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Dieses Protokoll beschreibt die Montage eines pneumatischen Systems zur Abgabe von Druckluft an eine Nadel während des Prozesses des Anfasens der Nadel. Das Protokoll beschreibt ferner den Anfasprozess zur Herstellung scharfer Mikroinjektionsnadeln und wie die relative Öffnungsgröße der Nadel gemessen wird.
Mikroinjektionsnadeln sind ein wichtiges Werkzeug bei der Verabreichung von Reagenzien zur Genommodifikation, CRISPR-Komponenten (Guide-RNAs, Cas9-Protein und Donor-Template) und Komponenten des Transposon-Systems (Plasmide und Transposase-mRNA) in sich entwickelnde Insektenembryonen. Scharfe Mikroinjektionsnadeln sind bei der Verabreichung dieser Modifikationsmittel besonders wichtig, da sie dazu beitragen, Schäden am zu injizierenden Embryo zu minimieren und dadurch das Überleben dieser Embryonen im Vergleich zur Injektion mit nicht abgeschrägten Nadeln zu erhöhen. Darüber hinaus erzeugt das Abschrägen von Nadeln Nadeln, die von Nadel zu Nadel konsistenter sind, verglichen mit Nadeln, die durch zufälliges Brechen der Nadelspitze geöffnet werden, indem die Spitze gegen ein Objekt gestreift wird (Seite eines Deckglases, die Oberfläche des zu injizierenden Embryos usw.). Das Verfahren des Nassanfasens von Mikroinjektionsnadeln mit konstantem Luftdruck, die der Nadel zugeführt wird, ermöglicht es der Person, die die Nadel anfas, zu wissen, wann die Nadel offen ist (Vorhandensein von Blasen) und gibt auch einen relativen Hinweis darauf, wie groß eine Nadelöffnung entstanden ist. Die relative Öffnungsgröße in der Nadel kann bestimmt werden, indem der an die Nadel abgegebene Luftdruck angepasst wird, bis ein Gleichgewicht erreicht ist und keine Blasen mehr aus der Nadelspitze fließen. Je niedriger der Druck ist, bei dem das Gleichgewicht erreicht wird, desto größer ist die Nadelstärke; Und umgekehrt gilt: Je höher der Druck, desto kleiner die Nadelstärke.
Die genetische Modifikation von Insekten ist ein Verfahren, das ursprünglich von Rubin und Spradling in Drosophila entwickelt wurde und im Laufe der Jahre modifiziert wurde, um genetische Veränderungen bei anderen Artenzu erzeugen 1. Der Prozess beruht auf der präzisen Abgabe von Modifikationskomponenten, die in einem bestimmten Zeit- und Ortsfenster innerhalb des sich entwickelnden Embryos mikroinjiziert werden 2,3,4. Scharfe Mikroinjektionsnadeln sind ein wichtiges Werkzeug im Prozess der genetischen Veränderung einiger Insekten, wie z. B. Mücken 4,5,6,7,8,9 und Sandmücken 10, während sie für andere Insekten wie Seidenraupen 11 nicht so kritisch sind. Scharfe Nadeln sind oft ein Schlüsselfaktor für Erfolg und Misserfolg bei dem Versuch, ein gentechnisch verändertes Insekt zu erzeugen 2,4. Typischerweise werden Mikrokapillarglasnadeln durch Erhitzen von Glas bis zu dem Punkt gezogen, an dem das Glas elastisch wird, wodurch die Kapillare in eine sich verjüngende Nadel mit geschlossener Spitze gezogen werden kann. Bevor die Nadel verwendet werden kann, muss sie so geöffnet werden, dass eine scharfe Spitze für die Injektion entsteht. Traditionell werden Nadeln geöffnet, indem man die Nadelspitze vorsichtig gegen etwas streicht (den Rand eines Objektträgers/Deckglases oder den Embryo usw.), das dazu führt, dass eine kleine Menge Glas von der Spitze abbricht, wodurch zufällig eine scharfe Spitze entsteht 2,3. Ein etwas weniger zufälliges Verfahren ist das Trockenfasen, bei dem die Nadel schnell für kurze Zeit auf eine optisch flache, sich drehende Schleifplatte abgesenkt wird, wodurch eine kleine Menge Glas von der Nadelspitze abgerieben wird, wodurch eine scharfe Spitze entsteht. Das Trockenfasen ist etwas weniger zufällig als das Bürsten der Nadelspitze gegen etwas. Das im Folgenden beschriebene Protokoll geht noch einen Schritt weiter, indem es die abzuschrägende Nadel mit Druckluft versorgt und sie unter einer Flüssigkeitsschicht abschrägt, so dass Blasen sichtbar sind, sobald die Nadel geöffnet wurde. Dieses Protokoll beschreibt ein Verfahren zur Herstellung zuverlässig scharfer Mikroinjektionsnadeln. Das Anfasen unter einer Flüssigkeitsschicht ist eine Verbesserung gegenüber dem zufälligen Brechen der Nadel, wie oben beschrieben, und dem trockenen Anfasen, da der Benutzer eine Rückmeldung über den Anfasvorgang erhält, so dass die Person, die anfaselt, weiß, wann die Nadel offen ist und wie groß die Nadelöffnung relativ ist. Wenn die relative Öffnungsgröße der Nadelspitze bekannt ist, kann die Person, die die Nadel abschrägt, Nadeln mit unterschiedlichen Öffnungsgrößen herstellen. Verschiedene Nadelöffnungsgrößen haben unterschiedliche Vorteile; Zum Beispiel können größere Nadelöffnungen Injektionsmischungen mit hoher Viskosität aufnehmen, während kleinere Öffnungsnadeln den zu injizierenden Embryo weniger schädigen.
Die Luftzufuhr zur Nadel erfolgt über einen Regler und ein System von Urethanschläuchen, das auf einem modifizierten luftdruckgeregelten Einspritzsystem2 basiert. Während die Nadel mit konstantem Druck mit Luft versorgt wird, wird die Nadel unter einer Flüssigkeitsschicht abgeschrägt. Der Anfasprozess besteht aus einem sich wiederholenden fünfstufigen Prozess: 1) Absenken der Nadel auf die Schleiffläche, 2) Abschrägen der Nadel für einen kurzen Zeitraum, 3) Anheben der Nadel von der Schleifplatte, während sie unter der Oberfläche der Flüssigkeitsschicht gehalten wird, 4) Stoppen der Drehung der Schleifplatte, um das Auftreten von Blasen zu überprüfen. Wenn keine Blasen vorhanden sind, werden die Schritte 1 bis 4 wiederholt, bis Blasen erscheinen. 5) Sobald Blasen vorhanden sind, kann der Luftdruck angepasst werden, um die relative Öffnungsgröße der Nadel zu bestimmen. Je geringer der Druck ist, der erforderlich ist, um die Blasenbildung zu stoppen, desto größer ist die Öffnung an der Nadelspitze.
HINWEIS: Das Protokoll, wie unten beschrieben, verwendet die abgeschrägte Sutter BV-10 Mikrokapillare. Dieses Protokoll kann jedoch für die Verwendung mit jedem Modell mit abgeschrägten Mikrokapillaren modifiziert werden.
1. Montage von Regler, Manometer und Luftzufuhrschlauch
2. Anfasen von Borosilikatnadeln
3. Bestimmung der relativen Öffnungsgröße der abgeschrägten Nadel
HINWEIS: Die Bestimmung der relativen Öffnungsgrößen der abgeschrägten Nadel erfolgt in Schritt 2.13. In den folgenden Schritten wird dieser Vorgang näher beschrieben.
Das oben beschriebene Verfahren erzeugt gleichbleibend scharfe Mikroinjektionsnadeln. Scharfe Nadeln zeichnen sich dadurch aus, dass sie in der Lage sind, weiche Chorion-Insektenembryonen, wie z. B. Mückenembryonen, mit wenig bis gar keinem Widerstand der Embryonalmembran einzuführen. Wenn Mückenembryonen zur genetischen Veränderung mikroinjiziert werden, ist die Embryonalmembran relativ elastisch. Wenn Sie eine stumpfe Nadel gegen die Embryonalmembran drücken, wird sie eingedrückt...
Die genetische Modifikation von Stechmücken beruht auf einer präzisen Mikroinjektion der Modifikationsmaterialien (Plasmide, Leit-RNAs oder Proteine) in Prä-Blastoderm-Embryonen 3,4,5,6,7,8. Entscheidend für diesen Prozess sind scharfe Nadeln, die den Embryo während der Injektion leicht ...
Der Autor hat nichts offenzulegen.
Der Autor dankt den folgenden Personen. Die Mitarbeiter der Insektentransformationseinrichtung der Universität von Maryland: Channa Aluvihare, Robert Alford und Daniel Gay. Ohne ihre engagierte Arbeit würde die Insektentransformationsfazilität nicht existieren. Vanessa Meldener-Harrell für das Korrekturlesen dieses Manuskripts.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
1.0 mm O.D. microcapillaries | World Precision Instruments | ||
Beveler pedestal oil | Sutter Instruments | 008 | |
Bicycle fender clip | VeloOrange | R-clip 4-pack | https://velo-orange.com/products/vo-r-clip-4-pack |
Boom Stand Microscope | AmScope | AMScope 3.5X-90X Trinocular LED Boom Stand Stereo Microscope or equivalent | |
BV-10 Beveler | Sutter Instruments | BV-10 | |
Diamond abrasive plate | Sutter Instruments | 104F | Diamond abrasive plate - extra fine (0.2 µ to 1.0 µ tip sizes) |
Gasket, Buna-N | Clippard Instrument Laboratory, Inc. | 11761-2-pkg | Used to seal connection on T or L connectors, if not already included with these pieces |
Hose Clamp | Clippard Instrument Laboratory, Inc. | 5000-2-pkg | |
Hose connector | Clippard Instrument Laboratory, Inc. | CT4-pkg | Need 5 hose connectors |
Microinjection Needle Holder | World Precision Instruments | MPH3-10 | Needle holder for 1mm outer diameter microcapillaries |
P-2000 | Sutter Instruments | Any needle puller | |
Photo-Flo 200 Solution | B&H Photo, Video and Audio | BH #KOPF200P MFR #1464510 | wetting agent |
Pressure Gauge | Clippard Instrument Laboratory, Inc. | PG-100 | 0-100 psi gauge |
Reference wick | Sutter Instruments | X050300 | |
Reference wick holder | Sutter Instruments | M100019 | |
Regulator | Clippard Instrument Laboratory, Inc. | 01-Mar | Need #10-32 ports for connections |
Rubber Packing Sheet 6 inx 6 in | Danco | Model # 59849 | |
T fitting | Clippard Instrument Laboratory, Inc. | 15002-2-pkg | |
Threaded Bar | Either a threaded rod or bar with threaded end. Threads must be 10-32. | ||
Urethane tubing | Clippard Instrument Laboratory, Inc. | URH1-0804-BLT-050 |
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