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Questo protocollo descrive un modello di accumulo di lipofuscina in colture epiteliali di pigmenti retinici (RPE) umane altamente differenziate e polarizzate e un test di fagocitosi del segmento esterno (OS) migliorato per rilevare il consumo totale di OS / capacità di degradazione dell'RPE. Questi metodi superano i limiti dei precedenti modelli di lipofuscina e dei classici saggi di fagocitosi del segmento esterno a inseguimento del polso.
La fagocitosi quotidiana dei segmenti esterni dei fotorecettori da parte dell'epitelio pigmentato retinico (RPE) contribuisce all'accumulo di un pigmento di invecchiamento intracellulare chiamato lipofuscina. La tossicità della lipofuscina è ben consolidata nella malattia di Stargardt, la più comune degenerazione retinica ereditaria, ma è più controversa nella degenerazione maculare legata all'età (AMD), la principale causa di cecità irreversibile nel mondo sviluppato. Determinare la tossicità della lipofuscina nell'uomo è stato difficile e i modelli animali di Stargardt hanno una tossicità limitata. Pertanto, sono necessari modelli in vitro che imitano l'RPE umano in vivo per comprendere meglio la generazione, la clearance e la tossicità della lipofuscina. La maggior parte dei modelli di lipofuscina di colture cellulari fino ad oggi sono stati in linee cellulari o hanno coinvolto l'alimentazione di RPE con un singolo componente della miscela complessa di lipofuscina piuttosto che frammenti / punte dell'intero segmento esterno del fotorecettore, che genera un modello di lipofuscina più completo e fisiologico. Qui è descritto un metodo per indurre l'accumulo di materiale simile alla lipofuscina (definito materiale di autofluorescenza indigeribile, o UAM) in RPE prenatale umano primario altamente differenziato (hfRPE) e RPE derivato da cellule staminali pluripotenti indotte (iPSC). L'UAM si è accumulata nelle colture mediante ripetute alimentazioni di frammenti di OS trattati con luce ultravioletta assorbiti dall'RPE tramite fagocitosi. Vengono anche discussi i modi chiave in cui UAM si avvicina e differisce dalla lipofuscina in vivo . Accompagnando questo modello di accumulo simile alla lipofuscina, vengono introdotti metodi di imaging per distinguere l'ampio spettro di autofluorescenza dei granuli di UAM dalla concomitante colorazione anticorpale. Infine, per valutare l'impatto dell'UAM sulla capacità di fagocitosi RPE, è stato introdotto un nuovo metodo per quantificare l'assorbimento e la rottura di frammenti/punte del segmento esterno. Definito "Total Consumptive Capacity", questo metodo supera potenziali interpretazioni errate della capacità di fagocitosi RPE inerente ai classici saggi di "inseguimento a impulsi" del segmento esterno. I modelli e le tecniche qui introdotte possono essere utilizzati per studiare la generazione di lipofuscina e le vie di clearance e la tossicità putativa.
L'epitelio pigmentato retinico (RPE) fornisce un supporto critico per i fotorecettori sovrastanti, compresa l'assorbimento e la degradazione quotidiana delle punte o dei frammenti del segmento esterno dei fotorecettori (in tutto questo protocollo, l'abbreviazione OS sta per punte o frammenti di OS piuttosto che interi segmenti esterni). Questo assorbimento giornaliero nell'RPE post-mitotico alla fine sovraccarica la capacità fagolisosomiale e porta all'accumulo di materiale intracellulare autofluorescente non digeribile, chiamato lipofuscina. È interessante notare che diversi studi hanno anche dimostrato che la lipofuscina RPE può accumularsi senza fagocitosi OS
Il presente protocollo che prevede l'acquisizione e l'uso di tessuti umani è stato esaminato e approvato dall'Institutional Review Board dell'Università del Michigan (HUM00105486).
1. Preparazione di punte e frammenti di segmenti esterni fotoossidati
NOTA: Le retine bovine adattate al buio sono state acquistate e spedite su ghiaccio (vedi Tabella dei materiali). Da queste retine, le OS sono state purificate seguendo un protocollo23 precedentemente pubblicato.
Il set-up per la foto-ossidazione del sistema operativo è illustrato nella Figura 1Ai. Le guide rivestite in politetrafluoroetilene consentono di caricare un grande volume di OS in soluzione per rettangolo aperto senza diffondersi sul resto del vetrino. Il vetrino con OS è contenuto all'interno di una capsula di Petri sterile con il coperchio spento e una lampada UV è posizionata sopra la diapositiva come mostrato in Figura 1Aii. In alternativa, il vetrino pu.......
Mentre RPE lipofuscin è stato studiato per decenni, la sua tossicità è dibattuta 2,9,16,42. Data l'ambiguità sulla tossicità della lipofuscina da modelli animali11, i modelli in vitro che utilizzano RPE umano sono preziosi. È stata descritta una serie di modelli di accumulo di lipofuscina in vitro, ma nessuno ha utilizzato sia l'alimentazione OS c.......
Gli autori non hanno nulla da rivelare.
Questo lavoro è supportato, in parte, da sovvenzioni della Vitreo-Retinal Surgery Foundation (VRSF), Fight for Sight (FFS) e International Retinal Research Foundation (IRRF). J.M.L.M. è attualmente supportato da una sovvenzione K08 del National Eye Institute (EY033420). Nessun fondo federale è stato utilizzato per la ricerca HFT. Un ulteriore sostegno viene dalla James Grosfeld Initiative for Dry AMD e dai seguenti donatori privati: Barbara Dunn e Dee & Dickson Brown.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
100 mm cell culture dish | Corning | #353003 | Others also work |
24-well Transwells | Corning | #3470 | |
Anti-LC3 antibody | Cell Signaling Technology | #4801S | 1:1000 dilution |
Anti-rhodopsin antibody 1D4 | Abcam | #5417 | 1:1000 dilution. Epitope is C-terminal. |
Anti-rhodopsin antibody 4D2 | EnCor Biotech | MCA-B630 | 1:5000 dilution for western blot, 1:1000 dilution for immunostaining. Epitope is N-terminal. |
Autofluorescence quencher | Biotium | #23007 | TrueBlack Lipofuscin Autofluorescence Quencher |
Autofluorescence quencher | Vector Laboratories | SP-8400 | Vector TrueVIEW Autofluorescence Quenching Kit |
Bodipy 493/503 | Life Technologies | D3922 | |
Cholesterol esterase | Life Technologies | From A12216 kit | |
Confocal microscope | Leica | Leica Stellaris SP8 with FALCON module | |
Dark-adapted bovine retinas | W. L. Lawson Company | Dark-adapted bovine retinas (pre-dissected) | Contact information: https://wllawsoncompany.com/ (402) 499-3161 stacy@wllawsoncompany.com |
Filipin | Sigma-Aldrich | F4767 | |
Flow cytometer | Thermo Fisher | Attune NxT | |
Flow cytometer analysis software | BD | FlowJo | |
Handheld UV light | Analytik Jena US | UVGL-55 | |
Human MFG-E8 | Sino Biological | 10853-H08B | |
Human purified Protein S | Enzyme Research Laboratories | HPS | |
Laemmli sample buffer | Thermo Fisher | J60015-AD | |
LDH assay | Promega | J2380 | LDH-Glo Cytotoxicity Assay |
Mounting media | Invitrogen | P36930 | Prolong Gold antifade reagent |
Nile red | Sigma-Aldrich | #72485 | |
Polytetrafluoroethylene-coated slides | Tekdon | Customized | Customized specifications: PTFE mask with the following "cut-outs" - 3 glass rectangles, each measuring 17 mm x 9 mm, oriented so that the 17 mm side is 4 mm from the top of the slide and 4 mm from the bottom of the slide, assuming a standard microscope slide of 25 mm x 75 mm. Each rectangle is spaced at least 6 mm away from other rectangles and the edges of the slide. Print PTFE mask on a slide with frosted glass on one side to allow for labeling of the slide. |
Protease inhibitors | Cell Signaling Technology | #5872 | |
Protein assay | Bio-Rad | #5000122 RC DC protein assay | |
TEER electrode | World Precision Instruments | STX3 | |
Trans-epithelial electrical resistance (TEER) meter | World Precision Instruments | EVOM3 | |
Ultraviolet crosslinker device | Analytik Jena US | UVP CL-1000 |
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