere durch durch die Bauchwand zu schneiden. Greifen die Xiphoidbasis mit # 5 Pinzette ziehen sich die Brustbeins rostral aus dem Körper, während auf beiden Seiten der Brust mit der Schere obwohl die Rippen zu schneiden. Der Brustkorb wird reflektiert kranial mit der Zange, das Herz zu offenbaren.
5. Unverblümt sezieren die beiden Hauptkeulen des Thymus durch Ziehen seitlich mit # 5 Pinzette, Belichtender Bogen der Aorta sowie die Kava-und Lungenvenen.
6. TRANSECT die großen Arterien aus dem Aortenbogen und die Aorta selbst, mit den 10 cm Feder Schere. Bewahren Sie die Aorta zwischen der Basis des Herzens und der brachiocephalic Arterie. Fassen Sie die Enden der abgetrennten Gefäße mit der # 5 Pinzette das Herz nach vorn zu reflektieren, es aus der Luft- und Speiseröhre trennt.
7. TRANSECT den Lungengefäßen und anderen großen Venen, indem sie zwischen den Lungen Schneiden und das Herz auf beiden Seiten des Herzens mit den 10 cm Feder Schere. Die Venen offen bleiben Entwässerung zu sorgen.
8. Entfernen Sie das Herz aus dem Mediastinum mit den # 5 Zange, die abgeschlagenen Enden der großen Gefäße zu erfassen. Platzieren Sie die Herzen in eine 60 mm Kulturschale mit steriler phosphatgepufferter Salzlösung (PBS) für die Katheterisierung.

2. Verfahren zur Dezellularisierung von Langendorff-Perfusion

1. Bereiten Sie die Katheteranordnung im Voraus. Zeichnen Sie einen 4 cm langen Abschnittvon PE 50 Schläuchen in einem kleinen Spiritusflamme ein kleiner, dünner Katheter zu schaffen. Schneiden Sie die Enden mit einer Klinge , die Abmessungen zu erfüllen (ca. 300 & mgr; m Außendurchmesser OD mit einem Flansch von rd. 500 & mgr; m OD) in 1 gezeigt. Dies wird zwei symmetrische Katheter von jeder Seite des Zuges.
2. Zeigen das Schnittende der Rohrleitung in die Flamme kurz, einen Flansch auf der Öffnung an dem dünnen Ende zu schmelzen.
3. Füllen Sie die 12-ml-Spritze mit PBS und montieren Sie den Katheter durch ein 3-Wege-Hahn Platzierung auf der Spritze. Fügen Sie eine 22 G x 1 Nadel auf den Hahn und treiben die Nadel durch das Septum. Schieben des verstreckten Schlauch PE - Katheter auf die Nadel (Fig. 1).
4. Spülen Sie die zusammengebauten Teile mit PBS, sicherzustellen, dass alle Luftblasen entfernt wurden.
5. Setzen Sie den Katheter, hergestellt wie oben beschrieben, in die Aorta des isolierten Herzens, nicht über die Aortenklappe erstreckt und abzubinden mit einer Bindung von 7-0 Naht. Seien Sie den Flansch von ter Katheter proximal gegen die Krawatte, eine dichte Abdichtung zu machen und das Herz ablöst, den Katheter zu verhindern.
6. Beachten Sie die Katheterisierung unter Vergrößerung, während sanft das Herz mit der Spritze mit PBS Perfusion. Stellen Sie sicher, dass es keine Lecks im System sind und das Gewebe blanches homogen als latente Blut entfernt wird.
7. Platzieren des Septums in den Hals des Einlassadapter und abdichten, indem die Seiten über das Glas zu falten.
8. Bringen Sie den Behälter gefüllt mit 60 ml 1% Natriumdodecylsulfat (SDS) in destilliertem Wasser (dH ₂ O) über eine Leitung von ausreichender Länge , um eine Spalte zu erzeugen , die 20 mm Hg Druck erzeugt , wie in Fig. 1. Berechne den Druck von der Flüssigkeitssäulenhöhe basierend auf der Beziehung von 1 mm Hg ist gleich 1,3595 cm H ₂ O.
   Achtung: SDS ist ein sehr flockiges Pulver mit reizenden Eigenschaften. Kontakt sollte vermieden werden. Behandeln Sie das Pulver geeignete Schutzkleidung verwenden.
9. Perfuse das Herz mit 1% SDS für 14 Stunden. Das Herz wird ohne beobachtbare verbleibende Gewebe in Erscheinung durchscheinend sein.
10. Spülen Sie das System bis zum Absperrhahn der verbleibenden SDS - Lösung und ersetzen Sie es mit 10 ml dH ₂ O. Perfundieren das Herz mit 10 ml 1% Triton X-100 (in destilliertem Wasser verdünnt), gefolgt von 10 ml dH ₂ O, gefolgt von 60 ml PBS 1x Penicillin Streptomycin (Pen-Strep) enthält.
11. Lagern Sie das Herz in PBS mit 1x Pen-Strep bei 4 ° C. Falls die vorgesehene Beitrag Dezellularisierung Anwendung Perfusion erfordert dann sollte der Katheter in die Aorta eingehalten werden, schneiden sonst die Naht Krawatte und den Katheter zu entfernen.

3. DNA-Bestimmung

1. Vorbereiten eines Digest des dezellularisierten ECM oder Kontroll Herzen unter Verwendung von 200 & mgr; g / ml Proteinase K in 50 mM KCl, 2,5 mM MgCl _2, 0,45% Tween 20 in 10 mM Tris (pH 8,3).
2. Inkubieren des Gewebes bei 55 ° C unter Rühren, bis das Gewebe gelöst,typischerweise 4-5 Stunden.
3. Quantifizieren der DNA - Gehalt des Homogenisats mit einem DNA - Bindungsassay ^4,11.

4. Fixierung und Schnitt von Tissue

1. Fix dezellularisiert, rezellularisiertes oder Kontroll P3 Herzen in 4% Paraformaldehyd in PBS für 30 min bei Raumtemperatur.
2. Waschen Sie das Gewebe in PBS 3x.
3. Platzieren des Gewebes in einer Lösung von 7,5% Sucrose in 0,1 M Phosphatpuffer bei 4 ° C, bis es sinkt.
4. Ändern, um die Lösung zu 15% Sucrose in 0,1 M Phosphatpuffer bei 4 ° C, wieder, bis sie sinkt.
5. Wärmen Sie das Gewebe auf 37 ° C, ersetzen die Hälfte des Volumens mit Gelatine-Lösung in 15% Saccharose und 0,1 M Phosphatpuffer und Äquilibrieren über Nacht. Konzentrationen von Gelatine werden schrittweise erhöht bis 1%, 2,5%, 5% und schließlich 7,5% zweimal.
6. Legen Sie die Proben in cryomolds mit frischen 7,5% Gelatine. Um die Form der dezellularisierten Proben wiederherstellen, flüssige Gelatine können in die Kammern als t perfundiert werdener Herzen geformt sind. Frieren durch die cryomolds auf flüssigem Stickstoff schwimmen. Bei -80 ° C.
7. Schneiden (10 & mgr; m dick) Abschnitte mit einem Kryostaten. Bringen Sie die Folie nahe an der Schnittfläche und beobachten den Abschnitt von dem Messer auf die Oberfläche auf den elektrostatisch behandelten Folien aufgrund der Ladung losfahren. Trocknen Sie die Dias über Nacht und bei -80 ° C für eine spätere Analyse.
8. Entfernen Sie die Folien aus der Gefriertruhe, ins Gleichgewicht auf Raumtemperatur und dann in einem Coplin Gefäß mit PBS für 20 min bei 37 ° C, um die Gelatine aufzulösen.
9. Stain die geschnittenen Abschnitte aus Schritt 4.7 mit Hematoxylin und Eosin. Die Objektträger in einem Glas Coplin. Setzen Sie die hydratisiert Dias in Schritt 4,8 bis Hämatoxylin für 45 sec, Leitungswasser für 1,5 min, Puffer für 3 min, Leitungswasser für 1 min, Bläuungsmittel für 1,5 min, 80% Ethanol für 1 min, Alkoholisches Eosin Y für 8 sec, 80% Ethanol für 1 min, 100% Ethanol für 1 min 2x, Mittel (Xylol-Ersatz) für 1 min 3x, Deck mit Harz ClearingBasis Eindeckmittel. Untersuchen Sie die mikroskopisch Dias.
10. Um die Retention von ECM-Protein Reaktivität des Herzens ECM, Fleck für ECM-Strukturproteine ​​wie Kollagen IV bestätigen Sie mit der hydratisierten Folien in einer befeuchteten Kammer platziert und mit 10% normalem Eselserum (NDS) in phosphatgepufferter Salzlösung mit 0,1% Behandlung von Triton -X100 (PBST) für 1 h bei Raumtemperatur (RT). Verwenden Sie ein ausreichendes Volumen der Gewebeabschnitte zu bedecken.
11. Ersetzen Sie die Lösung mit dem primären Antikörper der Wahl bei einer empirisch ermittelten Verdünnung in 5% NDS / PBST. Zum Beispiel wurde die Collagen IV-Antikörper bei einer Verdünnung von 1: 150. Inkubieren über Nacht bei 4 ° C.
12. Waschen der Objektträger mit PBST 3x und gelten mit einem Fluoreszenzfarbstoff ein sekundärer Antikörper der Wahl konjugiert. Verdünnen Sie die Antikörper durch einen empirisch ermittelten Betrag. Inkubieren für 1 h bei RT. Waschen mit PBS 3x.
13. Stain die Folien mit einem DNA-bindenden Farbstoff wie DAPI Abwesenheit von Zellkernen zu überprüfen, indem Sie einen DAPI enthält mounti mitng Medium, wenn die Abdeckung die Folien rutscht.
14. Untersuchen Sie die Folien mit einem Fluoreszenzmikroskop bei 50 bis 400-fache.

5. P1 Neonatal Murine Kardiomyozyten für Rezellularisierung

1. Spray jeden Welpen mit 70% Ethanol und enthaupten mit einem einzigen Einsatz Klinge.
2. Halten jedes Welpen zwischen dem Daumen und Zeigefinger, während der Brustkorb in der Mittellinie mit kleinen sterilen Schere aufgespalten wird, um die Brusthöhle zu exponieren. Wenden Sie Druck das Herz zu ermöglichen, sich frei von der Brust hervorstehen, während es frei von den großen Gefäße geschnitten wird und die Vorhöfe nur das ventrikuläre Gewebe zu verlassen.
3. Legen Sie jedes Herz direkt in ein 50 ml Röhrchen mit 20 ml eiskaltem Calcium, Bikarbonat frei Hanks gepufferte Salzlösung mit 20 mM 4- (2-Hydroxyethyl) -1-piperazinethansulfonsäure (CBFHH), bis alle Herzen gesammelt werden.
4. Saugen Sie das CBFHH und fügen 10-15 ml frischem CBFHH (eiskaltes) auf das Rohr. Waschen Sie das Gewebe durch das Gewebe in t wirbelner Rohr mehrmals.
5. Dekantiert die Lösung, die Herzen in eine 60 mm Kunststoff-Petrischale enthält.
6. Sezieren jede latent Vorhofgewebe aus den Herzen unter Vergrößerung auf Eis, indem sie es weg von den Herzen mit den Feder Schere trimmen. Mince bis die Ventrikel in homogene Größe kleine Stücke schneiden. Entfernen Sie alle getrennt nicht ventrikuläre Gewebe aus der Schale mit # 5 Pinzette.
7. Pipette so viel von der Lösung CBFHH wie erforderlich, um die Gewebefragmente in eine kleine sterile Fläschchen zu übertragen, das eine sterile Mikro Rührstab enthält.
8. Lassen Sie das Gewebe auf den Boden des Fläschchens zu sedimentieren und die CBFHH Lösung entfernen.
9. Make-up 50 ml einer Enzymlösung 1,75 mg / ml Trypsin, 20 ug / ml DNase II in CBFHH. Pipettieren 5 ml dieser Enzymlösung und fügen Sie sie in ein Röhrchen gehackten ventrikuläre Gewebe und auf einem Magnetrührer enthält. Rühre bei einer konstanten Geschwindigkeit (340 UpM) bei Raumtemperatur für 8 min.
   HINWEIS: Die Rührwirkung sollte schonend sein und doch erlaubenfür die Suspension der Schlämme.
10. Entfernen Sie die Fläschchen aus der Rührplatte und lassen Sie den Brei 3 min zu sedimentieren. Pipettieren und verwerfen die anfängliche verdauen Überstand, wie es Blutzellen und Gewebereste in erster Linie enthält.
11. Pipettieren eine zweite 5 ml Aliquot der Enzymlösung und fügen Sie es zum Verdauen Ventrikel. Man rührt 8 min und lassen Sie es für weitere 3 min zu sedimentieren. Bevor die Digests beginnen, bereiten zwei 50-ml-Röhrchen (mit der Bezeichnung 1 und 2), die jeweils mit 12 ml eiskaltem fötalen Rinderserum (FBS). Legen Sie eine 40 & mgr; m Zelle Sieb oben auf jedes Röhrchen. Pipettieren dieser Überstand durch den Filter auf dem Rohr 1.
12. Wiederholen Sie die Verdauung zusätzlich 8 mal, um die Platzierung des Digest Überstand zwischen den beiden Röhrchen, die FBS abwechseln. Teilen Sie die letzte Überstand gleichmäßig zwischen den Rohren 1 und 2 zu gleichen Volumina in jedem Röhrchen gewährleisten.
    HINWEIS: Jedes Röhrchen Sammlung wird nun 32,5 ml Gesamtvolumen der Zellsuspension enthalten.
13. Zentrifugieren Sie die Röhrchen enthaltening den Überstand 150 xg für 6 min bei 4 ° C.
14. Während die Verdauung Teilmengen zu sammeln, bereiten fünf 100-mm-Gewebekulturplatten mit 6 ml Medium (Dulbecco-modifiziertem Eagle-Medium (DMEM) mit 10% FBS, 1x Pen-Strep, 1x L-Glutamin) pro Platte. Inkubieren diese Aliquots bei 37 ° C, 5% CO ₂ für 30 min , um die Medien zu äquilibrieren.
15. Saugen Sie das CBFHH Enzymmischung und Resuspendieren der Zellen in den 30 ml Kulturmedien oben hergestellt, die Zellen aus den beiden Sammelröhrchen kombiniert.
16. Rück 6 ml der Zellsuspension zu jeder der 100-mm-Platten und Inkubation für 45 min bei 37 ° C.
17. Am Ende der Inkubation übertragen die nicht-adhärenten Zellen zu 5 neue Speisen und erneut inkubieren 45 min (die Fibroblastenfraktion dem Geschirr anhaften begonnen wird und getrennt werden können, falls gewünscht, ausgewachsen).
18. Am Ende der zweiten Runde der Pre-Plating, sammeln die Medien und nicht-haftenden Zellen aus den Schalen und drehen Sie die Medien bei 150xg für 6 min.
19. Abzusaugen überschüssige Medien , die Zellen auf die ungefähre gewünschte Konzentration zu bringen, (4,0 x 10 ⁵ Zellen pro Konstrukt in 100 ul Perfusat). Entfernen eines aliquoten zum Zählen und oder Vitalitätstests ^14.

6. Bioreactor Rezellularisierung von P3 Herz Matrix

1. Vorbehandeln die isolierten Herzen Matrix mit Kulturmedien (siehe Schritt 5.15) über Nacht vor der Zugabe der Zellen.
2. Bauen Sie die Elemente einer Langendorff - System , wie in gezeigt. 2. Autoclave die Glasteile und Ethylenoxid sterilisieren die Plastikteile Sterilität zu gewährleisten. Verschiedenen Untereinheiten des Systems können in einer laminaren Strömungshaube zusammengebaut werden, bevor sie auf dem Stützgestell angebracht ist. Zirkulierende Wasserbad und beheizten Wasserströmungspfad wurde aus Gründen der Übersichtlichkeit weggelassen.
3. Füllen Sie das zusammengefügte System mit 120 ml Gewebekulturmedien (siehe Schritt 5.15).
4. Legen Sie die katheterisierte Herz Matrix aus Schritt 2.14 in einer 60 mm culeine 1-ml-Spritze mit 22 G x 1 Nadel beladen mit Zellsuspension aus Schritt 5.20 an den Katheter unter Vergrößerung ture Schale und zu verbinden. Stellen Sie sicher, dass diese Anordnung das Herz zu vermeiden frei von Luftblasen ist Embolisation.
5. die 100 & mgr; l der Zellsuspension in das Herz Matrix über den Koronararterien vorsichtig perfuse. Wenn Sie fertig sind, nehmen Sie die Spritze / Nadel-Kombination.
   HINWEIS: Eine langsame Perfusion von ca. 20 & mgr; l pro min ist erforderlich, um die Zellen fließt aus den Adern zu verhindern, das Herz im Transit.
6. Mit einem stumpfen 22g Stummel an den Luer-Anschluss an der Unterseite des Bioreaktors Herzgefäßdeckel befestigt ist, schieben Sie den Katheter auf den Stummel.
7. Starten Sie die peristaltische Pumpe und zu beobachten , dass der Fluss geht wie in Abbildung 2 dargestellt. Der Ablauf geht aus dem Reservoir über die Pumpe durch die Blasenfalle in die in der Aorta in Schritt platziert Katheter 2.5 (rot Pfad in Fig. 2). Beachten Sie die Strömung des Herz-Kreislauf aus der Venes und tropft von der Spitze, Umlauf zum Medienspeicher.
   HINWEIS: Die Perfusionsfördermenge von individuellen Faktoren wie dem Gefäßwiderstand des Konstrukts und der Größe des Herzens, aber eine Rate von 50 bis 100 & mgr; l abhängt / min ist ein guter Ausgangspunkt. An Zwischenzeitpunkten können Funktionsprüfungen durchgeführt werden. Die Größenskala des Neugeborenen rezellularisiertes Herz begrenzt die Beurteilungen, die durchgeführt werden können , aber wir haben festgestellt , dass optisch - basierten Systemen verwendet werden können , das Verhalten zu quantifizieren zu schlagen , so wie sie bei erwachsenen Rattenherzen verwendet wurden. ⁴ Das Konstrukt kann für längere perfundiert werden Zeiträume (bis zu 23 h).

Ergebnisse

Dezellularisierung
Im Durchschnitt ist die Zeit, um Dezellularisierung eines P3 Herz dieses Protokoll verwenden etwa 14 Stunden. eine durchschnittliche Herzgewicht von 23 mg für den P3 Neugeborener gegeben.

Acellularity
3a zeigt eine völlig intakte P3 neonatale Herz (whole mount). 3b zeigt das gleiche Herz folgende Dezellularisierung. 4a und di...

Diskussion

Die Abhängigkeit dieser Technik auf wiederholte Perfusionen des Herzens ist die Vermeidung einer Embolie eine wichtige Komponente für ein erfolgreiches Ergebnis. Von der anfänglichen Katheterisierung des Herzens in den Schritten 2,2-2,6, zu den Veränderungen der Lösung zwischen den Schritten von 2,8 bis 2,14, sind Manipulationen, die Einführung von Luftblasen, die Kompromiss den Fluss des Perfusats in das Myokard zulassen. Aufgrund der geringen Größe des neonatale Herz, auch in das Gefßsystem winzige Blasen kan...

Materialien

Name	Company	Catalog Number	Comments
1. Materials For Mouse Heart Isolation
P1 mouse pups (as shown; B6;D2-Tg(Myh6*-mCherry)2Mik/J)	Jackson Laboratories	21577	or equivalent
60 mm Culture dish	BD Falcon	353004	or equivalent
Phosphate buffered saline pH 7.4 (sterile)	Hyclone	SH30256.01	or equivalent
Single Use Blade	Stanley	28-510	or equivalent
Standard Scissors	Moria Bonn (Fine Science Tools)	14381-43	or equivalent
Spring Scissors 10 cm	Fine Science Tools	15024-10	or equivalent
Vannas Spring Scissors - 3mm Cutting Edge	Fine Science Tools	15000-00	or equivalent
#5 Forceps	Dumnot (Fine Science Tools)	11295-00	or equivalent
2. Materials For Decellularization
Inlet adaptor	Chemglass	CG-1013	autoclavable
Septum	Chemglass	CG-3022-99	autoclavable
1/8 in. ID x 3/8 OD C-Flex tubing	Cole-Parmer	EW-06422-10	autoclavable
Male luer to 1/8" hose barb adaptor	McMaster-Carr	51525K33	autoclavable
Female luer to 1/8" hose barb adaptor	McMaster-Carr	51525K26	autoclavable
Prolene 7-0 surgical suture	Ethicon	8648G	or equivalent
Ring stand	Fisher Scientific	S47807	or equivalent
Clamp	Fisher Scientific	05-769-6Q	or equivalent
Clamp regular holder	Fisher Scientific	05-754Q	or equivalent
60 cc syringe barrel	Coviden	1186000777T	or equivalent
Beaker	Kimble	14000250	or equivalent
22g x 1 Syringe Needle	BD	305155	or equivalent
12 cc syringe	Coviden	8881512878	or equivalent
3-way stop cock	Smith Medical	MX5311L	or equivalent
22 x 1 g needle	BD	305155	or equivalent
PE50 tubing	BD Clay Adams Intramedic	427411	Must be formable by heat. Polyethylene recommended
1% SDS	Invitrogen	15525-017	Ultrapure grade recommended. Make up fresh solution and filter sterilize before use.
1% Triton X-100	Sigma-Aldrich	T8787	Make up fresh solution from a 10% stock and filter sterilize before use.
Sterile dH2O	Hyclone	SH30538.02	Or MilliQ system purified water.
1X Pen/Strep	Corning CellGro	30-001-Cl	or equivalent
3. Materials For DNA Quantitation
Proteinase K	Fisher	BP1700	>30U/mg activity
KCl	Sigma-Aldrich	P9333	or equivalent
MgCl*6H2O	Mallinckrodt	5958-04	or equivalent
Tween 20	Sigma-Aldrich	P1379	or equivalent
Tris base/hydrochloride	Sigma-Aldrich	T1503/T5941	or equivalent
Pico-Green dsDNA assay kit	Life Technologies	P7589	requires fluorimeter to read
4. Method for fixation and sectioning of tissue.
Paraformaldehyde	Sigma-Aldrich	P6148	or equivalent
Gelatin Type A from porcine skin	Sigma-Aldrich	G2500	must be 300 bloom or greater
5. Method for tissue histology
Cryomolds 10 x 10 x 5mm	Tissue-Tek	4565	or equivalent
Cryostat	Hacker/Bright	Model OTF	or equivalent
Microscope Slides  25 x 75 x 1 mm	Fisher Scientific	12-550-19	or equivalent
Hematoxylin 560	Surgipath/Leica Selectech	3801570	or equivalent
Ethanol	Decon Laboratories	2701	or equivalent
Define	Surgipath/Leica Selectech	3803590	or equivalent
Blue buffer	Surgipath/Leica Selectech	3802915	or equivalent
Alcoholic Eosin Y 515	Surgipath/Leica Selectech	3801615	or equivalent
Formula 83 Xylene substitute	CBG Biotech	CH0104B	or equivalent
Permount Mounting Medium	Fisher Chemical	SP15-500	or equivalent
Collagen IV Antibody	Rockland	600-401-106.1	or equivalent
α-Actinin Antibody	Abcam	AB9465	or equivalent
mCherry Antibody	Abcam	AB205402	or equivalent
NKX2.5 Antibody	Santa Cruz Biotechnology	SC-8697	or equivalent
Donkey anti-mouse AF488 Antibody	Life Technology	A21202	or equivalent
Donkey anti-chicken AF594 Antibody	Jackson Immunoresearch	703-585-155	or equivalent
Donkey anti-goat CY5 Antibody	Jackson Immunoresearch	705-175-147	or equivalent
Fab Fragment Goat Anti-Rabbit IgG (H+L) AF594	Jackson Immunoresearch	111-587-003	or equivalent
Prolong Gold Antifade Mountant with DAPI	ThermoFisher	P36930	or equivalent
6. Isolation of neonatal ventricular cardiomyocytes using pre-plating.
HBSS (Ca, Mg Free)	Hyclone	SH30031.02	or equivalent
HEPES (1M)	Corning CellGro	25-060-Cl	or equivalent
Cell Strainer	BD Falcon	352340	or equivalent
50 mL tube	BD Falcon	352070	or equivalent
Primeria 100 mm plates	Corning	353803	Primeria surface enhances fibroblast attachment promoting a higher myocyte purity
Trypsin	Difco	215240	or equivalent
DNase II	Sigma-Aldrich	D8764	or equivalent
DMEM (Delbecco's Minimal Essential Media)	Hyclone	SH30022.01	or equivalent
Vitamin B12	Sigma-Aldrich	V6629	or equivalent
Fibronectin coated plates	BD Bioscience	354501	or equivalent
Fetal bovine serum	Hyclone	SH30910.03	or equivalent
Heart bioreactor glassware	Radnoti Glass Technology	120101BEZ	Must be sterilizable by autoclaving or gas.