A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

פרוטוקול זה מספק זרימת עבודה קלה למעקב לביצוע טיהור RNA פולי(A), המרת ביסולפיט והכנת ספרייה באמצעות ציוד סטנדרטי לדגימה ביולוגית מעניינת.

Abstract

שינויים לאחר שעתוק RNA בסוגים שונים של תעתיקי RNA קשורים לוויסות RNA מגוון בתאים איקריוטים. שינויים חריגים ב-RNA 5-methylcytosine והביטוי הלא מווסת של RNA methyltransferases הוכחו כקשורים למחלות שונות, כולל סרטן. ריצוף ביסולפיט רחב שעתוק פותח כדי לאפיין את המיקומים ואת רמות המתילציה הכמותית של ציטוזין ב-RNA המומר על ידי ביסולפיט ברזולוציית זוג הבסיס. בזאת, פרוטוקול זה מציג את ההליכים של שני סבבים של טיהור RNA פולי(A), שלושה מחזורים של תגובת ביסולפיט, והכנת ספרייה בפירוט כדי לאפשר מיפוי רחב שעתוק של אתרי שינוי mRNA 5-methylcytosine. הערכת כמות ואיכות ה-RNA לאחר התגובה העיקרית חיונית לניטור שלמות ה-RNA והיא צעד קריטי להבטחת ספריות ריצוף באיכות גבוהה. באופן אידיאלי, ניתן להשלים את ההליכים תוך שלושה ימים. באמצעות פרוטוקול זה, שימוש ב-RNA כולל באיכות גבוהה כקלט יכול למעשה לבנות ספריות ביסולפיט-mRNA חזקות לריצוף הדור הבא מהמדגם המעניין.

Introduction

בין למעלה מ-150 סוגים של שינויים שלאחר שעתוק1, זוהה שינוי 5-מתיל-ציטוזין (m5C) בסוגים שונים של RNA, כולל RNA ריבוזומלי, RNA העברה, רנ"א שליח, מיקרו-רנ"א, רנ"א ארוך שאינו מקודד, רנ"א קמרון, רנ"א משפר, ורנ"א קחאל קטן ספציפי לגוף2. הרנ"א m 5 C קשור למגוון מנגנונים ביולוגיים ופתולוגיים כגון ויסות התפתחות שורשי צמחים3, ביטוי גנים נגיפיים4 והתקדמות סרטן5. מטרת פרוטוקול זה היא לספק צינורות יעילים לאפיון פרופיל השינוי רחב התמלול mRNA m5C של דגימות ביולוגיות בשלבי התפתחות שונים או במסגרת המחלה. ריצוף ביסולפיט רחב שעתוק פותח כד....

Protocol

1. טיהור RNA פולי(A)

הערה: השתמש ב-RNA הכולל שטופל ב-DNase I ובחן את האיכות והשלמות הכוללת של ה-RNA על ידי הערכת אלקטרופורזה של נימים או ג'ל קונבנציונלי לפני שתמשיך לטיהור RNA פולי(A). החוקרים אמורים להיות מסוגלים לזהות את הפסים הריבוזומליים rRNA 28S ו-18S בשדה המשקל המולקולרי הגבוה ואת רצועת ה-rRNA 5.8S בשדה המשקל המולקולרי הנמוך ללא פסי מריחה משמעותיים באלקטרופרוגרמה. שלבי הטיהור למעשה עוקבים אחר הוראות היצרן עם שינויים קלים המצוינים בשלבים הספציפיים. עיין בטבלת החומרים לקבלת פרטים הקשורים לכל החומרים והמכשירים המשמשים בפרוטוקול זה.

  1. הכנה
    1. חממו את המגיב, חיץ הכביסה, חרוזי אוליגו (dT) וחיץ ה....

תוצאות

סדרה של ספריות bsRNA-seq מקווי תאים19 נוצרו על-ידי ביצוע ההליכים בדוח זה (איור 1). לאחר טיהור RNA כולל המלווה בטיפול DNase המבוצע בדגימות קו תאים ובדיקת האיכות על ידי אלקטרופורזה בג'ל וספקטרופוטומטריה UV-Vis (A260/A280), דגימת ה-RNA יכולה להמשיך להעשרת RNA פולי(A). כדי לקבוע .......

Discussion

בפרוטוקול זה, צנרת מפורטת של העשרת פולי(A), המרת ביסולפיט והכנת ספרייה הושגה על ידי שימוש ברכיבים סטנדרטיים. ניתוח ריצוף נוסף סיפק זיהוי של mRNA 5-methylcytosine בדגימות מעניינות.

השלב הקריטי הוא איכות החומר ההתחלתי - סך כל הרנ"א - שכן פירוק הרנ"א ישפיע על קצב ההתאוששות של טיהור RNA פולי(A)........

Disclosures

למחברים אין ניגודי עניינים לחשוף.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי המועצה הלאומית למדע וטכנולוגיה של טייוואן. [NSTC 111-2314-B-006-003]

....

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Agilent 2100 Electrophoresis Bioanalyzer SystemAgilent, Santa Clara, CARNA quality detection
AMpure XP beadsBeckman CoulterA63881purify DNA
Bioanalyzer DNA high sensitivity kitAgilent, Santa Clara, CA5067-4626DNA quality dection
Bioanalyzer RNA 6000 Pico kitAgilent, Santa Clara, CA5067-1513RNA quality dection
DiaMag02 - magnetic rackDiagenode, Denville, NJB04000001assist library preparation
DiaMag1.5 - magnetic rackDiagenode, Denville, NJB04000003assist poly(A) RNA purificaion
Dynabeads mRNA DIRECT purification kitThermo Fisher Scientific, Waltham, MA61011poly(A) RNA purificaion; Wash Buffer 1 and Wash Buffer 2
EthanolJ.T.Baker64-17-5
EZ RNA methylation kitZymo, Irvine, CAR5002bisulfite treatment
Firefly luciferase mRNAPromega, Madison, WI, USAL4561spike in control seqeunce 
KAPA Library Quantification KitsRoche, SwitzerlandKK4824library quantification
Nanodrop spectrophotometerThermo Fisher Scientific, Waltham, MATotal RNA quantity detection
NEBNext multiplex Oligos for illumina (index Primer set1)New England Biolabs, Ipswich, MAE7335Slibrary preparation
NEBNext Ultra figure-materials-2064 Directional RNA Library Prep Kit for IlluminaNew England Biolabs, Ipswich, MAE7760Slibrary preparation
Nuclease-free WaterThermo Fisher ScientificAM9932
P2 pipetmanThermo Fisher Scientific, Waltham, MA4641010
Qubit 2.0 fluorometer Thermo Fisher Scientific, Waltham, MARNA quantity detection
Qubit dsDNA HS Assay KitThermo Fisher Scientific, Waltham, MAQ32854DNA quantity detection
Qubit RNA HS Assay KitThermo Fisher Scientific, Waltham, MAQ32852RNA quantity detection

References

  1. Boccaletto, P., et al. MODOMICS: a database of RNA modification pathways. 2021 update. Nucleic Acids Research. 50, D231-D235 (2022).
  2. Bohnsack, K. E., Höbartner, C., Bohnsack, M. T.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

MRNAmRNARNARNARNA 5RNARNA AMRNA 5RNARNA

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved