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Ce protocole décrit un modèle d’accumulation de lipofuscine dans des cultures épithéliales de pigment rétinien humain (EPR) hautement différenciées et polarisées et un test de phagocytose du segment externe (SG) amélioré pour détecter la capacité totale de consommation/dégradation de la SG de l’EPR. Ces méthodes surmontent les limites des modèles précédents de lipofuscine et des tests classiques de phagocytose du segment externe par impulsions.
La phagocytose quotidienne des segments externes du photorécepteur par l’épithélium pigmentaire rétinien (EPR) contribue à l’accumulation d’un pigment de vieillissement intracellulaire appelé lipofuscine. La toxicité de la lipofuscine est bien établie dans la maladie de Stargardt, la dégénérescence rétinienne héréditaire la plus courante, mais est plus controversée dans la dégénérescence maculaire liée à l’âge (DMLA), la principale cause de cécité irréversible dans le monde développé. Déterminer la toxicité de la lipofuscine chez l’homme a été difficile, et les modèles animaux de Stargardt ont une toxicité limitée. Ainsi, des modèles in vitro qui imitent l’EPR humain in vivo sont nécessaires pour mieux comprendre la génération, la clairance et la toxicité de la lipofuscine. La majorité des modèles de lipofuscine de culture cellulaire à ce jour ont été dans des lignées cellulaires ou ont impliqué l’alimentation en EPR d’un seul composant du mélange complexe de lipofuscine plutôt que de fragments / pointes de l’ensemble du segment externe du photorécepteur, ce qui génère un modèle lipofuscine plus complet et physiologique. La méthode décrite ici est une méthode pour induire l’accumulation de matériel de type lipofuscine (appelé matériau d’autofluorescence non digestible, ou UAM) dans l’EPR prénatal primaire humain hautement différencié (hfRPE) et l’EPR induite dérivée de cellules souches pluripotentes (CSPi). L’UAM s’est accumulée dans les cultures par des alimentations répétées de fragments de SG traités à la lumière ultraviolette absorbés par l’EPR par phagocytose. Les principales façons dont UAM se rapproche et diffère de la lipofuscine in vivo sont également discutées. Parallèlement à ce modèle d’accumulation de type lipofuscine, des méthodes d’imagerie permettant de distinguer le large spectre d’autofluorescence des granules UAM de la coloration simultanée des anticorps sont introduites. Enfin, pour évaluer l’impact de la MNA sur la capacité de phagocytose de l’EPR, une nouvelle méthode de quantification de l’absorption et de la dégradation des fragments et des pointes du segment externe a été introduite. Appelée « capacité totale de consommation », cette méthode permet de surmonter les erreurs potentielles d’interprétation de la capacité de phagocytose de l’EPR inhérentes aux tests classiques de « chasse au pouls » du segment externe. Les modèles et les techniques présentés ici peuvent être utilisés pour étudier les voies de génération et de clairance de la lipofuscine et la toxicité putative.
L’épithélium pigmentaire rétinien (EPR) fournit un soutien essentiel pour les photorécepteurs sus-jacents, y compris l’absorption quotidienne et la dégradation des extrémités ou des fragments du segment externe du photorécepteur (dans ce protocole, l’abréviation OS signifie embouts ou fragments OS plutôt que segments externes entiers). Cette absorption quotidienne de l’EPR post-mitotique finit par surcharger la capacité phagolysosomale et conduit à l’accumulation de matériel intracellulaire autofluorescent non digestible, appelé lipofuscine. Fait intéressant, plusieurs études ont également démontré que la lipofuscine RPE peut s’accumuler sans phagocytose
Le présent protocole concernant l’acquisition et l’utilisation de tissus humains a été examiné et approuvé par le comité d’examen institutionnel de l’Université du Michigan (HUM00105486).
1. Préparation des extrémités et des fragments du segment extérieur photo-oxydés
REMARQUE : Des rétines bovines adaptées à l’obscurité ont été achetées et expédiées sur glace (voir le tableau des matières). À partir de ces rétines, les OS ont été purifiés selon un protocole23 publié précédemment.
La configuration pour la photo-oxydation de la SG est illustrée à la figure 1Ai. Les lames revêtues de polytétrafluoroéthylène permettent de charger un grand volume de SG en solution par rectangle ouvert sans se répandre sur le reste de la lame. La lame avec OS est contenue dans une boîte de Petri stérile avec le couvercle enlevé, et une lampe UV est placée sur la lame comme illustré à la figure 1Aii. La lame peut également être placée dans un di.......
Alors que la lipofuscine RPE a été étudiée pendant des décennies, sa toxicité est débattue 2,9,16,42. Compte tenu de l’ambiguïté sur la toxicité de la lipofuscine à partir de modèles animaux11, les modèles in vitro utilisant l’EPR humaine sont précieux. Une gamme de modèles d’accumulation de lipofuscine in vitro a été décrite, ma.......
Les auteurs n’ont rien à divulguer.
Ce travail est soutenu, en partie, par des subventions de la Vitreo-Retinal Surgery Foundation (VRSF), de Fight for Sight (FFS) et de l’International Retinal Research Foundation (IRRF). J.M.L.M. est actuellement soutenu par une subvention K08 du National Eye Institute (EY033420). Aucun fonds fédéral n’a été utilisé pour la recherche sur le THF. Un soutien supplémentaire provient de la James Grosfeld Initiative for Dry AMD et des donateurs privés suivants : Barbara Dunn et Dee & Dickson Brown.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
100 mm cell culture dish | Corning | #353003 | Others also work |
24-well Transwells | Corning | #3470 | |
Anti-LC3 antibody | Cell Signaling Technology | #4801S | 1:1000 dilution |
Anti-rhodopsin antibody 1D4 | Abcam | #5417 | 1:1000 dilution. Epitope is C-terminal. |
Anti-rhodopsin antibody 4D2 | EnCor Biotech | MCA-B630 | 1:5000 dilution for western blot, 1:1000 dilution for immunostaining. Epitope is N-terminal. |
Autofluorescence quencher | Biotium | #23007 | TrueBlack Lipofuscin Autofluorescence Quencher |
Autofluorescence quencher | Vector Laboratories | SP-8400 | Vector TrueVIEW Autofluorescence Quenching Kit |
Bodipy 493/503 | Life Technologies | D3922 | |
Cholesterol esterase | Life Technologies | From A12216 kit | |
Confocal microscope | Leica | Leica Stellaris SP8 with FALCON module | |
Dark-adapted bovine retinas | W. L. Lawson Company | Dark-adapted bovine retinas (pre-dissected) | Contact information: https://wllawsoncompany.com/ (402) 499-3161 stacy@wllawsoncompany.com |
Filipin | Sigma-Aldrich | F4767 | |
Flow cytometer | Thermo Fisher | Attune NxT | |
Flow cytometer analysis software | BD | FlowJo | |
Handheld UV light | Analytik Jena US | UVGL-55 | |
Human MFG-E8 | Sino Biological | 10853-H08B | |
Human purified Protein S | Enzyme Research Laboratories | HPS | |
Laemmli sample buffer | Thermo Fisher | J60015-AD | |
LDH assay | Promega | J2380 | LDH-Glo Cytotoxicity Assay |
Mounting media | Invitrogen | P36930 | Prolong Gold antifade reagent |
Nile red | Sigma-Aldrich | #72485 | |
Polytetrafluoroethylene-coated slides | Tekdon | Customized | Customized specifications: PTFE mask with the following "cut-outs" - 3 glass rectangles, each measuring 17 mm x 9 mm, oriented so that the 17 mm side is 4 mm from the top of the slide and 4 mm from the bottom of the slide, assuming a standard microscope slide of 25 mm x 75 mm. Each rectangle is spaced at least 6 mm away from other rectangles and the edges of the slide. Print PTFE mask on a slide with frosted glass on one side to allow for labeling of the slide. |
Protease inhibitors | Cell Signaling Technology | #5872 | |
Protein assay | Bio-Rad | #5000122 RC DC protein assay | |
TEER electrode | World Precision Instruments | STX3 | |
Trans-epithelial electrical resistance (TEER) meter | World Precision Instruments | EVOM3 | |
Ultraviolet crosslinker device | Analytik Jena US | UVP CL-1000 |
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