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Method Article
Este protocolo describe el montaje de un sistema neumático para el suministro de aire presurizado a una aguja durante el proceso de biselado de la aguja. El protocolo describe con más detalle el proceso de biselado para crear agujas de microinyección afiladas y cómo medir el tamaño relativo de la abertura de la aguja.
Las agujas de microinyección son una herramienta fundamental en la entrega de reactivos de modificación del genoma, componentes CRISPR (ARN guía, proteína Cas9 y plantilla de donante) y componentes del sistema de transposones (plásmidos y ARNm de transposasa) en embriones de insectos en desarrollo. Las agujas de microinyección afiladas son particularmente importantes durante la administración de estos agentes modificadores, ya que ayudan a minimizar el daño al embrión que se inyecta, aumentando así la supervivencia de estos embriones en comparación con la inyección con agujas no biseladas. Además, el biselado de las agujas produce agujas que son más consistentes de una aguja a otra en comparación con las agujas abiertas rompiendo aleatoriamente la punta de la aguja al rozar la punta contra un objeto (el costado de un cubreobjetos, la superficie del embrión que se va a inyectar, etc.). El proceso de biselado húmedo de agujas de microinyección con aire a presión constante suministrado a la aguja permite a la persona que bisela la aguja saber cuándo la aguja está abierta (presencia de burbujas) y también da una indicación relativa de qué tan grande se ha creado una abertura de la aguja. El tamaño relativo de la abertura en la aguja se puede determinar ajustando la presión de aire suministrada a la aguja hasta que se alcance un equilibrio y las burbujas dejen de fluir desde la punta de la aguja. Cuanto menor sea la presión a la que se alcance el equilibrio, mayor será el tamaño de la aguja; y a la inversa, cuanto mayor sea la presión, menor será el tamaño de la aguja.
La modificación genética de insectos es un proceso desarrollado originalmente en Drosophila por Rubin y Spradling, y a lo largo de los años, este proceso se ha modificado para crear modificaciones genéticas enotras especies. El proceso se basa en la entrega precisa de componentes de modificación microinyectados en embriones en una ventana de tiempo y lugar específicos dentro del embrión en desarrollo 2,3,4. Las agujas afiladas de microinyección son una herramienta crítica en el proceso de modificación genética de algunos insectos, como los mosquitos 4,5,6,7,8,9 y los flebótomos10, mientras que no son tan críticas para otros insectos, como los gusanos de seda11. Las agujas afiladas suelen ser un factor clave entre el éxito y el fracaso cuando se trata de crear un insecto modificado genéticamente 2,4. Por lo general, las agujas de vidrio microcapilar se extraen calentando el vidrio hasta el punto en que el vidrio se vuelve elástico, lo que permite que el capilar se convierta en una aguja de punta cerrada que se estrecha. Antes de que se pueda usar la aguja, debe abrirse de manera que se cree una punta afilada para la inyección. Tradicionalmente, las agujas se abren rozando suavemente la punta de la aguja contra algo (el borde de un portaobjetos, o el embrión, etc.) que hace que una pequeña cantidad de vidrio se desprenda de la punta, creando aleatoriamente una punta afilada 2,3. Un proceso un poco menos aleatorio es el biselado en seco, donde la aguja se baja rápidamente sobre una placa abrasiva giratoria ópticamente plana durante un corto período de tiempo, lo que hace que una pequeña cantidad de vidrio se desgaste de la punta de la aguja, creando una punta afilada. El biselado en seco es un poco menos aleatorio que rozar la punta de la aguja contra algo. El protocolo que se describe a continuación lleva el proceso de biselado un paso más allá al suministrar aire comprimido a la aguja que se está biselando y biselarla debajo de una capa líquida para que las burbujas sean visibles tan pronto como se abra la aguja. Este protocolo detalla un método para producir agujas de microinyección afiladas y confiables. El biselado debajo de una capa líquida es una mejora con respecto a la rotura aleatoria de la aguja como se describió anteriormente, y el biselado en seco porque el usuario recibe comentarios sobre el proceso de biselado, lo que le permite a la persona que bisela saber cuándo la aguja está abierta y qué tan grande es la abertura de la aguja. Conocer el tamaño relativo de la abertura de la punta de la aguja puede permitir a la persona que bisela crear agujas con diferentes tamaños de apertura. Varios tamaños de apertura de aguja tienen diferentes ventajas; Por ejemplo, los tamaños de abertura de aguja más grandes pueden acomodar mezclas de inyección de alta viscosidad, mientras que las agujas de apertura más pequeñas causan menos daño al embrión que se inyecta.
El aire se suministra a la aguja mediante un regulador y un sistema de tubos de uretano basado en un sistema de inyección modificado regulado por presión de aire2. Mientras que el aire se suministra a la aguja a una presión constante, la aguja se bisela bajo una capa de líquido. El proceso de biselado se compone de un proceso repetido de cinco pasos: 1) bajar la aguja a la superficie abrasiva, 2) permitir que la aguja se bisele durante un corto período de tiempo, 3) elevar la aguja lejos de la placa abrasiva mientras se mantiene debajo de la superficie de la capa líquida, 4) detener el giro de la placa abrasiva para verificar la aparición de burbujas. Si no hay burbujas, se repiten los pasos 1 a 4 hasta que aparezcan burbujas; 5) Una vez que las burbujas están presentes, la presión del aire se puede ajustar para determinar el tamaño relativo de la abertura de la aguja. Cuanto menor sea la presión necesaria para detener la formación de burbujas, mayor será la abertura en la punta de la aguja.
NOTA: El protocolo que se describe a continuación utiliza el biselado microcapilar Sutter BV-10. Sin embargo, este protocolo puede ser modificado para su uso con cualquier modelo microcapilar biselado.
1. Montaje del regulador, manómetro y tubo de suministro de aire
2. Biselado de agujas de borosilicato
3. Determinación del tamaño relativo de la abertura de la aguja biselada
NOTA: La determinación de los tamaños relativos de apertura de la aguja biselada se realiza en el paso 2.13. Los pasos a continuación describen este proceso con más detalle.
El procedimiento descrito anteriormente produce agujas de microinyección consistentemente afiladas. Las agujas afiladas se caracterizan por ser capaces de insertarse en embriones blandos de insectos corion, como los embriones de mosquitos, con poca o ninguna resistencia de la membrana embrionaria. Cuando los embriones de mosquito se microinyectan para la modificación genética, la membrana embrionaria es relativamente elástica. Empujar una aguja desafilada contra la membrana del embri...
La modificación genética de los mosquitos se basa en la microinyección precisa de los materiales de modificación (plásmidos, ARN guía o proteínas) en embriones pre-blastodermo 3,4,5,6,7,8. Cruciales para este proceso son las agujas afiladas que perforan fácilmente el embrión durante ...
El autor no tiene nada que revelar.
El autor desea agradecer a las siguientes personas. El personal del Centro de Transformación de Insectos de la Universidad de Maryland: Channa Aluvihare, Robert Alford y Daniel Gay. Sin su dedicado trabajo, el Centro de Transformación de Insectos no existiría. Vanessa Meldener-Harrell por la revisión de este manuscrito.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
1.0 mm O.D. microcapillaries | World Precision Instruments | ||
Beveler pedestal oil | Sutter Instruments | 008 | |
Bicycle fender clip | VeloOrange | R-clip 4-pack | https://velo-orange.com/products/vo-r-clip-4-pack |
Boom Stand Microscope | AmScope | AMScope 3.5X-90X Trinocular LED Boom Stand Stereo Microscope or equivalent | |
BV-10 Beveler | Sutter Instruments | BV-10 | |
Diamond abrasive plate | Sutter Instruments | 104F | Diamond abrasive plate - extra fine (0.2 µ to 1.0 µ tip sizes) |
Gasket, Buna-N | Clippard Instrument Laboratory, Inc. | 11761-2-pkg | Used to seal connection on T or L connectors, if not already included with these pieces |
Hose Clamp | Clippard Instrument Laboratory, Inc. | 5000-2-pkg | |
Hose connector | Clippard Instrument Laboratory, Inc. | CT4-pkg | Need 5 hose connectors |
Microinjection Needle Holder | World Precision Instruments | MPH3-10 | Needle holder for 1mm outer diameter microcapillaries |
P-2000 | Sutter Instruments | Any needle puller | |
Photo-Flo 200 Solution | B&H Photo, Video and Audio | BH #KOPF200P MFR #1464510 | wetting agent |
Pressure Gauge | Clippard Instrument Laboratory, Inc. | PG-100 | 0-100 psi gauge |
Reference wick | Sutter Instruments | X050300 | |
Reference wick holder | Sutter Instruments | M100019 | |
Regulator | Clippard Instrument Laboratory, Inc. | 01-Mar | Need #10-32 ports for connections |
Rubber Packing Sheet 6 inx 6 in | Danco | Model # 59849 | |
T fitting | Clippard Instrument Laboratory, Inc. | 15002-2-pkg | |
Threaded Bar | Either a threaded rod or bar with threaded end. Threads must be 10-32. | ||
Urethane tubing | Clippard Instrument Laboratory, Inc. | URH1-0804-BLT-050 |
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