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* Estos autores han contribuido por igual
La adaptación metabólica es fundamental para las células T, ya que dicta la diferenciación, la persistencia y la citotoxicidad. Aquí, se presenta un protocolo optimizado para monitorear la respiración mitocondrial en células T primarias humanas diferenciadas por citoquinas ex vivo .
Durante la activación, el metabolismo de las células T se adapta a los cambios que afectan su destino. Un aumento en la fosforilación oxidativa mitocondrial es indispensable para la activación de las células T, y la supervivencia de las células T de memoria depende de la remodelación mitocondrial. En consecuencia, esto afecta el resultado clínico a largo plazo de las inmunoterapias contra el cáncer. Los cambios en la calidad de las células T a menudo se estudian mediante citometría de flujo utilizando marcadores de superficie bien conocidos y no directamente por su estado metabólico. Este es un protocolo optimizado para medir la respiración mitocondrial en tiempo real de las células T humanas primarias utilizando un analizador de flujo extracelular y las citoquinas IL-2 e IL-15, que afectan de manera diferente el metabolismo de las células T. Se ha demostrado que el estado metabólico de las células T se puede distinguir claramente midiendo el consumo de oxígeno al inhibir complejos clave en la vía metabólica y que la precisión de estas mediciones depende en gran medida de la concentración óptima de inhibidores y la estrategia de inyección de inhibidores. Este protocolo estandarizado ayudará a implementar la respiración mitocondrial como un estándar para la aptitud de las células T en el monitoreo y estudio de las inmunoterapias contra el cáncer.
El correcto desarrollo y función de las células T son esenciales para la capacidad del sistema inmunitario de reconocer y responder a los antígenos. La fosforilación oxidativa mitocondrial (OxPhos) cambia según el estado de la célula T. Las células T naïve utilizan predominantemente OxPhos para producir ATP, mientras que las células T activadas experimentan una transición metabólica donde la glucólisis se vuelve dominante1. Después de la fase efectora, el pequeño subconjunto restante de células T de memoria vuelve a un estado metabólico dominado por OxPhos2,3. Los cambios de OxPhos sigu....
Los experimentos se llevaron a cabo bajo las directrices del Hospital Herlev y la Región Capital de Dinamarca.
Nota : este protocolo contiene instrucciones para una ejecución de optimización y una ejecución de ensayos. Está claramente escrito en el texto cuando las instrucciones son para una ejecución de optimización o una ejecución de ensayo. Ejecutar una ejecución de optimización antes de continuar con las ejecuciones de assay
1. Aislamiento mononuclear de sangre periférica humana (PBMC) de abrigos buffy
Una correcta determinación de las propiedades de OxPhos es una herramienta indispensable a la hora de estudiar las células T. Sin embargo, si las condiciones del ensayo no se han optimizado, existe un riesgo sustancial de resultados engañosos o erróneos. En este protocolo, hay un fuerte enfoque en la optimización del número de células por pozo y las concentraciones de oligomicina y FCCP a utilizar. En la configuración descrita, la oligomicina y la FCCP se agregan incrementalmente al mismo pozo, aumentando la conc.......
La cuantificación detallada y correcta de la fosforilación oxidativa es una herramienta indispensable a la hora de describir los estados energéticos de las células T. El estado de aptitud mitocondrial puede estar directamente relacionado con el potencial de activación, supervivencia y diferenciación de las células T1,5. Con este protocolo, es posible determinar las diversas propiedades de la fosforilación oxidativa (ver Tabla 4 para una e.......
Los autores declaran no tener conflicto de intereses.
Kasper Mølgaard y Anne Rahbech recibieron subvenciones de Tømmermester Jørgen Holm og Hustru Elisa f. Hansens Mindelegat. Kasper Mølgaard también recibió una subvención de Børnecancerfonden.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
24-well tissue culture plate | Nunc | 142485 | |
Anti-CD3xCD28 beads | Gibco | 11161D | |
Antimycin A | Merck | A8674 | |
Carbonyl cyanide 4-(trifluoromethoxy)-phenylhydrazone (FCCP) | Sigma-Aldrich | C2920 | |
Cell-Tak | Corning | 354240 | For coating |
Dimethyl sulfoxide (DMSO) | Sigma Aldrich | D9170 | |
Human Serum | Sigma Aldrich | H4522 | Heat inactivated at 56 °C for 30 min |
IL-15 | Peprotech | 200-02 | |
IL-2 | Peprotech | 200-15 | |
Lymphoprep | Stemcell Technologies | 07801 | |
Oligomycin | Merck | O4876 | |
PBS | Thermo Fisher | 10010023 | |
RPMI 1640 | Gibco-Thermo Fisher | 61870036 | |
Seahorse Calibrant | Agilent Technologies | 102416-100 | |
Seahorse XF 1.0 M glucose solution | Agilent Technologies | 103577-100 | |
Seahorse XF 100 mM pytuvate solution | Agilent Technologies | 103578-100 | |
Seahorse XF 200 mM glutamine solution | Agilent Technologies | 103579-100 | |
Seahorse XF RPMI medium, pH7.4 | Agilent Technologies | 103576-100 | XF RPMI media |
Seahorse XFe96 Analyser | Agilent Technologies | Flux analyzer | |
Seahorse XFe96 cell culture microplates | Agilent Technologies | 102416-100 | XF cell culture plate |
Seahorse XFe96 sensor cartridge | Agilent Technologies | 102416-100 | |
Sodium Bicarbonate concentrate 0.1 M (NaHCO3) | Sigma Aldrich | 36486 | |
Sodium Hydroxide solution 1 N (NaOH) | Sigma Aldrich | S2770-100ML | |
X-VIVO 15 | Lonza | BE02-060F | |
T cell beads magnet DynaMag-2 Magnet | Thermo Fisher | 12321D | |
Seahorse wave | Flux analyzer software |
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