Nachweis des SARS-CoV-2-Virus durch reverse Transkriptionsschleifen-vermittelte isotherme Amplifikation

Unsere Forschung zielt darauf ab, LAMP als prädiagnostischen Test zu standardisieren, der für Feld- oder Primärversorgungseinrichtungen ohne fortschrittliche Laborinfrastruktur geeignet ist. Wir sind bestrebt, die Verwendung von lokal produzierbaren Puffern und alternativen Farbstoffen zu fördern und so die Abhängigkeit von importierten kommerziellen Kits zu verringern. Derzeit ist CRISPR-Cas ein effizientes System, das bei der Entwicklung schneller, spezifischer und sensitiver Diagnosemethoden für Krankheitserreger eingesetzt wird.

Jetzt verfügt dieses System über eine breite Palette von Ergänzungen zum Nachweis von RNA- oder DNA-Zielen in verschiedenen Proben von Interesse. Die aktuellen experimentellen Herausforderungen bestehen darin, eine Non-Target-Amplifikation aufgrund von Amplikonkontamination und Primärzellen zu verhindern, insbesondere bei langen Primern, die zur Dimerbildung neigen. Darüber hinaus zielen wir darauf ab, optimale Reaktionsbedingungen zu bestimmen, um eine visuell unterscheidbare Farbänderung des Farbstoffs zu erreichen.

Sobald sie standardisiert und vollständig validiert ist, kann diese Methode einfach implementiert und innerhalb von 60 Minuten kostengünstig und mit kostengünstigen Geräten an jedes Labor oder jeden Point-of-Care angepasst werden, um fast jeden Krankheitserreger nachzuweisen. Daher kann es potenziell in Primärversorgungszentren eingesetzt werden, um eine rechtzeitige, epidemiologische Überwachung durchzuführen. Unsere multidisziplinäre Gruppe konzentriert sich auf die Entdeckung von Molekülen aus einheimischen kolumbianischen Pflanzen und versucht, das Potenzial zu identifizieren, die Replikation von Viren wie Dengue, Zika oder SARS-COVID-2 zu hemmen.

Darüber hinaus führen wir Studien durch, um molekulardiagnostische Methoden für diese Viren zu entwickeln.