Diese Arbeit wurde durch Zuschüsse aus dem National Heart and Lung Institute (R01 HL086582) und der New York Stammzellwissenschaftsfonds (NYSTEM, Vertrag # unterstützt &#160; C024316), um STA und in JoVE Video verwendet wurden von John Nyquist abgeschlossen DDS Abbildungen; Medical Illustrator von State University of New York in Buffalo.

HINWEIS: Dieses Protokoll wurde von der Animal Care und Verwenden Committee an der State University of New York in Buffalo zugelassen. 1. Präoperative Vorbereitung <ol><li> Verwenden Schafe (Dorset Quer, weiblich, ca. 1-3 Jahre alt mit einem Gewicht von 40 bis 60 kg) für die folgende Studie. Verwalten Cyclosporin A (200 mg / Tag), Aspirin (975 mg / Tag) und Coumadin (20-30 mg / Tag) durch den Mund, ab 3 Tage vor der Operation und auch weiterhin für die Dauer aller Studien. </li><li> Stellen Sie sicher, das Schaf hat 12 Stunden vor der Operation (normales Futter = 1,8 kg Heu und 0,4 kg Getreide) gefastet. </li><li> Sterilisieren Sie alle chirurgisches Material werden in einem Autoklav bei 121 ° C und 15 psi für 30 Minuten. </li><li> Setzen Sie die folgenden Elemente in einer Para Exsikkator 48 Stunden vor der Operation: 4 mm Doppler Strömungssonden, 1 mm Ultraschallkristallen, Dauer arteriellen Katheter, Verlängerungsschlauch, und 42 &quot;Tygon Schläuche. HINWEIS: Eine Tabelle mit den relevanten medizinischen Geräten für die notwendigeChirurgie und für die Sterilisation ist in Tabelle 1 aufgeführt. Vorabplatzierung der Instrumente in die Tygon-Schlauch in diesem Schritt wird dazu beitragen, sparen Zeit während der Operation. <ol><li> Beschriften jedes Ende der Sonden, Katheter und Kristalle als links und rechts, falls zutreffend. </li></ol></li></ol> 2. Chirurgische Operation <ol><li> Induzieren Schafe Anästhesie mit Diazepam (0,5 mg / kg) und Ketamin (4 mg / kg) intravenös (IV). Alternativ können Sie Telazol (4 mg / kg) IV. <ol><li> Führen orotracheale Intubation mit einem 8,5 bis 10,0 mm Innendurchmesser Endotrachealtubus mit Manschette 7. </li><li> Verabreichen Inhalationsnarkose durch eine Rückatmungskreislauf mit einem Tidalvolumen Ventilator (7-10 ml / kg) oder eine druckgeregelte Ventilator (15-20 cm H 2 O). Verwenden Sie einen Präzisions Verdampfer zu Isofluran oder Sevofluran in angemessener Höhe (3% -4% zunächst) zu verabreichen, um einen mittleren bis tiefen chirurgischen Narkosestadium zu erreichen. Die minimale alveoläre KonzentrationSchaf ist 1,4% oder 1,9% 8. </li><li> Beurteilen Sie Narkosetiefe durch Beobachtung motorische Reaktion auf Reize, Augenlidreflexe, Augenposition, und die Herzfrequenz. Überwachen der Blutsauerstoffsättigung (95% -100%) mittels Pulsoximetrie, CO 2 -Konzentration (45-55 mmHg) in Ausatmungsgase Verwendung capnography und Aufrechterhaltung der Körpertemperatur während der Prozedur (38,5 bis 39,5 ° C) mit Hilfe eines automatisch regulierten Wärmedecke. </li></ol></li><li> Rasur Wolle aus dem gesamten Hals der Schafe, und über eine Kopfvene, mit einem # 40 Klinge auf Standard-Schneidemaschinen. Bereiten Sie die Haut von beiden Standorten für die Chirurgie mit 70% Isopropylalkohol und 7,5% betadine Peeling gesättigten Gaze. Beginnen Sie mit Alkohol Gaze um die Entfernung von Hautöle zu erleichtern. Wechseln Sie zwischen Betadin und Alkohol Gaze Gaze dreimal. </li><li> Zeigen Schafe auf dem Operationstisch in Rückenlage auf einer Wärmedecke. Übergeben Sie einen mittelgroßen Magensonde für passive Vertreibung der Mageninhalt zu ermöglichen. Verlängern Sie dieSchafs Hals und nutzen unterstützende Polsterung wie nötig, um die Platzierung zu halten. <ol><li> Führen Sie eine abschließende aseptischen Peeling mit 7,5% betadine getränkten Gaze und lassen Sie es für 5 min vor der Operation zu sitzen. </li></ol></li><li> Verabreichen Infusionen (Ringer Lactatlösung oder 0,9% Salzlösung) mit 10 ml / kg / h durch ein Angiokatheter in der Vena cephalica gegeben. Verwalten Sie intraoperative Antibiotika und Analgetika: Procain Penicillin G 6600 U / kg intramuskulär (IM), Gentamicin 1,6 mg / kg IM und Buprenorphin 0,005-0,01 mg iv oder im. </li><li> Machen Sie eine ~ 12 cm langer Schnitt in Längsrichtung über den ventralen Mittellinie Hals mit Elektrokauter. Isolieren linken und rechten Halsschlagadern (~ 6 cm) durch Entfernen des Bindegewebes mit einem stumpfen Dissektionstechnik. Binden Sie ab und ätzen Mikrogefäße Verzweigung von der Halsschlagadern, um Blutungen zu minimieren. </li><li> Pflegen Sterilität durch den Einsatz (eine nicht sterile) OP-Schwester mit grab alle Kabel und Rohre verlegt (Strömungssonde, Ultraschallkristall Leitungen unterstützenund der Katheterschlauch) in die subkutane Schicht der Haut. Verwenden Sie einen stumpfen Trokar, der durch den chirurgisch vorbereitet Schnitt an der dorsolateralen Hals verlässt. <ol><li> Zu erreichen unter der sterilen Tuch und drehen Sie den Kopf der Schafe, so dass die Seite des Halses unter dem Tuch sichtbar gemacht werden. </li><li> Einen 8 cm gekrümmten hemostat tunneln durch den subkutanen Raum zwischen dem ventralen Mittellinie Halsschnitt auf und die Seite des Halses. Öffnen und Schließen der Gefäßklemme, einen Raum breit stumpf sezieren für den Schlauch ~ 1,5 cm. Die Spitzen der Gefäßklemme sollte in der Mitte zwischen den Kopf und die Schultern, ca. 10 cm kaudal des rechten oder linken Ohr befinden. Drehen Sie den Gefäßklemme, so dass die Spitzen in Richtung der oberflächlichen Haut zeigt. </li><li> Zu erreichen unter der sterilen Tuch und einen 1,5 cm Inzision durch die Haut, über die Spitzen der Hämostat mit einer sterilen # 11 Klinge. Visualisieren Sie die Spitzen der Gefäßklemme, um eine klare Exit durch die Haut zu bestätigen. </li><li> Übergeben Sie die Tygon Röhrchen, das einell Kabel und Rohre verlegt durch den subkutanen Tunnel. Halten Sie die Kabel und Schläuche über dem sterilen Tuch. </li><li> Zu erreichen unter der Abdeckung, um die äußere Tygon-Schlauch vom Hals zu entfernen, indem die implantierte Verdrahtung wie es den Hals der Schafe verlässt. Ziehen Sie einzelne Zeilen aus den Schlaufen im subkutanen Raum zu minimieren. Lassen Sie genügend Abstand, um die Instrumente richtig zu befestigen, um die Arterie. </li></ol></li><li> Zeigen 4 mm Doppler-Sonden auf beiden Halsschlagadern und erreichen eine erste Lesung (Abbildung 1). Verabreichen 100 U / kg Heparin IV 30 min vor dem Spannen der Arterie. </li><li> Weiter Heparingabe bei 100 U / kg / h bis zum Ende der Operation. Klemmen Sie die Halsschlagader unter Verwendung von nicht-Brech-Gefäßklemmen und Verbrauchsteuern einen Teil (ca. 4 cm Länge). Die kontralaterale Halsschlag Flußrate erhöht 50% -100%, um den Blutfluß zum Gehirn aufrechtzuerhalten. HINWEIS: Es ist möglich, Längsdehnung durch Rückstoß der Mutterbehälter zu begrenzen, indem Siekürzere Segmente als ersetzt und / oder Dehnung der nativen Arterie mit Gefäßklemmen zu verkürzen Lücke bis zur vollständigen anastomotischen Verfahren abgeschlossen ist. Dies wird helfen, die Spannung auf einzelnen Haltenähte und die implantierte Transplantat zu begrenzen. </li><li> Naht der TEV an Ort und Stelle mit einfachen unterbrochenen Stichen mit 7-0 Prolin ethalloy Doppel bewaffneten Monofilamentnaht. Falls erforderlich, vaskuläre glatte Muskelrelaxantien wie Papaverin (15 mg / ml) oder Nicardipin (1,25 mg / ml) topisch auf das native Vaskulatur um Vasokonstriktion der anastomotischen Naht behindern würde, zu verhindern. HINWEIS: Beginnen Sie, indem Nähte mit ca. 1 mm Abstand. Dies kann von Fall zu Fall variieren. Die Zusammensetzung und Dicke TEV wird die effektive Abstand zwischen Fäden beeinflussen. Da die Dicke des nativen Gewebes oder TEV abnimmt, kann es notwendig sein, um die Nahtmaterialien näher zusammen zu platzieren. <ol><li> Erste Anker vier Punkte des TEV zur nativen Arterie, indem zwei gegenüberliegende stitches sowohl proximalen und distalen Ende (2 -Di). Halten Sie jede Anker mit Hämostatika unterrichtet. HINWEIS: Proximale und distale Beschreibungen sind in Bezug auf die Richtung des Blutflusses durch das Papier. </li><li> Hinzufügen 5-6 weitere Nähte auf der oberflächlichen Seite sowohl des proximalen und distalen Enden, um die Anastomose zu beginnen. (2-Pr). Gleichzeitig drehen sich die Gefäßklemmen 180 Grad. </li><li> Wieder herstellen Spannung auf den Verankerungsnähte. Hinzufügen zusätzlicher (5 bis 6) Nähten an proximalen und distalen Enden auf gedrehten Seite des TEV. </li></ol></li><li> Sobald der TEV fest eingenäht, drehen Sie es wieder in die ursprüngliche Position, und entfernen Sie die Gefäßklemmen ein zu einer Zeit, distalen Klemm ersten. Leichte Blutungen an den Anastomose Websites ist weit verbreitet. Dies kann natürlich nach einigen Minuten der Klemm Release beheben und Umspannen oder erfordern die Platzierung zusätzliche Nähte. Setzen Sie den Doppler-Sonde (Abbildung 3-fl) Wieder auf nativen Arterie proximal um den Blutfluss in die TEV und Monitor Durchfluss. HINWEIS: Erwarten die Strömungsgeschwindigkeiten der linken und rechten Halsschlag nach etwa 15 min äquilibrieren gelassen. Wenn die Strömungsrate auf der Halsschlagader implantiert TEV stetig fällt, ist es möglich, die TEV Blutgerinnung. Andere mögliche Anomalien bezüglich Strom zu Verengung der nativen Arterien proximal oder distal der TEV zurückzuführen. Wenn dies auftritt, kann die Verwendung von zusätzlichen glatten Gefäßmuskelentspannungs angewendet werden, und die ursprünglichen Gefßes sollte zu einer Basaltonus nach 30-60 min nach der Schließung des Gewebes über die Transplantationsstelle zurückzukehren. <ol><li> Wenn gewünscht, auszuschneiden die kontralateralen Halsschlagader und vernähen Sie es an seinen Platz als &quot;Sham&quot; Kontrolle. Dies ist klinisch relevant als Verlassen der rechten Halsschlagader allein und nur Anbringen der Strömungssonde, Ultraschallkristallen und Katheter. Wenn eine scheinbehandelte Kontroll wird gesucht, führen Sie diese, bevor Sie fortfahren mit Schritt 2.11. </li></ol></li><li> Vernähen 1 mm Ultraschallkristalle (3 -CR 1 CR 2) an gegenüberliegenden Seiten des TEV mit 7-0 Prolin. Fädeln Naht durch die Ultraschallkristall Kopf und nähen sich nur auf die Oberflächenschicht des TEV. </li><li> Katheterisierung der Arterie unter Verwendung eines modifizierten 18G-Katheter mit einem Teflon Webleiste (Abbildung 3- Ca &amp; 4A). Setzen Sie den Katheter distal der TEV auf nativen Arteriengewebe. <ol><li> Naht der Knopfleiste an der Arterienwand mit 5/0 Ethibond, um Blutungen zu kontrollieren. Verwenden Cyclohexanon die Microbore Schlauch zum Katheter, die mit Kochsalzlösung gespült worden ist, haften. Verwenden Sie den Schlauch als Erweiterung Linie. </li><li> Verwenden Sie eine 20 G Luer Stub Adapter mit einem Surflo Injection Stecker, um die nach außen gelegt Ende Schlauch (4B) zu versiegeln. , Um die Durchgängigkeit des Katheters zu halten, benötigen Sie das Füllvolumen der Linie und spülen Sie es mit 10 ml Kochsalzlösung und 5.000 U / ml Heparin-Natrium zur Injektion alle 2-3 Tage. </li></ol></li><li> Nehmen die Entfernung zwischen dem Strömungssonde und der Ultraschallkristallen sowie dem Abstand zwischen dem Strömungssonde und dem Katheter. Dies ermöglicht der Pulswellengeschwindigkeit, die in Verbindung mit der Software berechnet werden. Wenn solche Berechnungen nicht benötigt werden, nicht zu implantieren einen Katheter. </li><li> Erhalten eine intraoperative Mess wenn gewünscht, alle implantierten Hardware zu gewährleisten ist funktional (siehe Abschnitt 3). </li><li> Sichern Sie implantierten Leitungen und Leitungen in der Nähe der Muskulatur mit 2/0 Silk und eine Verjüngung Nadel (Abbildung 3). <ol><li> Positionieren Sie den Gefäßströmungssonde Draht parallel zum Schiff, mit der Sonde und dem Schwanz Draht, der sich nach kranial, und dann eine &quot;U-Turn&quot; in Richtung der seitlichen Muskulatur. Sichern des Drahtes an benachbarten Muskulatur, mit 2-0 Seide auf einem Kegel Nadel an zwei Orten, so daß der Draht oder die Strömungssonde ist nicht in der Lage, jede Belastung auf das Gefäß legen. Achten Sie darauf, Nähte anliegen, aber nicht überdrehen und strangulieren musculatur (Abbildung 3). </li><li> Naht der Kristalldrähte und arterielle Katheterleitung zur lateralen Muskulatur, so dass für ~ 1,5 cm von schlaff, ähnlich zu vorhergehenden Schritte zum Befestigen Strömungssonde (Abbildung 3). </li><li> Gruppieren Sie alle Kabel und Leitungen zusammen und verankern sie Muskulatur, kurz bevor Sie verlassen durch subkutanen Tunnel, ähnlich wie bei vorherigen Schritte. </li></ol></li><li> Schließen Sie die Operationsstelle mit einem 2-0 Vicryl Nahtmaterial in Schichten mit einer fortlaufenden Naht Muster auf Armaturenbrett und subdermale, läuft Matratze Stich auf der Haut (Armaturenbrett, nicht schneidenden Nadel, Haut, Schneiden Nadel). Schließen Sie den 1,5 cm Schnitt am Rücken Hals um die exteriorisierten Kabel und Leitungen, mit 2/0 Vicryl und einem Schneid Nadel. </li><li> Ort Strömungssondendrähte, Katheterleitungen und Ultraschallkristall Drähte in einen Beutel (10 cm x 10 cm), die fest an der Haut des Schaf (5 - nach Wiederherstellung) vernäht wird. </li><li> Allmählich entwöhnen die Schafe aus der Anästhesieund das Atemvolumen Ventilator dann extubieren die Schafe, wenn die Spontanatmung wieder aufgenommen wird. Entfernen Sie die Angiokatheter in die V. cephalica und Verband bei Bedarf eingesetzt. </li><li> Verbinden Sie den Hals mit Dreifach-antibiotische Salbe auf die Einschnitte eine Telfa Pad, Spannwalze Gaze und elasticon. </li><li> Verwalten postoperativen Analgesie: Flunixinmeglumin 2,2 mg / kg IM einmal während der Wiederherstellung, dann 1,1 mg / kg IM einmal täglich für zwei Tage, Buprenorphin 0,005 bis 0,01 mg iv oder im zweimal am Tag für einen Tag. </li></ol> 3. In-vivo-Überwachung <ol><li> Zeigen Schafe in mobilen Wagen, um die ordnungsgemäße Zurückhaltung zu gewährleisten. Auf diese Weise können die Schafe, ohne die Hardware ruhig und bewusst zu bleiben. Möglicherweise müssen Sie Schafe den Warenkorb 30 min vor Einholung Instrumentenaufnahmen akklimatisieren 2 oder 3 mal. </li><li> Entfernen Sie alle Kabel und Leitungen von Beutel und eine Verbindung zu den Überwachungseinrichtungen. Schließen Strömungssonde an einen Durchflussmesser, 1 mm Ultraschallkristalle TRB angeschlossen-USB-Box und Katheterleitungen Druckaufnehmer. Ein Flussdiagramm dieses Setup wird (Abbildung 6). </li><li> Kalibrieren Strömungssonden und Drucksensoren vor der Datenerfassung. HINWEIS: Aufgrund der potentiellen Variabilität zwischen den Softwareversionen und Unterschiede in der Ausrüstung, Kalibrierungen und Einstellungen werden von Fall zu Fall variieren. </li><li> Nutzen Sie ein Oszilloskop an die Feinabstimmung des Sonometrics Kristallmessung, nach dem Protokoll des Herstellers. </li><li> Datensätzen mit Computer-Software (Abbildung 7). Spuren in der oberen Hälfte der Figur 7 in der Farbe weiß entspricht dem implantierten TEV, während Spuren in der unteren Hälfte in der roten Farbe entspricht der Sham / Native. Sowohl für die TEV und Sham der Flussrate (ml / min), arterieller Blutdruck (mm Hg) und Durchmesser (mm) werden live aufgenommen. </li><li> Nehmen Sie für mindestens 1 min, ohne Störungen. Exportieren Sie diese Daten für eine detailliertere Analyse. Nach der Aufnahme DISCONNect alle Leitungen und den Ort wieder in Beutel auf dem Hals des Schafes vernäht. </li></ol>

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Der Zweck dieses Berichts ist es, ein sicheres und reproduzierbares Verfahren zur Implantat TEVs von Interesse in der Schaf- Halsschlagader ist. Die Mutterhalsschlagadern, die in diesem Modell verwendeten Tiere waren 0,5-0,75 mm Dicke und 4,5 bis 5 mm Außendurchmesser. Die hier beschriebene Operationstechnik wurde zum Implantieren TEVs unterschiedlicher Geometrien messen 0,25-1 mm Dicke, 4-5 mm Außendurchmesser und 4 cm Länge mit großem Erfolg bewährt sich bis zu 3 Monaten Dauer der beabsichtigten Endpunkt erfolgre...

Das Hauptaugenmerk bei der Entwicklung TEVs war es, einen Ersatz für autologes Transplantat Ersatz bieten, wenn autologe Gefäße sind nicht verfügbar und die Gebersicht Morbidität zu begrenzen. Beispielsweise hat die Zahl der koronaren Arterien-Bypass-Operationen pro Jahr in den USA 350.000 überschritten, und die ideale Quelle geeigneter Transplantate bleibt der linken Arteria mammaria interna, linke vordere absteigende Koronararterie und die Vena saphena 1. Da viele Menschen, die unter Gefässkrankheiten leiden, nicht geeignet Arterien und Venen für autologes Transplantat ausgetauscht werden müssen, hat die Entwicklung von TEVs somit ein intensives Forschungsfeld werden seit Jahrzehnten 1-6. Während die Konstruktion und Optimierung von neuen TEVs haben viele Fortschritte durchgemacht, die Berichterstattung über die Operationstechniken eingesetzt, um die TEVs sich nicht ein Thema von so intensiven Diskussion gewesen zu implantieren. Vielmehr werden Protokolle über die Implantation TEVs in Tiermodellen weitgehend linksbis zu Ermittler forschen. Die folgende Manuskript zeigt, wie TEVs durch die Verwendung einer End-zu-End-Anastomose Ansatz zu implantieren. Dieses Verfahren wurde unter Verwendung eines spezifischen anastomotischen Nahtmuster, Stabilisierungsnahttechnik optimiert Längsspannung und der Zugabe von in-vivo-Überwachung Instrumentierung optimiert. Dieses Verfahren wird bei einigen der vielen Variationen, die zuvor verwendet wurden, gegenübergestellt. Darüber hinaus wird beschrieben, wie Sie diese Parameter wie arterieller Blutdruck, TEV Durchmesser / Compliance erwerben und Durchflussrate durch das TEV nach der Operation bis Explantation. Diese Datensammlung eine unverzichtbare Analyse des TEV, während es in dem Verfahren der Umbau ist.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1505">
	<tbody>
		<tr height="43">
			<td dir="LTR" height="43" style="height:43px;width:335px;">Equipment</td>
			<td dir="LTR" style="width:208px;">Manufacturer</td>
			<td dir="LTR" style="width:311px;">Serial/Catalog #</td>
			<td dir="LTR" style="width:363px;">Notes</td>
		</tr>
		<tr height="56">
			<td dir="LTR" height="94" rowspan="2" style="height:94px;width:335px;">Pressure Transducer</td>
			<td dir="LTR" rowspan="2" style="width:208px;">Becton Dickinson</td>
			<td dir="LTR" rowspan="2" style="width:311px;">P23XL-1</td>
			<td dir="LTR" style="width:291px;">1+ (1 for each artery) 
			&#160;Used with water-filled diaphragm domes</td>
		</tr>
		<tr height="172">
			<td dir="LTR" height="172" style="height:172px;width:335px;">Amplifier and transducer box</td>
			<td dir="LTR" style="width:208px;">Gould</td>
			<td dir="LTR" style="width:311px;">5900 Signal Conditioner Cage</td>
			<td dir="LTR" style="width:291px;">1 
			Two transducers and amplifiers should be included in cage. While this specific unit may be discontinued, other commercially available pressure transducers with a BNC/analog output will communicate with the Sonometrics equipment</td>
		</tr>
		<tr height="121">
			<td dir="LTR" height="121" style="height:121px;width:335px;">T403 Console with TS420 perivascular flowmeter module(x2)&#160;</td>
			<td dir="LTR" style="width:208px;">Transonic Systems</td>
			<td dir="LTR" style="width:311px;">T403 module and TS420 (x2)</td>
			<td dir="LTR" style="width:291px;">1 
			Flow probes measuring flow through each of the carotid arteries will connect to each of the TS420 units.&#160;&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="126">
			<td dir="LTR" height="126" style="height:126px;width:335px;">Digital ultrasonic measurement unit</td>
			<td dir="LTR" style="width:208px;">Sonometrics</td>
			<td dir="LTR" style="width:311px;">TR-USB</td>
			<td dir="LTR" style="width:291px;">1</td>
		</tr>
		<tr height="48">
			<td dir="LTR" height="48" style="height:48px;width:335px;">Flow Probe Precision S-Series 4mm</td>
			<td dir="LTR" rowspan="4" style="width:208px;">Transonic Systems Inc.</td>
			<td dir="LTR" rowspan="4" style="width:311px;">MC4PSS-LS-WC100-CM4B-GA</td>
			<td dir="LTR" rowspan="4" style="width:291px;">2</td>
			<td dir="LTR" rowspan="4" style="width:363px;"></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td dir="LTR" height="49" rowspan="2" style="height:49px;width:335px;">1mm&#160; Sonometrics Crystals</td>
			<td dir="LTR" rowspan="2" style="width:208px;">Sonometrics Systems</td>
			<td dir="LTR" rowspan="2" style="width:311px;">1R-38S-20-NC-SH</td>
			<td dir="LTR" style="width:291px;">&#160;2-4 (2 for each artery)</td>
		</tr>
		<tr height="81">
			<td dir="LTR" height="134" rowspan="2" style="height:134px;width:335px;">Catheter for implantation</td>
			<td dir="LTR" style="width:208px;">BD (Becton Dickinson)</td>
			<td dir="LTR" rowspan="2" style="width:311px;">&#160;381447</td>
			<td dir="LTR" style="width:291px;">&#160;1+ (1 for each artery) 
			Catheter is cut and secured to microbore tubing, stylette is utilized for insertion&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td dir="LTR" height="73" rowspan="2" style="height:73px;width:335px;">Tygon Microbore Tubing</td>
			<td dir="LTR" rowspan="2" style="width:208px;">Norton Performance Plastics</td>
			<td dir="LTR" style="width:311px;">(AAQ04127) Formulation S-54-HL</td>
			<td dir="LTR" style="width:291px;">NA (cut to length for an extension set)</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td dir="LTR" height="49" rowspan="2" style="height:49px;width:335px;">Luer Stub Adapter</td>
			<td dir="LTR" style="width:208px;">BD (Becton Dickinson)</td>
			<td dir="LTR" style="width:311px;">427564 (20 gauge)</td>
			<td dir="LTR" style="width:291px;">1+ (1 for each arterial catheter)</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td dir="LTR" height="82" rowspan="2" style="height:82px;width:335px;">Surflo Injection Plug</td>
			<td dir="LTR" rowspan="2" style="width:208px;">Terumo</td>
			<td dir="LTR" rowspan="2" style="width:311px;">SR-IP2</td>
			<td dir="LTR" style="width:291px;">1+ (1 for each arterial catheter)</td>
		</tr>
		<tr height="39">
			<td dir="LTR" height="128" rowspan="2" style="height:128px;width:335px;">Meadox</td>
			<td dir="LTR" rowspan="2" style="width:208px;">PTFE (Teflon) Felt</td>
			<td dir="LTR" rowspan="2" style="width:311px;">19306</td>
			<td dir="LTR" style="width:291px;">NA (cut to size) 
			The PTFE felt used in our studies was discontinued. However, comparable companies such as &#8220;Surgical Mesh&#8221; offer products which are equivalent.&#160;</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

surgical technique for the implantation of tissue engineered vascular grafts and subsequent in vivo monitoring

Die Entwicklung von Tissue Engineered Vessels (TEVs) wird durch die Fähigkeit vorgeschoben, um routinemäßig und effektiv Implantat TEVs (4-5 mm Durchmesser) in einen großen Tiermodell. Ein Schritt-Schritt-Protokoll für interposition Platzierung des TEV und Echtzeit-Digital Beurteilung des TEV und nativen Karotiden wird hier beschrieben. Durch die Implantation von Flusssonden, Katheter und Ultraschallkristallen (fähig In-vivo-Überwachung ermöglicht wird Aufzeichnungs Änderungen implantierter TEVs und nativen Karotiden) zu der Zeit der Operation dynamisch Durchmesser. Nach der Implantation können Forscher arterielle Blutströmungsmuster, invasive Blutdruck und Arteriendurchmesser ergibt Parameter wie Pulswellengeschwindigkeit, Augmentationsindex, Pulsdruck und Einhaltung zu berechnen. Datenerfassung unter Verwendung eines einzelnen Computerprogramms zur Analyse der gesamten Dauer des Experiments durchgeführt. Solche unschätzbaren Daten gibt Einblick in TEV Matrixumbau, dessen resemblance, native / Schein-Kontrollen und Gesamt TEV Leistung in vivo.

Mehr als 30 Schafe, die in diesem Bericht für die Implantation von TEVs beschrieben (im Druck) Operationstechnik 9 unterzogen. Eine Tabelle mit einer Zusammenfassung der jüngsten Schafe Operationen nach Protokolloptimierung sind in Tabelle 2 dargestellt. Alle Schafe nach TEV Implantation mit nicht lebensbedrohliche Komplikationen erholt. Bei einigen Tieren wurde Fibrose im nativen Arterie nahe der Spitze des innewohnenden arteriellen Katheter beobachtet. Eine signifikante Zunahme der Entzü...

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Surgical Technique for the Implantation of Tissue Engineered Vascular Grafts and Subsequent In Vivo Monitoring

Ein Schritt-für-Schritt-Protokoll für die inter-Positions Platzierung von Tissue Engineered Vessels (TEVs) in die Halsschlagader eines Schafes mit End-to-End-Anastomose und digitale Echtzeit-Beurteilung in vivo bis Tieropfer.

Operationstechnik zur Implantation von Tissue Engineered Gefäßprothesen und Folge<em&gt; In-vivo-</em&gt; Überwachung

The development of Tissue Engineered Vessels (TEVs) is advanced by the ability to routinely and effectively implant TEVs (4-5 mm in diameter) into a large ...

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

Surgical Technique for the Implantation of Tissue Engineered Vascular Grafts and Subsequent In Vivo Monitoring

11.6K Aufrufe.  State University of New York Buffalo School of Medicine.  Ein Schritt-für-Schritt-Protokoll für die inter-Positions Platzierung von Tissue Engineered Vessels (TEVs) in die Halsschlagader eines Schafes mit End-to-End-Anastomose und digitale Echtzeit-Beurteilung in vivo bis Tieropfer. 