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Este protocolo describe un modelo de acumulación de lipofuscina en cultivos epiteliales pigmentarios (EPR) humanos altamente diferenciados y polarizados y un ensayo de fagocitosis de segmento externo (SG) mejorado para detectar la capacidad total de consumo/degradación de SG del EPR. Estos métodos superan las limitaciones de los modelos anteriores de lipofuscina y los ensayos clásicos de fagocitosis del segmento externo de persecución de pulsos.
La fagocitosis diaria de los segmentos externos de los fotorreceptores por el epitelio pigmentario de la retina (EPR) contribuye a la acumulación de un pigmento de envejecimiento intracelular denominado lipofuscina. La toxicidad de la lipofuscina está bien establecida en la enfermedad de Stargardt, la degeneración retiniana hereditaria más común, pero es más controvertida en la degeneración macular relacionada con la edad (DMAE), la principal causa de ceguera irreversible en el mundo desarrollado. Determinar la toxicidad de la lipofuscina en humanos ha sido difícil, y los modelos animales de Stargardt tienen una toxicidad limitada. Por lo tanto, se necesitan modelos in vitro que imiten el EPR humano in vivo para comprender mejor la generación, eliminación y toxicidad de la lipofuscina. La mayoría de los modelos de lipofuscina de cultivo celular hasta la fecha han estado en líneas celulares o han implicado alimentar al EPR con un solo componente de la mezcla compleja de lipofuscina en lugar de fragmentos/puntas de todo el segmento externo de los fotorreceptores, lo que genera un modelo de lipofuscina más completo y fisiológico. Aquí se describe un método para inducir la acumulación de material similar a la lipofuscina (denominado material de autofluorescencia no digerible, o UAM) en RPE prenatal humano primario altamente diferenciado (hfRPE) y RPE derivado de células madre pluripotentes inducidas (iPSC). La UAM se acumuló en cultivos mediante la alimentación repetida de fragmentos de SG tratados con luz ultravioleta absorbidos por el EPR a través de fagocitosis. También se discuten las formas clave en que UAM se aproxima y difiere de la lipofuscina in vivo . Acompañando a este modelo de acumulación similar a la lipofuscina, se introducen métodos de imagen para distinguir el amplio espectro de autofluorescencia de los gránulos de UAM de la tinción concurrente de anticuerpos. Finalmente, para evaluar el impacto de UAM en la capacidad de fagocitosis del EPR, se ha introducido un nuevo método para cuantificar la captación y descomposición de fragmentos / puntas del segmento externo. Denominado "capacidad consuntiva total", este método supera posibles interpretaciones erróneas de la capacidad de fagocitosis del EPR inherente a los ensayos clásicos de "persecución de pulsos" del segmento externo. Los modelos y técnicas introducidos aquí se pueden utilizar para estudiar las vías de generación y eliminación de lipofuscina y la toxicidad putativa.
El epitelio pigmentario de la retina (EPR) proporciona un soporte crítico para los fotorreceptores suprayacentes, incluida la absorción diaria y la degradación de las puntas o fragmentos del segmento externo de los fotorreceptores (a lo largo de este protocolo, la abreviatura OS significa puntas o fragmentos del sistema operativo en lugar de segmentos externos completos). Esta absorción diaria en el EPR postmitótico eventualmente sobrecarga la capacidad fagolisosomal y conduce a la acumulación de material intracelular autofluorescente no digerible, denominado lipofuscina. Curiosamente, varios estudios también han demostrado que la lipofuscina RPE puede acumularse sin ....
El presente protocolo que implica la adquisición y el uso de tejido humano fue revisado y aprobado por la Junta de Revisión Institucional de la Universidad de Michigan (HUM00105486).
1. Preparación de puntas y fragmentos de segmentos externos fotooxidados
NOTA: Las retinas bovinas adaptadas a la oscuridad se compraron y se enviaron en hielo (consulte la Tabla de materiales). A partir de estas retinas, la SG fue purificada siguiendo un protocolo previamente publicado23.
La configuración para la fotooxidación de la SG se demuestra en la Figura 1Ai. Los portaobjetos recubiertos de politetrafluoroetileno permiten cargar un gran volumen de OS en solución por rectángulo abierto sin extenderse por el resto del portaobjetos. El portaobjetos con OS está contenido dentro de una placa de Petri estéril con la tapa apagada, y se coloca una lámpara UV sobre el portaobjetos como se muestra en la Figura 1Aii. Alternativamente, la diapo.......
Si bien la lipofuscina RPE se ha estudiado durante décadas, su toxicidad se debate 2,9,16,42. Dada la ambigüedad sobre la toxicidad de la lipofuscina de modelos animales11, los modelos in vitro que utilizan EPR humano son valiosos. Se ha descrito una gama de modelos de acumulación de lipofuscina in vitro, pero ninguno ha utilizado tanto la alimentaci.......
Los autores no tienen nada que revelar.
Este trabajo es apoyado, en parte, por subvenciones de la Vitreo-Retinal Surgery Foundation (VRSF), Fight for Sight (FFS) y la International Retinal Research Foundation (IRRF). J.M.L.M. cuenta actualmente con el apoyo de una subvención K08 del Instituto Nacional del Ojo (EY033420). No se utilizaron fondos federales para la investigación de HFT. El apoyo adicional proviene de la Iniciativa James Grosfeld para la DMAE seca y los siguientes donantes privados: Barbara Dunn y Dee & Dickson Brown.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
100 mm cell culture dish | Corning | #353003 | Others also work |
24-well Transwells | Corning | #3470 | |
Anti-LC3 antibody | Cell Signaling Technology | #4801S | 1:1000 dilution |
Anti-rhodopsin antibody 1D4 | Abcam | #5417 | 1:1000 dilution. Epitope is C-terminal. |
Anti-rhodopsin antibody 4D2 | EnCor Biotech | MCA-B630 | 1:5000 dilution for western blot, 1:1000 dilution for immunostaining. Epitope is N-terminal. |
Autofluorescence quencher | Biotium | #23007 | TrueBlack Lipofuscin Autofluorescence Quencher |
Autofluorescence quencher | Vector Laboratories | SP-8400 | Vector TrueVIEW Autofluorescence Quenching Kit |
Bodipy 493/503 | Life Technologies | D3922 | |
Cholesterol esterase | Life Technologies | From A12216 kit | |
Confocal microscope | Leica | Leica Stellaris SP8 with FALCON module | |
Dark-adapted bovine retinas | W. L. Lawson Company | Dark-adapted bovine retinas (pre-dissected) | Contact information: https://wllawsoncompany.com/ (402) 499-3161 stacy@wllawsoncompany.com |
Filipin | Sigma-Aldrich | F4767 | |
Flow cytometer | Thermo Fisher | Attune NxT | |
Flow cytometer analysis software | BD | FlowJo | |
Handheld UV light | Analytik Jena US | UVGL-55 | |
Human MFG-E8 | Sino Biological | 10853-H08B | |
Human purified Protein S | Enzyme Research Laboratories | HPS | |
Laemmli sample buffer | Thermo Fisher | J60015-AD | |
LDH assay | Promega | J2380 | LDH-Glo Cytotoxicity Assay |
Mounting media | Invitrogen | P36930 | Prolong Gold antifade reagent |
Nile red | Sigma-Aldrich | #72485 | |
Polytetrafluoroethylene-coated slides | Tekdon | Customized | Customized specifications: PTFE mask with the following "cut-outs" - 3 glass rectangles, each measuring 17 mm x 9 mm, oriented so that the 17 mm side is 4 mm from the top of the slide and 4 mm from the bottom of the slide, assuming a standard microscope slide of 25 mm x 75 mm. Each rectangle is spaced at least 6 mm away from other rectangles and the edges of the slide. Print PTFE mask on a slide with frosted glass on one side to allow for labeling of the slide. |
Protease inhibitors | Cell Signaling Technology | #5872 | |
Protein assay | Bio-Rad | #5000122 RC DC protein assay | |
TEER electrode | World Precision Instruments | STX3 | |
Trans-epithelial electrical resistance (TEER) meter | World Precision Instruments | EVOM3 | |
Ultraviolet crosslinker device | Analytik Jena US | UVP CL-1000 |
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