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Este protocolo proporciona un flujo de trabajo fácil de seguir para llevar a cabo la purificación del ARN poli(A), la conversión de bisulfito y la preparación de bibliotecas utilizando equipos estandarizados para una muestra biológica de interés.
Las modificaciones postranscripcionales del ARN en varios tipos de transcripciones de ARN se asocian con una regulación diversa del ARN en las células eucariotas. Se ha demostrado que las modificaciones aberrantes del ARN 5-metilcitosina y la expresión desregulada de las metiltransferasas de ARN están asociadas con diversas enfermedades, incluidos los cánceres. Se desarrolló la secuenciación de bisulfito en todo el transcriptoma para caracterizar las posiciones y los niveles cuantitativos de metilación de citosina en el ARN convertido en bisulfito a la resolución de pares de bases. En este documento, este protocolo presenta los procedimientos de dos rondas de purificación de ARN poli(A), tres ciclos de reacción de bisulfito y la preparación de la biblioteca en detalle para permitir el mapeo de todo el transcriptoma de los sitios de modificación del ARNm 5-metilcitosina. La evaluación de la cantidad y calidad del ARN después de la reacción principal es esencial para controlar la integridad del ARN y es un paso crítico para garantizar bibliotecas de secuenciación de alta calidad. Lo ideal es que los procedimientos se puedan completar en tres días. Con este protocolo, el uso de ARN total de alta calidad como entrada puede crear bibliotecas robustas de bisulfito-ARNm para la secuenciación de próxima generación a partir de la muestra de interés.
Entre los más de 150 tipos de modificaciones postranscripcionales1, se ha identificado la modificación de la 5-metilcitosina (m5C) en varios tipos de ARN, incluidos el ARN ribosómico, el ARN de transferencia, el ARN mensajero, el micro ARN, el ARN largo no codificante, el ARN de bóveda, el ARN potenciador y los ARN pequeños específicos del cuerpocajal 2. El ARN m 5 C se asocia con diversos mecanismos biológicos y patológicos, como la regulación del desarrollo radicular de las plantas3, la expresión génica viral4 y la progresión del cáncer5.
1. Purificación de ARN poli(A)
NOTA: Utilice el ARN total tratado con DNasa I y examine la calidad e integridad del ARN total mediante la evaluación de electroforesis en gel capilar o convencional antes de proceder a la purificación del ARN poli(A). Los investigadores deberían ser capaces de identificar las bandas ribosómicas de ARNr 28S y 18S en el campo de alto peso molecular y la banda de ARNr 5,8S en el campo de bajo peso molecular sin ninguna banda de frotis significativa en el electroferograma. Los pasos de purificación siguen esencialmente las instrucciones del fabricante con pequeñas modificaciones indicadas en los pa....
Se generaron una serie de bibliotecas de bsRNA-seq a partir de las líneas celulares19 siguiendo los procedimientos de este informe (Figura 1). Después de la purificación total del ARN acompañada del tratamiento con DNasa realizado en muestras de líneas celulares y la calidad comprobada por electroforesis en gel y espectrofotometría UV-Vis (A260/A280), la muestra de ARN puede proceder al enriquecimiento de poli(A) ARN. Para determinar si la doble.......
En este protocolo, se logró una línea detallada de enriquecimiento de poli(A), conversión de bisulfito y preparación de bibliotecas mediante la utilización de componentes estandarizados. Un análisis de secuenciación adicional proporcionó la identificación de ARNm 5-metilcitosina en muestras de interés.
El paso crítico es la calidad del material de partida (ARN total), ya que la degradación del ARN afectaría la tasa de recuperación de la purificación del ARN poli(A). La muestra d.......
Los autores no tienen conflictos de intereses que revelar.
Este trabajo contó con el apoyo del Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología de Taiwán. [NSTC 111-2314-B-006-003]
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Agilent 2100 Electrophoresis Bioanalyzer System | Agilent, Santa Clara, CA | RNA quality detection | |
AMpure XP beads | Beckman Coulter | A63881 | purify DNA |
Bioanalyzer DNA high sensitivity kit | Agilent, Santa Clara, CA | 5067-4626 | DNA quality dection |
Bioanalyzer RNA 6000 Pico kit | Agilent, Santa Clara, CA | 5067-1513 | RNA quality dection |
DiaMag02 - magnetic rack | Diagenode, Denville, NJ | B04000001 | assist library preparation |
DiaMag1.5 - magnetic rack | Diagenode, Denville, NJ | B04000003 | assist poly(A) RNA purificaion |
Dynabeads mRNA DIRECT purification kit | Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA | 61011 | poly(A) RNA purificaion; Wash Buffer 1 and Wash Buffer 2 |
Ethanol | J.T.Baker | 64-17-5 | |
EZ RNA methylation kit | Zymo, Irvine, CA | R5002 | bisulfite treatment |
Firefly luciferase mRNA | Promega, Madison, WI, USA | L4561 | spike in control seqeunce |
KAPA Library Quantification Kits | Roche, Switzerland | KK4824 | library quantification |
Nanodrop spectrophotometer | Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA | Total RNA quantity detection | |
NEBNext multiplex Oligos for illumina (index Primer set1) | New England Biolabs, Ipswich, MA | E7335S | library preparation |
NEBNext Ultra ![]() | New England Biolabs, Ipswich, MA | E7760S | library preparation |
Nuclease-free Water | Thermo Fisher Scientific | AM9932 | |
P2 pipetman | Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA | 4641010 | |
Qubit 2.0 fluorometer | Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA | RNA quantity detection | |
Qubit dsDNA HS Assay Kit | Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA | Q32854 | DNA quantity detection |
Qubit RNA HS Assay Kit | Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA | Q32852 | RNA quantity detection |
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