Die Autoren haben keine Bestätigungen.

Das Protokoll folgt den Richtlinien der University Hospital Zürich menschliche Forschung Ethik-Kommission.
(1) Diagnose von Neuromata und Patientenauswahl
<ol><li>Führen Sie präoperative Nervenblockaden proximal zu den Neurom, um die Diagnose zu bestätigen. Die Blöcke im mittleren Drittel des Unterarms zu beurteilen und mögliche Auslöser der überlappende Innervation Bereiche des SBRN, wie die seitlichen Antebrachial kutanen Nerven (LACN), posterior Membrana Nerv (PIN) und eine dorsale Niederlassung des ulnaren Nerv ausschließen 10.</li>
	<li>Operieren Sie nur bei Patienten mit erheblichen Schmerzen Reduktion (mindestens 5 Punkte auf die visuelle Analog Skala (VAS) für Schmerz)11.</li>
</ol>2. chirurgische Vorbereitung
<ol><li>Der Patient Nahrung oder Flüssigkeit Zufuhr 6 h vor der Operation zu verbieten.</li>
	<li>Legen Sie den Patienten in der Mitte der chirurgischen Suite auf operative Universaltabelle in Beach Chair Position.</li>
	<li>Legen Sie die betroffene Arm/Hand auf eine Armlehne.</li>
	<li>Bitten Sie die Anästhesisten endotracheal Anästhesie durchführen (Fentanyl 2 µg/kg, Rocuronium 0,6 mg/kg, Propofol 150-250 mg).</li>
	<li>Desinfizieren Sie die Haut mit Povidon-Jod im Bereich der Fettabsaugung (z.B. Innenseite des Oberschenkels bzw. oberen/unteren Bauch) und die Website der Neurom Exzision.</li>
	<li>Abdecken des Patienten mit sterilen OP-Tüchern, verlassen die Website der Fettabsaugung und der Operationsstelle ausgesetzt.</li>
</ol>3. Tumeszenz Fettabsaugung
<ol><li>Stellen Sie mehrere kleine Stich (Punktion) Einschnitte von ca. 3-5 mm Durchmesser mit einem Skalpell #11-Klinge im Bereich der Fettabsaugung. Einzuschneiden Sie, soweit die subkutane Schicht erreicht wird.</li>
	<li>Injizieren die Tumeszenz-Lösung mit einer verdünnten Lidocain und Epinephrin (500 mL Ringer Laktat-Lösung, 20 mL von 1 % Lidocain und 1 mg Epinephrin) über die 14er Infiltrator (infiltrieren Kanüle) in der subkutanen Fettschicht (3 mm in der Tiefe) in der Region der Fette Ernte.</li>
	<li>Warten Sie mindestens 20 Minuten, so dass die Tumeszenz-Lösung in Kraft treten.</li>
	<li>Haken der 3 mm-sammeln Kanüle (Außendurchmesser 3 mm, Länge 26 cm) zu einem 60-mL-Spritze mit Toomey und Start Ernte Fettgewebe über den Stich Einschnitten. Hinweis: Die bevorzugte Hand steuert kontinuierlich Platzierung und natürlich der Kanüle.</li>
	<li>Ziehen Sie den Kolben der Spritze Toomey zurück bis 60-mL-Markierung und legen Sie eine Mücke Klammer entlang der zurückgezogen Kolben um Unterdruck in der Spritze und eine kontinuierliche Vakuum Schöpfung durch die dominante Hand zu vermeiden.</li>
	<li>Ernten Sie mindestens 220 mL des Fettgewebes durch die Positionierung der Toomey Spritzen in einer vertikalen Position in der zur Verfügung gestellten Toomey Spritze Stand; Dadurch kann die Ablagerung von Fett und Trennung von der Flüssigkeit.</li>
	<li>Achten Sie besonders auf eine gute Qualität Fett Transplantat ohne erhebliche Menge an Blut zu erhalten. Hinweis: Ändern der Region der Fettabsaugung, wenn Inhalte augmented Blut bemerkt wird.</li>
	<li>Naht die Stich-Einschnitte mit einfachen Stichen und Druck nach Bedarf (z.B. Druckfestigkeit Gürtel).</li>
	<li>Übertragen Sie die Lipoaspirate in eine Einweg-sterile Einweg Set des Isolationssystems.</li>
	<li>Halten Sie eine Toomey Spritze mit Lipoaspirate im mitgelieferten Ständer um das Fett Bruchteil für spätere Lipofilling zu erhalten.</li>
</ol>(4) Fettgewebe Verarbeitung
<ol><li>Schließen Sie das sterile Verbrauchsmaterial Set. Hinweis: Das Trennsystem (siehe Tabelle der Materialien) die Vollständigkeit durch einen nassen Test bestätigt.</li>
	<li>Folgen Sie den Anweisungen auf dem Display. Hinweis: Der Prozess ist meist Software gesteuert und erfordert nur die manuelle Bestätigung für die aufgelisteten Schritte unten durch Drücken der Tasten "weiter" oder "zurück" auf dem Bedienfeld. Die Lipoaspirate wird in den Gewebe-Sammlung-Behälter überführt. Die Lipoaspirate ist im Gewebe Sammlung Kanister gewogen und automatisch mit Ringer Laktat-Lösung gereinigt, um die verbleibende Blutzellen und Benetzung Lösung zu entfernen.</li>
	<li>Bei Bedarf fügen Sie mehr Fett hinzu. Hinweis: Je nach Gewicht des geernteten Fettgewebe das Trennsystem fordert den Benutzer auf mehr Fett hinzufügen oder es berechnet die Höhe der zusätzlichen Enzym Reagenz hinzu.</li>
	<li>Fügen Sie die erforderliche Menge an Enzym Reagenz Aufforderung durch das Trennsystem. Hinweis: Während des Prozesses der enzymatischen Verdauung, ist Trennung von Lipid und der SVF erreicht. Dabei ist das Gewebe in eine oszillierende Bewegung. Nach die enzymatische Verdauung abgeschlossen ist, wird der SVF automatisch in die Zentrifuge Kammer für Zellkonzentration übertragen. In der Zentrifuge Kammer der SVF konzentriert sich auf eine Zelle Pellet (Zentrifuge ist ca. 3.000 x g). Zu guter Letzt durchläuft die Zelle Pellet mehrere Wäschen mit Ringer Laktat-Lösung, passives Enzym in der Ausgabe zu reduzieren. Wenn der Vorgang abgeschlossen ist, erhält man 5 mL klare Flüssigkeit (SVF).</li>
</ol>(5) chirurgischen Eingriff
<ol><li>Das Neurom zu nähern, stellen Sie einen Hautschnitt über dem zuvor diagnostizierten Neurom Aufstellungsort im distalen Drittel des Unterarms.</li>
	<li>Unter der Verwendung von chirurgischen binokularen Lupen Lupe Brille (2.5-3.5 X) weiterhin das subkutane Gewebe zu sezieren und identifizieren der beteiligten Nerven proximal zu den Neurom.<ol>
<li>Anschließend folgen Sie die Nerven nach distal und identifizieren Sie das Neurom (basierend auf Sichtprüfung).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Sobald die volle Ausdehnung der das Neurom klar ist, beginnen Sie, das Neurom durch eine gerade Trans neuronale Scherenschnitt Verbrauchssteuern. Wenn kein Neurom identifiziert wird, wird nur die Neurolyse des Nervus durchgeführt.</li>
	<li>Fahren Sie mit der Neurolyse des restlichen Nerven stumpfes bis 3 cm proximal bis zum Handgelenk. Hinweis: Der Nerv Stumpfende sollte in der Mitte der wichtigsten Schnitt befinden.</li>
	<li>Zwei bis vier kleine Punktion (Stab) Einschnitte (1 mm Durchmesser) mit einem Skalpell durch epidermale und dermale Cutis um den wichtigsten Ansatz zu vereinbaren.</li>
	<li>Legen Sie zwei bis vier stumpfe Kanülen (16-Gauge, Länge 9 cm) über Stich Einschnitte perineuralen auf den Stumpf. Hinweis: Die Spitze der Kanülen sollten auf den Nerv stumpf gerichtet sein.</li>
	<li>Sichern Sie die Kanülen an Stelle von selbstklebenden Verband.</li>
	<li>Die Stiche um die Kanülen und lassen Sie das Nahtmaterial an Ort und Stelle ohne Sicherung des Knotens.</li>
	<li>Naht der Hauptschnitt eng um den Abfluss von Pfropfen zu verhindern. Hinweis: Stellen Sie sicher, dass Kanülen in Situverbleiben.</li>
</ol>6. Anwendung des SVF angereichertem Fett Transplantats
Hinweis: Nach ca. 1,5 Stunden von Verarbeitung ist die 5 mL der verarbeiteten SVF bereit zur weiteren Verwendung.
<ol><li>Aspirieren Sie 5 mL SVF in einer kommunizierenden 10-mL-Spritze.</li>
	<li>Aspirieren Sie auf die gleiche Weise 2 mL die sedimentierten Lipid-Anteil in der gegnerischen 10-mL-Spritze.</li>
	<li>Mischen Sie 5 mL des SVF mit 2 mL die sedimentierten Lipid-Anteil durch den Wechsel des Kolbens eine Spritze zurückziehen und den Kolben der kommunizierenden, gegnerischen Spritze herunterziehen, bis ausreichende Durchmischung erreicht ist.</li>
	<li>Teilen Sie das SVF angereichertem Fett Transplantat gleich in zwei bis vier 10 mL Spritzen.</li>
	<li>Verteilen Sie das vorbereitete SVF-angereicherten Fett Transplantat eine nach der anderen gleichermaßen um den Nerv stumpf, indem die Spritzen mit den stumpfen Kanülen. Hinweis: Vor dem Auftragen des Transplantats, sicherzustellen Sie, dass die Kanülen in der richtigen Position gesichert sind und achten Sie darauf, die Kanülen verrücken während der Anwendung der Fett-Transplantat.</li>
	<li>Entfernen Sie vorsichtig die Kanülen.</li>
	<li>Dann kleben Sie die kleine Punktion Einschnitte mit Steri-Strips.</li>
	<li>Die Hand durch die Anwendung einer Schiene in der intrinsischen plus Stellung (metakarpo (MCP) Gelenke gebeugt auf 60-70°, Interphalangealgelenk (IP) Gelenke gestreckt, Daumen in der Faust-Projektion, Handgelenk dorsal Flexion von 25°) zu immobilisieren. Wenn nur Neurolyse des Nervus durchgeführt wird, braucht man keine Schiene und Arm und Handgelenk sind 10 Tage lang bandagiert.</li>
</ol>7. postoperative Patienten Handhabung
<ol><li>Der Patient auf die Post-Narkose Erholung Einheit nach der Operation übertragen und ausreichende Überwachung in der Gemeinde.</li>
	<li>Weiterhin das Handgelenk für 10 Tage nach der Operation zu immobilisieren.</li>
	<li>Die erste Veränderung von Bandagen nach 48 h nach der Operation durchführen und weiterhin in regelmäßigen Abständen (d.h. jeden zweiten Tag bis zur Entlassung).</li>
	<li>Entfernen Sie die Nähte 12-14 Tage postoperativ.</li>
	<li>Durchführen Sie klinische Bewertung von Schmerzen beim Follow-up bei 2, 6, 12 und 36 Monaten.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Mackinnon, S. E., Dellon, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Results+of+treatment+of+recurrent+dorsoradial+wrist+neuromas.">Results of treatment of recurrent dorsoradial wrist neuromas.</a> Ann Plast Surg. 19 (1), 54-61 (1987).</li><li>Hazari, A., Elliot, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Treatment+of+end-neuromas,+neuromas-in-continuity+and+scarred+nerves+of+the+digits+by+proximal+relocation.">Treatment of end-neuromas, neuromas-in-continuity and scarred nerves of the digits by proximal relocation.</a> J Hand Surg Br. 29 (4), 338-350 (2004).</li><li>Goldstein, S. A., Sturim, H. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intraosseous+nerve+transposition+for+treatment+of+painful+neuromas.">Intraosseous nerve transposition for treatment of painful neuromas.</a> J Hand Surg Am. 10 (2), 270-274 (1985).</li><li>Koch, H., Haas, F., Hubmer, M., Rappl, T., Scharnagl, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Treatment+of+painful+neuroma+by+resection+and+nerve+stump+transplantation+into+a+vein.">Treatment of painful neuroma by resection and nerve stump transplantation into a vein.</a> Ann Plast Surg. 51 (1), 45-50 (2003).</li><li>Vaienti, L., Merle, M., Battiston, B., Villani, F., Gazzola, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Perineural+fat+grafting+in+the+treatment+of+painful+end-neuromas+of+the+upper+limb:+a+pilot+study.">Perineural fat grafting in the treatment of painful end-neuromas of the upper limb: a pilot study.</a> J Hand Surg Eur. 38 (1), 36-42 (2013).</li><li>Zuk, P. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multilineage+cells+from+human+adipose+tissue:+implications+for+cell-based+therapies.">Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies.</a> Tissue Eng. 7 (2), 211-228 (2001).</li><li>Fraser, J. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Celution+System:+Automated+Processing+of+Adipose-Derived+Regenerative+Cells+in+a+Functionally+Closed+System.">The Celution System: Automated Processing of Adipose-Derived Regenerative Cells in a Functionally Closed System.</a> Adv Wound Care (New Rochelle). 3 (1), 38-45 (2014).</li><li>Guo, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stromal+vascular+fraction:+A+regenerative+reality?+Part+2:+Mechanisms+of+regenerative+action.">Stromal vascular fraction: A regenerative reality? Part 2: Mechanisms of regenerative action.</a> J Plast Reconstr Aesthet Surg. 69 (2), 180-188 (2015).</li><li>Lutz, B. S., Ma, S. F., Chuang, D. C., Chan, K. H., Wei, F. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interposition+of+a+pedicle+fat+flap+significantly+improves+specificity+of+reinnervation+and+motor+recovery+after+repair+of+transected+nerves+in+adjacency+in+rats.">Interposition of a pedicle fat flap significantly improves specificity of reinnervation and motor recovery after repair of transected nerves in adjacency in rats.</a> Plast Reconstr Surg. 107 (1), 116-123 (2001).</li><li>Calcagni, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+novel+treatment+of+SVF-enriched+fat+grafting+for+painful+end-neuromas+of+superficial+radial+nerve.">The novel treatment of SVF-enriched fat grafting for painful end-neuromas of superficial radial nerve.</a> Microsurgery. , (2016).</li><li>Hawker, G. A., Mian, S., Kendzerska, T., French, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measures+of+adult+pain:+Visual+Analog+Scale+for+Pain+(VAS+Pain),+Numeric+Rating+Scale+for+Pain+(NRS+Pain),+McGill+Pain+Questionnaire+(MPQ),+Short-Form+McGill+Pain+Questionnaire+(SF-MPQ),+Chronic+Pain+Grade+Scale+(CPGS),+Short+Form-36+Bodily+Pain+Scale+(SF-36+BPS),+and+Measure+of+Intermittent+and+Constant+Osteoarthritis+Pain+(ICOAP).">Measures of adult pain: Visual Analog Scale for Pain (VAS Pain), Numeric Rating Scale for Pain (NRS Pain), McGill Pain Questionnaire (MPQ), Short-Form McGill Pain Questionnaire (SF-MPQ), Chronic Pain Grade Scale (CPGS), Short Form-36 Bodily Pain Scale (SF-36 BPS), and Measure of Intermittent and Constant Osteoarthritis Pain (ICOAP).</a> Arthritis Care Res (Hoboken). 63 Suppl. 63, S240-S252 (2011).</li><li>Stokvis, A., van der Avoort, D. J., van Neck, J. W., Hovius, S. E., Coert, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surgical+management+of+neuroma+pain:+a+prospective+follow-up+study.">Surgical management of neuroma pain: a prospective follow-up study.</a> Pain. 151 (3), 862-869 (2010).</li><li>Kolle, S. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enrichment+of+autologous+fat+grafts+with+ex-vivo+expanded+adipose+tissue-derived+stem+cells+for+graft+survival:+a+randomised+placebo-controlled+trial.">Enrichment of autologous fat grafts with ex-vivo expanded adipose tissue-derived stem cells for graft survival: a randomised placebo-controlled trial.</a> Lancet. 382 (9898), 1113-1120 (2013).</li><li>Zhu, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adipocyte+regeneration+after+free+fat+transplantation:+promotion+by+stromal+vascular+fraction+cells.">Adipocyte regeneration after free fat transplantation: promotion by stromal vascular fraction cells.</a> Cell Transplant. 24 (1), 49-62 (2015).</li><li>Eto, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+human+adipose+tissue-resident+hematopoietic+cell+populations+reveals+a+novel+macrophage+subpopulation+with+CD34+expression+and+mesenchymal+multipotency.">Characterization of human adipose tissue-resident hematopoietic cell populations reveals a novel macrophage subpopulation with CD34 expression and mesenchymal multipotency.</a> Stem Cells Dev. 22 (6), 985-997 (2013).</li><li>Premaratne, G. U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stromal+vascular+fraction+transplantation+as+an+alternative+therapy+for+ischemic+heart+failure:+anti-inflammatory+role.">Stromal vascular fraction transplantation as an alternative therapy for ischemic heart failure: anti-inflammatory role.</a> J Cardiothorac Surg. 6, 43 (2011).</li><li>Paik, K. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Studies+in+Fat+Grafting:+Part+V.+Cell-Assisted+Lipotransfer+to+Enhance+Fat+Graft+Retention+Is+Dose+Dependent.">Studies in Fat Grafting: Part V. Cell-Assisted Lipotransfer to Enhance Fat Graft Retention Is Dose Dependent.</a> Plast Reconstr Surg. 136 (1), 67-75 (2015).</li></ol>

Die Autoren haben nichts preisgeben.

Die vorliegende Studie soll methodisch die technischen Aspekte der SVF angereichertem Fett Pfropfung als neuartige Behandlung von symptomatischen Ende-Neuromata veranschaulichen.
Neuromata von der SBRN sind eine chirurgische Erfolgsquote von nur 33 %12zugeordnet. Vaienti Et Al. stellten eine Reihe von günstigen Ergebnissen in frühen Follow-up mit perineuralen Fett Pfropfung (PFG) ohne Zugabe von der SVF bei 8 Patienten mit schmerzhaften Neuro...

Die Verwaltung der symptomatischen Ende-Neuromata von den SBRN bleibt eine Herausforderung mit einer Vielzahl von bestehenden chirurgischen Behandlungen. Vor allem das Neurom herausgeschnitten und der restlichen Nerven stumpf ist in benachbarte Strukturen wie Muskeln,1,2, Knochen3oder Adern4verlegt. Dies wird angenommen, um zu verhindern, die out-sprießen die regenerierenden neuronalen Faszikeln durch Nachahmung das Ambiente einer Ende-Orgel. Keine dieser Techniken erwies sich jedoch überlegen, wie oft hohe Raten von Schmerz Rückfall und unzureichende Schmerzreduktion beobachtet wurden.
Vor kurzem, Fett Pfropfung um den restlichen Nerven stumpf viel versprechenden Ergebnissen geführt und wurde als neue Behandlungsoption für schmerzhafte Ende-Neuromata der oberen Extremität5befürwortete. Neben seiner Tätigkeit als eine mechanische Barriere verhindern anhaltende Bewegung und tippen Sie auf Schmerzen, ist der positive Aspekt von Fett Pfropfung eher auf zellulärer Ebene zurückzuführen. Menschlichen Fettgewebe enthält mehrere Zelltypen, einschließlich Präadipozyten, Mastzellen, Perizyten, Endothelzellen, vaskulären glatten Muskelzellen, Fibroblasten, und Fettgewebe Stammzellen (ADSCs) zusammen mit Blutstammzellen6abgeleitet. Diese heterogene Zellpopulation wird als Adipose-Derived Regeneration Zellen (ADRCs) oder SVF bezeichnet, und erhalten Sie von der Lipoaspirate durch ein Trennsystem (siehe Die Tabelle Materialien) und angewandte Enzym Reagenz (siehe Tabelle der Materialien )7. Der genaue Wirkmechanismus ist noch nicht vollständig verstanden; SVF wurde jedoch Verbesserungen in der Angiogenese, Immunmodulation, Differenzierung und Sekretion von extrazellulären Matrix8zugeordnet.
Die konzentrierte Zellpopulation der SVF ist das Fett Transplantat mit dem Zweck, die Resorptionsrate zu reduzieren und erhöhen das regenerative Potential des dicken Transplantats hinzugefügt, wie neuere Studien Schmerzen Rückfall nach 12 Monaten mit Fett Pfropfung ohne zusätzlichen SVF gezeigt 5. Darüber hinaus bietet die biologische Wirkung auch wohltuende Wirkung auf die Nerven selbst durch die Reduzierung unorganisiert axonalen sprießen der Stumpf9 und spätere Narbe Bolzano die Einklemmung der Nerven führen könnte.
Die erste klinische Studie, SVF angereichertem Fett Pfropfung beschreiben wie eine neuartige chirurgische Option für die Behandlung von symptomatischen Ende-Neuromata des SBRN wurde vor kurzem veröffentlicht10. Im Allgemeinen kann die Technik auf jede Neurom nach versehentlicher oder iatrogene Nervenverletzung Auftritt angewendet werden. Die nachfolgende Studie soll methodisch die technischen Aspekte dieses Verfahrens zu veranschaulichen.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="688">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:331px;">Cytori Celution System</td>
			<td style="width:71px;">Cytori</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">isolation system</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Celase</td>
			<td style="width:71px;">Cytori</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>enyzme reagent</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">liposuction system</td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:331px;">tumescent solution (500 ml Lactated Ringers, 20 ml of 1% lidocaine and 1 mg epinephrine)</td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">14-gauge infiltrator</td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">3 mm-collecting cannula (15, 26, 32 cm)</td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">60 mL Tommey syringes</td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">mosquito clamp</td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Toomey syringe stand</td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:331px;">4 cannulas (fat injecting cannulas 1.5 mm, syringe NO.2, 90 mm)</td>
			<td style="width:71px;">Chalybs</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:331px;">10 mL syringes</td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:331px;">connecting device for syringes</td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:331px;">#11- and #15-blade scalpel</td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:331px;">stevens scissors</td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:331px;">pins pincette</td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:331px;">bipolar electrocautery</td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:331px;">suture material</td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">adhesive dressing</td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">binocular loupes magnifier glasses (2.5-3.5x)</td>
			<td style="width:71px;">Carl Zeiss</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:331px;">Statistical Package for Social Sciences, version 22</td>
			<td>IBM</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

stromal vascular fraction-enriched fat grafting for the treatment of symptomatic end-neuromata

Der Zweck dieser Studie war es, methodisch zu veranschaulichen und markieren Sie die entscheidenden Schritte der Stromazellen vaskulären Bruch (SVF)-angereicherte Fett Pfropfung als eine neuartige Behandlung der symptomatischen Ende-Neuromata der peripheren sensorischen Nerven, und in dieser Studie, insbesondere der der oberflächliche Ast des Nervus radiales (SBRN). Trotz einer Vielzahl von Behandlungsmöglichkeiten sind anhaltende postoperative Schmerzen und gemeinsame Schmerz Rückfall immer noch sehr verbreitet, unabhängig von dem Verfahren bewertet. Das Neurom ist mikrochirurgisch ausgeschnittenen entsprechend zu standardisierten Protokoll. Statt die Verlagerung von der regenerierenden Nerven stumpf im benachbarten anatomischer Strukturen wie Muskeln oder Knochen eine Fett Transplantat ist angewandte Perifocally und fungiert als eine mechanische Barriere. Um Fett Resorptionsrate reduzieren und das regenerative Potential des Transplantats zu steigern, ist die hochkonzentrierte SVF in die Pfropfung integriert. Die SVF ist vom subkutanen Fettgewebes durch enzymatische und mechanische Trennung der Lipoaspirate durch eine spezifische kommerzielle Isolationssystem isoliert. Das SVF angereichertem Fett Transplantat bietet eine mechanische Barriere und verschiedene biologische Wirkungen auf zellulärer Ebene, einschließlich der Verbesserung der Angiogenese, Entzündung und Fibrose. Mechanische und biologische Effekte helfen, unorganisiert axonalen Auswuchs von den Nerven stumpf bei Nervenregeneration zu reduzieren und damit zu verhindern, dass die Wiederholung der schmerzhaften Ende-Neuromata.

Daten wurden analysiert mit Hilfe statistischen Software und als ± Standardabweichung bedeutet vorgestellt. Der Kolmogorov-Smirnov-Test wurde angewandt, um die nichtparametrische Verteilung der Bevölkerung Studie zu überprüfen und bestätigt eine negative empirische Verteilung. Basierend auf die nichtparametrische Natur der Bevölkerung Studie, war der Wilcoxon-Test für Verwandte Proben beschäftigt, präoperative und postoperative Ergebnisse zu vergleichen. Statistischer Signifikanz...

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Stromal Vascular Fraction-enriched Fat Grafting for the Treatment of Symptomatic End-neuromata

Stromazellen vaskuläre Bruchteil angereichertem Fett Pfropfung für die Behandlung von symptomatischen Ende-neuromata

Die Studie soll das technische Verfahren der Stromazellen vaskulären Bruch (SVF) zu illustrieren-Fett Pfropfung als eine neuartige Behandlung der symptomatischen Ende-Neuromata bereichert. Diese Technik bietet Vorteile des mechanischen Barriere und die biologischen Vorgänge auf zellulärer Ebene durch die verarbeiteten und konzentrierte SVF.

The purpose of this study was to methodically illustrate and highlight the crucial steps of stromal vascular fraction (SVF)-enriched fat grafting as a ...

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Research

JoVE Journal

Medicine

7.6K Aufrufe.  University Hospital Zurich. Die Studie soll das technische Verfahren der Stromazellen vaskulären Bruch (SVF) zu illustrieren-Fett Pfropfung als eine neuartige Behandlung der symptomatischen Ende-Neuromata bereichert. Diese Technik bietet Vorteile des mechanischen Barriere und die biologischen Vorgänge auf zellulärer Ebene durch die verarbeiteten und konzentrierte SVF.

Serie: Stromal Vascular Fraction-enriched Fat Grafting for the Treatment of Symptomatic End-neuromata

Experimental Generation of Carcinoma-Associated Fibroblasts (CAFs) from Human Mammary Fibroblasts

Carcinomas are complex tissues comprised of neoplastic cells and a non-cancerous compartment referred to as the 'stroma'. The stroma consists of extracellular matrix (ECM) and a variety of mesenchymal cells, including fibroblasts, myofibroblasts, endothelial cells, pericytes and leukocytes 1-3.
The tumour-associated stroma is responsive to substantial paracrine signals released by neighbouring carcinoma cells. During the disease process, the stroma often becomes populated by carcinoma-associated fibroblasts (CAFs) including large numbers of myofibroblasts. These cells have previously been extracted from many different types of human carcinomas for their in vitro culture. A subpopulation of CAFs is distinguishable through their up-regulation of &alpha;-smooth muscle actin (&alpha;-SMA) expression4,5. These cells are a hallmark of 'activated fibroblasts' that share similar properties with myofibroblasts commonly observed in injured and fibrotic tissues 6. The presence of this myofibroblastic CAF subset is highly related to high-grade malignancies and associated with poor prognoses in patients.
Many laboratories, including our own, have shown that CAFs, when injected with carcinoma cells into immunodeficient mice, are capable of substantially promoting tumourigenesis 7-10. CAFs prepared from carcinoma patients, however, frequently undergo senescence during propagation in culture limiting the extensiveness of their use throughout ongoing experimentation. To overcome this difficulty, we developed a novel technique to experimentally generate immortalised human mammary CAF cell lines (exp-CAFs) from human mammary fibroblasts, using a coimplantation breast tumour xenograft model.
In order to generate exp-CAFs, parental human mammary fibroblasts, obtained from the reduction mammoplasty tissue, were first immortalised with hTERT, the catalytic subunit of the telomerase holoenzyme, and engineered to express GFP and a puromycin resistance gene. These cells were coimplanted with MCF-7 human breast carcinoma cells expressing an activated ras oncogene (MCF-7-ras cells) into a mouse xenograft. After a period of incubation in vivo, the initially injected human mammary fibroblasts were extracted from the tumour xenografts on the basis of their puromycin resistance 11.
We observed that the resident human mammary fibroblasts have differentiated, adopting a myofibroblastic phenotype and acquired tumour-promoting properties during the course of tumour progression. Importantly, these cells, defined as exp-CAFs, closely mimic the tumour-promoting myofibroblastic phenotype of CAFs isolated from breast carcinomas dissected from patients. Our tumour xenograft-derived exp-CAFs therefore provide an effective model to study the biology of CAFs in human breast carcinomas. The described protocol may also be extended for generating and characterising various CAF populations derived from other types of human carcinomas.

Experimental Generation of Carcinoma-Associated Fibroblasts CAFs from Human Mammary Fibroblasts

Carcinoma-associated fibroblasts (CAFs) rich in myofibroblasts present within the tumour stroma, play a major role in driving tumour progression. We developed a coimplantation tumour xengraft model for experimentally generating CAFs from human mammary fibroblasts. The protocol describes how to establish CAF myofibroblasts that acquire an ability to promote tumourigenesis.

Experimentelle Erzeugung von Karzinom-assoziierte Fibroblasten (CAF) von menschlichen Brustkrebszellen Fibroblasten

Carcinomas are complex tissues comprised of neoplastic cells and a non-cancerous compartment referred to as the 'stroma'. The stroma consists of ...

Forschung

Medizin

Orthotopic Aortic Transplantation in Mice for the Study of Vascular Disease

Vascular procedures involving anastomoses in the mouse are generally thought to be difficult and highly dependent on the skill of the individual surgeon. This is largely true, but there are a number of important principles that can reduce the difficulty of these procedures and enhance reproducibility. Orthotopic aortic transplantation is an excellent procedure in which to learn these principles because it involves only two end-to-end anastomoses, but requires good suturing technique and handling of the vessels for consistent success. This procedure begins with the procurement of a length of abdominal aorta from a donor animal, followed by division of the native aorta in the recipient. The procured aorta is then placed between the divided ends of the recipient aorta and sutured into place using end-to-end anastomoses. To accomplish this objective successfully requires a high degree of concentration, good tools, a steady hand, and an appreciation of how easily the vasculature of a mouse can be damaged, resulting in thrombosis. Learning these important principles is what occupies most of the beginner's time when learning microsurgery in small rodents. Throughout this protocol, we refer to these important points. This model can be used to study vascular disease in a variety of different experimental systems1-8. In the context shown here, it is most often used for the study of post-transplant vascular disease, a common long-term complication of solid organ transplantation in which intimal hyperplasia occurs within the allograft. The primary advantage of the model is that it facilitates quantitative morphometric analyses and the transplanted vessel lies contiguous to the endogenous vessel, which can serve as an additional control9. The technique shown here is most often used for mice weighing 18-25 grams. We have accumulated most of our experience using the C57BL/6J, BALB/cJ, and C3H/HeJ strains.

We describe a technique in which a section of the abdominal aorta from a mouse is transplanted orthotopically to just below the renal arteries in an allogeneic or syngeneic recipient. This technique can be useful in studies in which transplantation of large arteries of uniform size is deemed advantageous.

Orthotopen Aortic Transplantation in Mäuse für das Studium der Vascular Disease

Vascular procedures involving anastomoses in the mouse are generally thought to be difficult and highly dependent on the skill of the individual surgeon. ...

Technical Aspects of the Mouse Aortocaval Fistula

Technical aspects of creating an arteriovenous fistula in the mouse are discussed. Under general anesthesia, an abdominal incision is made, and the aorta and inferior vena cava (IVC) are exposed. The proximal infrarenal aorta and the distal aorta are dissected for clamp placement and needle puncture, respectively. Special attention is paid to avoid dissection between the aorta and the IVC. After clamping the aorta, a 25 G needle is used to puncture both walls of the aorta into the IVC. The surrounding connective tissue is used for hemostatic compression. Successful creation of the AVF will show pulsatile arterial blood flow in the IVC. Further confirmation of successful AVF can be achieved by post-operative Doppler ultrasound.

The goal is to produce an arteriovenous fistula that is simple and reproducible. This method does not use sutures or glue adhesive. Therefore the samples can be used with the least amount of foreign materials for analysis.

Technische Aspekte der Maus aortokavaler Fistel

Technical aspects of creating an arteriovenous fistula in the mouse are discussed. Under general anesthesia, an abdominal incision is made, and the aorta ...

Three-dimensional Co-culture Model for Tumor-stromal Interaction

Cancer progression (initiation, growth, invasion and metastasis) occurs through interactions between malignant cells and the surrounding tumor stromal cells. The tumor microenvironment is comprised of a variety of cell types, such as fibroblasts, immune cells, vascular endothelial cells, pericytes and bone-marrow-derived cells, embedded in the extracellular matrix (ECM). Cancer-associated fibroblasts (CAFs) have a pro-tumorigenic role through the secretion of soluble factors, angiogenesis and ECM remodeling. The experimental models for cancer cell survival, proliferation, migration, and invasion have mostly relied on two-dimensional monocellular and monolayer tissue cultures or Boyden chamber assays. However, these experiments do not precisely reflect the physiological or pathological conditions in a diseased organ. To gain a better understanding of tumor stromal or tumor matrix interactions, multicellular and three-dimensional cultures provide more powerful tools for investigating intercellular communication and ECM-dependent modulation of cancer cell behavior. As a platform for this type of study, we present an experimental model in which cancer cells are cultured on collagen gels embedded with primary cultures of CAFs.

Here we present a protocol to co-culture in three-dimensions, which is useful for investigating multicellular interactions and extracellular matrix-dependent modulation of cancer cell behavior. In this experimental model, cancer cells are cultured on collagen gels embedded with human cancer-associated fibroblasts.

Dreidimensionale Co-Kultur-Modell für Tumor-Stroma-Interaktion

Cancer progression (initiation, growth, invasion and metastasis) occurs through interactions between malignant cells and the surrounding tumor stromal ...

Transplantation Into the Mouse Ovarian Fat Pad

Orthotopic transplantation assays in mice are invaluable for studies of cell regeneration and neoplastic transformation. Common approaches for orthotopic transplantation of ovarian surface and tubal epithelia include intraperitoneal and intrabursal administration of cells. The respective limitations of these methods include poorly defined location of injected cells and limited space volume. Furthermore, they are poorly suited for long-term structural preservation of transplanted organs. To address these challenges, we have developed an alternative approach, which is based on the introduction of cells and tissue fragments into the mouse fat pad. The mouse ovarian fat pad is located in the immediate vicinity of the ovary and uterine tube (aka oviduct, fallopian tube), and provides a familiar microenvironment for cells and tissues of these organs. In our approach fluorescence-labeled mouse and human cells, and fragments of the uterine tube are engrafted by using minimally traumatic dorsal incision surgery. Transplanted cells and their outgrowths are easily located in the ovarian fat pad for over 40 days. Long-term transplantation of the entire uterine tube allows correct preservation of all principle tissue components, and does not result in adverse side effects, such as fibrosis and inflammation. Our approach should be uniquely applicable for answering important biological questions such as differentiation, regenerative and neoplastic potential of specific cell populations. Furthermore, it should be suitable for studies of microenvironmental factors in normal development and cancer.

We describe an ovarian fad pad transplantation assay suitable for studies of normal and transformed epithelia of the female reproductive tract. The mouse fat pad allows transplantation of large tissue fragments, is easily accessible for surgery and imaging, and provides the most favorable native environment for tissues of M&#252;llerian origin.

Transplantation in die Maus Ovarian Fat Pad

Orthotopic transplantation assays in mice are invaluable for studies of cell regeneration and neoplastic transformation. Common approaches for orthotopic ...

Network Analysis of Foramen Ovale Electrode Recordings in Drug-resistant Temporal Lobe Epilepsy Patients

Approximately 30% of epilepsy patients are refractory to antiepileptic drugs. In these cases, surgery is the only alternative to eliminate/control seizures. However, a significant minority of patients continues to exhibit post-operative seizures, even in those cases in which the suspected source of seizures has been correctly localized and resected. The protocol presented here combines a clinical procedure routinely employed during the pre-operative evaluation of temporal lobe epilepsy (TLE) patients with a novel technique for network analysis. The method allows for the evaluation of the temporal evolution of mesial network parameters. The bilateral insertion of foramen ovale electrodes (FOE) into the ambient cistern simultaneously records electrocortical activity at several mesial areas in the temporal lobe. Furthermore, network methodology applied to the recorded time series tracks the temporal evolution of the mesial networks both interictally and during the seizures. In this way, the presented protocol offers a unique way to visualize and quantify measures that considers the relationships between several mesial areas instead of a single area.

This protocol describes a procedure to track the evolution of mesial network measures in temporal lobe epilepsy (TLE) patients. It is based on the combination of intracranial recordings with a novel numerical technique for data analysis. Specifically, we present a protocol for network analyses of foramen ovale recordings.

Netzwerkanalyse von Foramen Ovale Elektrode Recordings in Resistente Temporallappen Epilepsie-Patienten

Approximately 30% of epilepsy patients are refractory to antiepileptic drugs. In these cases, surgery is the only alternative to eliminate/control ...

Trans-Tympanic Drug Delivery for the Treatment of Ototoxicity

The systemic administration of protective agents to treat drug-induced ototoxicity is limited by the possibility that these protective agents could interfere with the chemotherapeutic efficacy of the primary drugs. This is especially true for the drug cisplatin, whose anticancer actions are attenuated by antioxidants which provide adequate protection against hearing loss. Other current or potential otoprotective agents could pose a similar problem, if administered systemically. The application of various biologicals or protective agents directly to the cochlea would allow for high levels of these agents locally with limited systemic side effects. In this report, we demonstrate a trans-tympanic method of delivery of various drugs or biological reagents to the cochlea, which should enhance basic science research on the cochlea and provide a simple way of directing the use of otoprotective agents in the clinics. This report details a method of trans-tympanic drug delivery and provides examples of how this technique has been used successfully in experimental animals to treat cisplatin ototoxicity.

We present a technique for localized administration of drugs through the trans-tympanic route into the cochlea. Drug delivery through this route would not interfere with the anti-cancer efficacy of the chemotherapeutic drugs such as cisplatin.

Trans-Trommelfells Drug-Delivery für die Behandlung von Ototoxizität

The systemic administration of protective agents to treat drug-induced ototoxicity is limited by the possibility that these protective agents could ...

Clinical Protocol of Producing Adipose Tissue-Derived Stromal Vascular Fraction for Potential Cartilage Regeneration

Osteoarthritis (OA) is one of the most common debilitating disorders.&#160;Recently, numerous attempts have been made to improve the functions of the knees by using different forms of mesenchymal stem cells (MSCs). In Korea, bone marrow concentrates and cord blood-derived stem cells have been approved by the Korean Food and Drug Administration (KFDA) for cartilage regeneration. In addition, an adipose tissue-derived stromal vascular fraction (SVF) has been allowed by the KFDA for joint injections in human patients. Autologous adipose tissue-derived SVF contains extracellular matrix (ECM) in addition to mesenchymal stem cells. ECM excretes various cytokines that, along with hyaluronic acid (HA) and platelet-rich plasma (PRP) activated by calcium chloride, may help MSCs to regenerate cartilage and improve knee functions. In this article, we presented a protocol to improve knee functions by regenerating cartilage-like tissue in human patients with OA. The result of the protocol was first reported in 2011 followed by a few additional publications. The protocol involves liposuction to obtain autologous lipoaspirates that are mixed with collagenase. This lipoaspirates-collagenase mixture is then cut and homogenized to remove large fibrous tissue that may clog up the needle during the injection. Afterwards, the mixture is incubated to obtain adipose tissue-derived SVF. The resulting adipose tissue-derived SVF, containing both adipose tissue-derived MSCs and remnants of ECM, is injected into knees of patients, combined with HA and calcium chloride activated PRP. Included are three cases of patients who were treated with our protocol resulting in improvement of knee pain, swelling, and range of motion along with MRI evidence of hyaline cartilage-like tissue.

Here, we present a protocol to produce an adipose tissue-derived stromal vascular fraction and its application to improve knee functions by regenerating cartilage-like tissue in human patients with osteoarthritis.

Klinisches Protokoll zur Herstellung von Fettgewebe abgeleitet Stromazellen vaskulären Bruchteil für potenzielle Knorpelregeneration

Osteoarthritis (OA) is one of the most common debilitating disorders.&#160;Recently, numerous attempts have been made to improve the functions of the ...

Isolation of Adipose Derived Regenerative Cells for the Treatment of Erectile Dysfunction Following Radical Prostatectomy

Stem cells are used in many research areas within regenerative medicine in part because these treatments can be curative rather than symptomatic. Stem cells can be obtained from different tissues and several methods for isolation have been described. The presented method for the isolation of adipose-derived regenerative cells (ADRCs) can be used within many therapeutic areas because the method is a general procedure and, therefore, not limited to erectile dysfunction (ED) therapy. ED is a common and serious side effect to radical prostatectomy (RP) since ED often is not well treated with conventional therapy. Using ADRC&#8217;s as treatment for ED has attracted great interest due to the initial positive results after a single injection of cells into the corpora cavernosum. The method used for the isolation of ADRC&#8217;s is a simple, automated process, that is reproducible and ensures a uniform product. Furthermore, the sterility of the isolated product is ensured because the entire process takes place in a closed system. It is important to minimize the risk of contamination and infection since the stem cells are used for injection in humans. The whole procedure can be done within 2.5-3.5 hours and does not require a classified laboratory which eliminates the need for shipping tissue to an off-site. However, the procedure has some limitations since the minimum amount of drained lipoaspirate for the isolation device to function is 100 g.

Precise disclosure of methods and protocols is crucial for large scale uptake of stem cell therapies. Here, we present a protocol to isolate adipose-derived regenerative cells, used for a single intracavernous injection as treatment of erectile dysfunction (ED) following radical prostatectomy (RP).

Isolierung von adipös abgeleiteten regenerativen Zellen zur Behandlung der erektilen Dysfunktion nach radikaler Prostatektomie

Stem cells are used in many research areas within regenerative medicine in part because these treatments can be curative rather than symptomatic. Stem ...

Establishing a Swine Model of Post-myocardial Infarction Heart Failure for Stem Cell Treatment

Although advances have been achieved in the treatment of heart failure (HF) following myocardial infarction (MI), HF following MI remains one of the major causes of mortality and morbidity around the world. Cell-based therapies for cardiac repair and improvement of left ventricular function after MI have attracted considerable attention. Accordingly, the safety and efficacy of these cell transplantations should be tested in a preclinical large animal model of HF prior to clinical use. Pigs are widely used for cardiovascular disease research due to their similarity to humans in terms of heart size and coronary anatomy. Therefore, we sought to present an effective protocol for the establishment of a porcine chronic HF model using closed-chest coronary balloon occlusion of the left circumflex artery (LCX), followed by rapid ventricular pacing induced with pacemaker implantation. Eight weeks later, the stem cells were administered by intramyocardial injection in the peri-infarct area. Then the infarct size, cell survival, and left ventricular function (including echocardiography, hemodynamic parameters, and electrophysiology) were evaluated. This study helps establish a stable preclinical large animal HF model for stem cell treatment.

We sought to establish a swine model of heart failure induced by left circumflex artery blockage and rapid pacing to test the effect and safety of intramyocardial administration of stem cells for cell-based therapies.

Erstellung eines Schweinemodells für postmyokarde Infarkt-Herzinsuffizienz für die Stammzellbehandlung

Although advances have been achieved in the treatment of heart failure (HF) following myocardial infarction (MI), HF following MI remains one of the major ...