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この記事について

  • 要約
  • 要約
  • 概要
  • プロトコル
  • 代表的な結果
  • ディスカッション
  • 開示事項
  • 謝辞
  • 資料
  • 参考文献
  • 転載および許可

要約

このプロトコルは、目的の生物学的サンプルに対して標準化された装置を使用して、ポリ(A)RNA精製、重亜硫酸塩変換、およびライブラリ調製を行うためのわかりやすいワークフローを提供します。

要約

様々なタイプのRNA転写物におけるRNA転写後修飾は、真核細胞における多様なRNA制御と関連している。RNAの5-メチルシトシン修飾の異常とRNAメチルトランスフェラーゼの発現異常は、がんを含むさまざまな疾患と関連していることが示されています。トランスクリプトームワイドの亜硫酸水素塩基配列決定は、塩基対の分解能で亜硫酸水素バイサルファイト変換RNAの位置と定量的シトシンメチル化レベルを特徴付けるために開発されました。本明細書では、このプロトコルは多(A) RNAの浄化の2つの円形、重亜硫酸塩の反作用の3周期、およびmRNA 5-methylcytosineの修正の場所のトランスクリプトーム広い地図を描くことを可能にするために図書館の準備のプロシージャを詳しく示す。主反応後のRNAの量と質の評価は、RNAの完全性をモニターするために不可欠であり、高品質のシーケンシングライブラリを確保するための重要なステップです。理想的には、手続きは3日以内に完了することができます。このプロトコルでは、高品質のトータルRNAをインプットとして使用することで、目的のサンプルから次世代シーケンシング用の堅牢な亜硫酸水素-mRNAライブラリを実際に構築できます。

概要

150種類以上の転写後修飾1のうち、5-メチルシトシン(m5C)修飾は、リボソームRNA、トランスファーRNA、メッセンジャーRNA、マイクロRNA、長鎖ノンコーディングRNA、ボールトRNA、エンハンサーRNA、低分子カハール体特異的RNAなど、さまざまな種類のRNAで同定されています2。RNAm5Cは、植物の根の発生3、ウイルスの遺伝子発現4癌の進行5の調節など、多様な生物学的および病理学的メカニズムと関連している。このプロトコルの目的は、異なる発生段階または疾患設定における生物学的サンプルのトランスクリプトームワイドmRNA m5C修飾プロファイルを特徴付けるための合理化されたパイプラインを提供することです。トランスクリプトームワイドの亜硫酸バイサルファイトシーケンシングは、塩基対の分解能6789で亜硫酸水素バイサルファイト変換RNAの位置と定量的シトシンメチル化レベルを特徴付けるため....

プロトコル

1. ポリ(A)RNA精製

注:ポリ(A)RNA精製に進む前に、DNase Iで処理したトータルRNAを使用し、キャピラリーまたは従来のゲル電気泳動評価によってトータルRNAの品質と完全性を調べます。研究者は、高分子量フィールドの 28S および 18S rRNA リボソーム バンドと、低分子量フィールドの 5.8S rRNA バンドを、エレクトロフェログラムに有意な塗抹標本バンドなしで識別できる必要があります。精製ステップは、基本的にメーカーの指示に従い、特定のステップで示されている軽微な変更が加えられています。このプロトコルで使用されるすべての材料と機器に関連する詳細については、 材料表 を参照してください。

  1. 準備
    1. 試薬、洗浄バッファー、オリゴ(dT)ビーズ、溶解バッファーを室温で30分間温めてから、以下の手順を行ってください。
    2. ポリ(A)濃縮RNAを単離するには、ヌクレアーゼフリーの1.5 mL微量遠心チューブに十分な量のRNAを移し、出発物質として10〜20 μgの高品質トータルRNAアリコートを調製します。ヒートブロック内で 70°C で5分間インキュベートし、その後氷上で2 分間保持します。
      注:出発物質となるトータルRNAの量は、mRNAの所望量および使用する細胞の性....

代表的な結果

細胞株19 から得られた一連のbsRNA-seqライブラリーは、本レポート (図1)の手順に従って作製しました。細胞株サンプルに対してDNase処理を伴ったトータルRNA精製を行い、ゲル電気泳動およびUV-Vis分光光度法(A260/A280)で品質を確認した後、RNAサンプルはポリ(A)RNA濃縮に進むことができます。二重精製でリボソームRNAの大部分を除去できるかどう.......

ディスカッション

このプロトコルでは、標準化されたコンポーネントを利用することで、ポリ(A)濃縮、重亜硫酸塩変換、およびライブラリ調製の詳細なパイプラインが達成されました。さらなるシーケンシング解析により、目的のサンプル中のmRNA 5-メチルシトシンが同定されました。

RNAの分解はポリ(A)RNA精製の回収率に影響を与えるため、重要なステップは出発物質であるトータルRNAの?.......

開示事項

著者には開示すべき利益相反はありません。

謝辞

この研究は、台湾国家科学技術評議会の支援を受けました。[NSTC 111-2314-B-006-003]

....

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
Agilent 2100 Electrophoresis Bioanalyzer SystemAgilent, Santa Clara, CARNA quality detection
AMpure XP beadsBeckman CoulterA63881purify DNA
Bioanalyzer DNA high sensitivity kitAgilent, Santa Clara, CA5067-4626DNA quality dection
Bioanalyzer RNA 6000 Pico kitAgilent, Santa Clara, CA5067-1513RNA quality dection
DiaMag02 - magnetic rackDiagenode, Denville, NJB04000001assist library preparation
DiaMag1.5 - magnetic rackDiagenode, Denville, NJB04000003assist poly(A) RNA purificaion
Dynabeads mRNA DIRECT purification kitThermo Fisher Scientific, Waltham, MA61011poly(A) RNA purificaion; Wash Buffer 1 and Wash Buffer 2
EthanolJ.T.Baker64-17-5
EZ RNA methylation kitZymo, Irvine, CAR5002bisulfite treatment
Firefly luciferase mRNAPromega, Madison, WI, USAL4561spike in control seqeunce 
KAPA Library Quantification KitsRoche, SwitzerlandKK4824library quantification
Nanodrop spectrophotometerThermo Fisher Scientific, Waltham, MATotal RNA quantity detection
NEBNext multiplex Oligos for illumina (index Primer set1)New England Biolabs, Ipswich, MAE7335Slibrary preparation
NEBNext Ultra figure-materials-2064 Directional RNA Library Prep Kit for IlluminaNew England Biolabs, Ipswich, MAE7760Slibrary preparation
Nuclease-free WaterThermo Fisher ScientificAM9932
P2 pipetmanThermo Fisher Scientific, Waltham, MA4641010
Qubit 2.0 fluorometer Thermo Fisher Scientific, Waltham, MARNA quantity detection
Qubit dsDNA HS Assay KitThermo Fisher Scientific, Waltham, MAQ32854DNA quantity detection
Qubit RNA HS Assay KitThermo Fisher Scientific, Waltham, MAQ32852RNA quantity detection

参考文献

  1. Boccaletto, P., et al. MODOMICS: a database of RNA modification pathways. 2021 update. Nucleic Acids Research. 50, D231-D235 (2022).
  2. Bohnsack, K. E., Höbartner, C., Bohnsack, M. T.

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