Este trabajo fue apoyado por el NINH conceder R01MH097949 y el autismo habla subvención piloto para 7359 BWL y el Centro de Cáncer Norris Cotton de imagen óptica compartida Instrumentación de Grant P30CA023108.

<ol>
	<li>Williams, M. R., DeSpenza, T., Li, M., Gulledge, A. T., Luikart, B. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hyperactivity+of+newborn+Pten+knock-out+neurons+results+from+increased+excitatory+synaptic+drive.">Hyperactivity of newborn Pten knock-out neurons results from increased excitatory synaptic drive.</a> J Neurosci. 35 (3), 943-959 (2015).</li><li>Luikart, B. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pten+knockdown+in+vivo+increases+excitatory+drive+onto+dentate+granule+cells.">Pten knockdown in vivo increases excitatory drive onto dentate granule cells.</a> J Neurosci. 31 (11), 4345-4354 (2011).</li><li>Cong, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multiplex+genome+engineering+using+CRISPR/Cas+systems.">Multiplex genome engineering using CRISPR/Cas systems.</a> Science. 339 (6121), 819-823 (2013).</li><li>Ran, F. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genome+engineering+using+the+CRISPR-Cas9+system.">Genome engineering using the CRISPR-Cas9 system.</a> Nat Protoc. 8 (11), 2281-2308 (2013).</li><li>Sander, J. D., Joung, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CRISPR-Cas+systems+for+editing,+regulating+and+targeting+genomes.">CRISPR-Cas systems for editing, regulating and targeting genomes.</a> Nat Biotechnol. 32 (4), 347-355 (2014).</li><li>Luikart, B. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=miR-132+mediates+the+integration+of+newborn+neurons+into+the+adult+dentate+gyrus.">miR-132 mediates the integration of newborn neurons into the adult dentate gyrus.</a> PLoS One. 6 (5), e19077 (2011).</li><li>Nasri, M., Karimi, A., Allahbakhshian Farsani, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Production,+purification+and+titration+of+a+lentivirus-based+vector+for+gene+delivery+purposes.">Production, purification and titration of a lentivirus-based vector for gene delivery purposes.</a> Cytotechnology. 66 (6), 1031-1038 (2014).</li><li>Ellis, B. L., Potts, P. R., Porteus, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Creating+higher+titer+lentivirus+with+caffeine.">Creating higher titer lentivirus with caffeine.</a> Hum Gene Ther. 22 (1), 93-100 (2011).</li><li>Fricano, C. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fatty+acids+increase+neuronal+hypertrophy+of+Pten+knockdown+neurons.">Fatty acids increase neuronal hypertrophy of Pten knockdown neurons.</a> Front Mol Neurosci. 7, 30 (2014).</li><li>Park, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lentiviral+vectors:+are+they+the+future+of+animal+transgenesis?.">Lentiviral vectors: are they the future of animal transgenesis?.</a> Physiol Genomics. 31 (2), 159-173 (2007).</li></ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Hay unos pocos pasos críticos que son importantes para el empaquetado viral exitosa. la salud de la célula es crítica antes y durante la transfección, tal como células enfermas gran medida a reducir la cantidad de virus producido. Si la transfección y envasado tienen éxito, entonces 100% de las células debe expresar el fluoróforo y las células deben formar un sincitio funcional. En el paso 3.2.4, golpeando ligeramente el tubo es necesario para la transfección de alto título de manera eficiente, y el pH de la solución salina tamponada con HEPES debe ser exacta. Los maxi-preps que producen los plásmidos necesarios para el empaquetado viral deben ser extremadamente puro. A este punto, es útil a etanol precipitar la elución de ADN final y volver a suspender en tampón Tris-EDTA. También es muy importante para reducir la cantidad de suero a 2% o menos en los medios de comunicación que la cafeína se añade a en el Día 6 (etapa 3.4) antes de la recogida viral. Si el suero no se reduce, entonces el virus purificado final contendrá una cantidad no deseable de prot sueroein. El uso de polietilenglicol 6000, cuando la precipitación de las partículas virales excluye la necesidad de ultracentrifugación. También es importante señalar que los CRISPR que contiene virus Cas9 típicamente tienen un título de alrededor de 10 veces menos que los virus que contienen únicamente un fluoróforo. Para la cirugía estereotáxica, el uso de anestesia de inhalación permite el control rápido y preciso o la conciencia del animal en comparación con los anestésicos inyectables y permite la anestesia en un intervalo de edad más amplio. Es muy importante mantener los instrumentos quirúrgicos limpio y estéril, y la focalización reproducible requiere un posicionamiento preciso de la cabeza. Asegúrese de que no hay pitcheo o balanceo de la cabeza en el instrumento estereotáxico y que el cráneo se siente firmemente en su lugar. Puede ser útil para permitir que el cráneo se seque a fin de encontrar las suturas para determinar las coordenadas estereotáxica. Además, la velocidad y el volumen para cada estereotáxica coordenadas deben determinarse empíricamente. Esta técnica es limitante en que la propagación de un retrovirus o lenti- está restringido, especialmente en comparación con los virus adeno-asociados (AAV) .Por lo tanto, estos virus son valiosas cuando infectar una región del cerebro discretos, pero no para la infección general asociado con AAV utilizado para el análisis del comportamiento en animales. El uso de la cafeína en este protocolo aumenta en gran medida el título de estos virus, pero todavía no son tan altos como los títulos obtenidos en el empaquetamiento de AAV. Además, la integración estable sólo es una ventaja de la expresión fluoróforo, como CRISPR / Cas9 forma ediciones genómica estable incluso cuando se transfectaron transitoriamente y es posible que en curso de la expresión de la Cas9 y sgRNA eventualmente puede producir efectos fuera de destino. La expresión transitoria del sistema / Cas9 CRISPR con AAV es suficiente para producir cambios genómicos que se propagan a lo largo de las divisiones celulares, sin embargo, no se mantuvo la expresión fluoróforo. Creación de lenTi y retrovirus que utilizan el sistema de CRISPR / Cas9 impartirán la capacidad de dirigirse a cualquier nuevo gen en una amplia variedad de organismos. La eficiencia de la edición gen parece ser dependiente de la secuencia del RNA guía dirigidas a la escisión Cas9. Se ha determinado empíricamente que entre 10% y 80% de los clones contienen indeles después de la secuenciación infectado células Neuro2A. Actualmente se desconoce si las frecuencias indel calculados en células Neuro2A son un reflejo de aquellos en las neuronas. Guía de software de diseño de ARN tales como Benchling ahora incluyen una puntuación de &quot;en-blanco&quot; que pueden ser capaces de predecir la eficacia de una secuencia diana dada. Hasta qué punto estos índices &quot;en la diana&quot; son fiables las necesidades que se determinen empíricamente en las neuronas y otros tipos de células como el sistema CRISPR-Cas9 convierte implementadas más ampliamente. la producción de animales transgénicos basados ​​en lentivirus ha sido variable éxito con los informes de que los transgenes lentivirus entregado convierten SIlenced 11. CRISPR edición génica mediada de ADN se puede hacer pasar a través de la línea germinal para generar modelos de animales enteros. Por lo tanto, la edición genómica estable puede ser alcanzable, a pesar del silenciamiento de fluoróforos-virales y entregado transgenes Cas9. Esto puede proporcionar una plataforma eficiente para las alteraciones genómicas específicas. La entrega viral del sistema / Cas9 CRISPR, mientras que no requieren organismos transgénicos, es complementaria a esas técnicas. Por ejemplo, la inyección de tales partículas virales en un animal transgénico que expresa de manera inducible compuesto opto-o quimio-genética dependiente Cre y Cre transgenes debe facilitar los estudios complejos en la relación entre las manipulaciones genéticas y la actividad neuronal. Un segundo ejemplo es entregar estas partículas virales Cas9 / sgRNA en un knockout condicional en un intento de detectar interacciones gen-gen. Por último, otra vía interesante de esta investigación es la detección de fenotipos y compuestos terapéuticos en células derivadas del paciente, lo que puedeser utilizado para validar y descubrir las redes genéticas que se encuentran alteradas en diversas enfermedades.

Para el estudio de la base de la fisiología normal y patología de la enfermedad, existe una necesidad de manipular con precisión la expresión génica en organismos modelo. Para organismos modelo de mamíferos, esta se centra en gran medida en la creación y desarrollo de ratones transgénicos en el que un elemento genético de interés está flanqueado por sitios reconocidos por una recombinasa. Esto puede resultar en una manipulación específica del sitio de estos genes flanqueados. Si bien esto ha sido una estrategia exitosa, es tiempo y requiere muchos recursos; por ejemplo, la creación de un animal transgénico de triple que expresara un gen floxed, recombinasa Cre, y un gen indicador Cre requiere múltiples apareamientos y validación. En contraste, la inyección estereotáxica de la replicación de partículas virales defectuosas que codifican una proteína fluorescente y la recombinasa en un animal gen floxed no requiere la genotipificación complejo o estrategias de reproducción 1. Además, si una proteína fluorescente y expresar Cre virus es co-inyectados con un segundo virus encoding una proteína fluorescente diferente, a continuación, esto proporciona un control dentro de los tejidos para la manipulación genética dirigida. Si bien esta estrategia todavía requiere el uso de animales knock-in, las estrategias de ARN basado mediadas por virus eludir la necesidad de animales transgénicos. Por ejemplo, la inyección estereotáxica de virus deficientes en replicación que codifican una proteína fluorescente y un ARN de horquilla corta (ARNhc) puede utilizar la maquinaria de RNAi endógeno de la célula para dar lugar a una potente reducción de la transcripción de un gen de interés. Sin embargo, las estrategias de shRNA producen genes sutil derribos menudo resultan en fenotipos celulares modestas 2. Mientras que un knock-down puede ser fisiológicamente más relevantes para la disfunción gen heterocigoto, su robustez disminuido en comparación con un knock-out no es lo ideal para el descubrimiento de nuevos genes fenotípica. Una tercera técnica que ha surgido recientemente, el CRISPR (agrupado regularmente espaciadas Repita palindrómico corto) / Cas9 (CRISPR-asociadoproteína 9) del sistema, se basa en la expresión tanto de un pequeño ARN exógeno y una enzima de corte de ADN. El sistema / Cas9 CRISPR es una adaptación del sistema inmunológico procariotas que se desarrolló un método de identificación de extranjero, la invasión de ADN de los virus y la orientación para la degradación a través de la enzima Cas9 3,4. Esta poderosa técnica de edición genoma se puede usar para la creación de deleciones específicas, inserciones y mutaciones; y el siguiente protocolo describirá cómo hacer deleciones en un gen de interés con el fin de knockout su expresión in vivo. La enzima Cas9 debe ser expresada con una guía de ARN homólogo a la región de interés y contigua con un ARN andamio. Knockout de un gen utilizando esta técnica requiere la orientación Cas9 a una región específica en el genoma utilizando guía RNAs sintéticos (sgRNA), y la inducción de roturas de doble cadena (DSBs) en un sitio de interés. Estos DSBs son entonces reparados por la maquinaria de la célula de reparación de endógeno a través de extremos no homólogos de unión (NHEJ), que leanuncio a indeles que pueden producir pérdida de sentido o sin sentido mutaciones y por lo tanto pueden crear una pérdida de la expresión de la proteína funcional 5. Debido a que este sistema produce alteraciones genómicas, que sólo requiere la expresión transitoria de la Cas9 y sgRNA. Sin embargo, es deseable para un indicador fluorescente estable para identificar las células y su progenie manipulados de esta manera. Lenti- y retrovirus tienen la ventaja de integrar de forma estable de ADN de interés en las células huésped que mantienen la expresión a largo plazo y se transmiten a las células hijas durante la mitosis. Este protocolo describe el diseño y la producción de dos tipos de replicación defectuosa, los retrovirus alto título: el virus de la inmunodeficiencia humana partículas lentivirales derivados (lentivirus) y los basados ​​en virus murina Maloney Leucemia (retrovirus). Mientras tanto de estos virus son capaces de soportar grandes expresando estable de los transgenes, las partículas retrovirales sólo se integran en el genoma dula división celular anillo con la degradación de la envoltura nuclear, y por lo tanto se puede utilizar como una herramienta para etiquetar y células fecha de nacimiento 6. Mientras que los lentivirus tienen una reputación de ser relativamente baja titulación 7, esta metodología, incluyendo el uso de la cafeína durante la recogida de 8 viral, habitualmente produce títulos de 10 y 9 10 10 partículas / ml. Otra ventaja de lenti- y los retrovirus es la tolerancia en caso de grandes insertos. La siguiente colección de protocolos describe el procedimiento para diseñar un lenti o retrovirus que codifica un informador fluorescente, sgRNAs, y Cas9 para utilizar el sistema / Cas9 CRISPR para modificar ADN, así como expresar una proteína fluorescente. Neurocirugía estereotáxica ratón es un método valioso para la inyección de virus in vivo para estudiar la morfología, función y conectividad de las neuronas infectadas. La infección viral en las neuronas se puede utilizar para manipular los niveles de expresión durante un período prolongado de time, como en todo el desarrollo y la expresión pueden ser controlados con precisión mediante el uso de diversos sistemas inducibles de drogas y expresión específica impulsada Cre. Este protocolo particular explica cómo inyectar un virus que expresa un sgRNA y Cas9 a octavos de final de un gen de interés en el cerebro de un ratón adulto. Los ratones se recuperan muy rápidamente de este procedimiento y la expresión del transgén viral se puede ver dentro de las 48 horas después de la inyección. Sin embargo, la expresión fluoróforo parece aumentar en el transcurso de semanas que resultan en niveles máximos cerca de 3 semanas después de la infección. Los ratones que se someten a inyección estereotáxica viral se pueden utilizar para el comportamiento, la electrofisiología, o estudios morfológicos. En general, el propósito de estos procedimientos es demostrar cómo un gen knockout en el cerebro de ratón adulto utilizando cirugía estereotáxica y un virus que expresa un sgRNA específico y Cas9.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="519">
	<tbody>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">List of Cell Culture Reagents</td>
			<td style="width:93px;"></td>
			<td style="width:60px;"></td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="63" rowspan="2" style="height:64px;width:139px;">293FT cell line</td>
			<td rowspan="2" style="width:93px;">Life Technologies</td>
			<td rowspan="2" style="width:60px;">R700-07</td>
			<td rowspan="2" style="width:228px;">For Lentivirus</td>
		</tr>
		<tr height="21">
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:139px;">293GP cell line</td>
			<td style="width:93px;">Clontech</td>
			<td style="width:60px;">631458</td>
			<td style="width:228px;">For Retrovirus</td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:139px;">Iscove&#39;s Modification of DMEM (IMDM)</td>
			<td style="width:93px;">Corning&#160;</td>
			<td style="width:60px;">10-016-CV</td>
			<td style="width:228px;">Complete IMDM with 10% FBS, 1% NEAA, 1% L-Gln, and&#160; 1% P/S</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">Fetal Bovine Serum (FBS)</td>
			<td style="width:93px;">Corning</td>
			<td style="width:60px;">35-011-CV</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="104">
			<td height="125" rowspan="2" style="height:126px;width:139px;">MEM Nonessential Amino Acids (NEAA)</td>
			<td rowspan="2" style="width:93px;">Corning</td>
			<td rowspan="2" style="width:60px;">25-025-CI</td>
			<td rowspan="2" style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:139px;">L-Glutamine solution, 100X (L-Gln)</td>
			<td style="width:93px;">Corning</td>
			<td style="width:60px;">25-005-CI</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:139px;">Pennicillin/Streptomycin solution, 100X (P/S)</td>
			<td style="width:93px;">Corning</td>
			<td style="width:60px;">30-002-CI</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="84" rowspan="2" style="height:84px;width:139px;">Polystyrene 10cm plate</td>
			<td rowspan="2" style="width:93px;">USA Scientific</td>
			<td rowspan="2" style="width:60px;">CC7682-3394</td>
			<td rowspan="2" style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:139px;">Trypsin EDTA 1X</td>
			<td style="width:93px;">Corning&#160;</td>
			<td style="width:60px;"> 
			&#160;25-053-CI</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">Reagent</td>
			<td style="width:93px;">Company</td>
			<td style="width:60px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:228px;">Notes</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">List of Transfection Reagents</td>
			<td style="width:93px;"></td>
			<td style="width:60px;"></td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">5ml polystyrene tubes</td>
			<td style="width:93px;">Fisher Scientific&#160;</td>
			<td style="width:60px;">352054</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="47">
			<td height="47" style="height:47px;width:139px;">Calcium Chloride Dihydrate (CaCl2)</td>
			<td style="width:93px;">Fisher Scientific&#160;</td>
			<td style="width:60px;">C69-500</td>
			<td style="width:228px;">Make a 2.5 M solution in ddH2O</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">Sodium Chloride (NaCl)</td>
			<td style="width:93px;">Fisher Scientific&#160;</td>
			<td style="width:60px;">S271-3</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">HEPES</td>
			<td style="width:93px;">Fisher Scientific&#160;</td>
			<td style="width:60px;">BP2939-100</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:139px;">Sodium phosphate dibasic</td>
			<td rowspan="2" style="width:93px;">Fisher Scientific&#160;</td>
			<td rowspan="2" style="width:60px;">S369-500</td>
			<td rowspan="2" style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="26">
			<td height="26" style="height:26px;width:139px;">(Na2HPO4)</td>
		</tr>
		<tr height="57">
			<td height="78" rowspan="2" style="height:78px;width:139px;">2X HEPES Buffered Saline (HBS)</td>
			<td rowspan="2" style="width:93px;"></td>
			<td rowspan="2" style="width:60px;"></td>
			<td style="width:228px;">500ml: 8.2g NaCl, 5.95g HEPES, 0.106g Na2HPO4, pH 7.01 (exact!)</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:228px;">filter and store at 4&#176;C</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">Caffeine</td>
			<td style="width:93px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:60px;">C0750-5G</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">0.22 &#181;M syringe filter unit</td>
			<td style="width:93px;">EMD Millipore&#160;</td>
			<td style="width:60px;">SLGV033RS</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">0.45 &#181;M syringe filter unit</td>
			<td style="width:93px;">EMD Millipore&#160;</td>
			<td style="width:60px;">SLHP033RS</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="41" rowspan="2" style="height:41px;width:139px;">60CC L/L Syringe</td>
			<td rowspan="2" style="width:93px;">Med-Vet International</td>
			<td rowspan="2" style="width:60px;">MV60CCLL</td>
			<td rowspan="2" style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:139px;">50 ml Conical Tube</td>
			<td style="width:93px;">Corning</td>
			<td style="width:60px;">352098</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">polyethylene glycol&#160;&#160; 6000 (PEG 6000)</td>
			<td style="width:93px;">Millipore</td>
			<td style="width:60px;">528877</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="41" rowspan="2" style="height:41px;width:139px;">(10X) Phosphate Buffered Saline (PBS)</td>
			<td rowspan="2" style="width:93px;">National Diagnostics</td>
			<td rowspan="2" style="width:60px;">CL-253</td>
			<td rowspan="2" style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:139px;">0.5 ml microcentrifuge tubes</td>
			<td style="width:93px;">USA Scientific</td>
			<td style="width:60px;">1605-0000</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">Matrigel</td>
			<td style="width:93px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:60px;">CB-40230A</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">6-well plate</td>
			<td style="width:93px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:60px;">353046</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">Paraformaldehyde</td>
			<td style="width:93px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:60px;">AC41678-5000</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">Donor Horse Serum</td>
			<td style="width:93px;">Cellgro</td>
			<td style="width:60px;">35-030-CV</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">TritonX-100</td>
			<td style="width:93px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:60px;">X100-500ML</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">10ml serological pipette</td>
			<td style="width:93px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:60px;">357551</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">anti-GFP, rabbit, 488 conjugate</td>
			<td style="width:93px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:60px;">A21311</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">Reagent</td>
			<td style="width:93px;">Company</td>
			<td style="width:60px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:228px;">Notes</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td colspan="2" height="21" style="height:21px;">&#160;Stereotaxic Surgery Reagents</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="85">
			<td height="85" style="height:85px;width:139px;">Vet-Syringe vet use T.B. Syringe only 1cc luer slip T.B. 100/bx</td>
			<td style="width:93px;">Med-Vet International</td>
			<td style="width:60px;">1CCVLS</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:139px;">&#160;Isoflurane&#160;</td>
			<td style="width:93px;"></td>
			<td style="width:60px;"></td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:139px;">Stainless Steel Scalpel Blades, #10, 100-pk</td>
			<td style="width:93px;">Med-Vet International</td>
			<td style="width:60px;">&#160;JOR580S</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">artificial tear ointment</td>
			<td style="width:93px;">Med-Vet International</td>
			<td style="width:60px;">RXPARALUBE-O</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">PVP PrepSolution&#160;</td>
			<td style="width:93px;">Med-Vet International</td>
			<td style="width:60px;">HPIV108208H</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">normal saline&#160;</td>
			<td style="width:93px;">Med-Vet International</td>
			<td style="width:60px;">DYND500MLSH</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">cotton tipped applicators</td>
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			<td style="width:60px;">CTA6</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:139px;">Triple antibiotic ointment&#160;</td>
			<td style="width:93px;">Med-Vet International</td>
			<td style="width:60px;">RXTRIP-OI15</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
		<tr height="64">
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		</tr>
		<tr height="43">
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			<td style="width:60px;">MV-711</td>
			<td style="width:228px;"></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

designing, packaging, and delivery of high titer crispr retro and lentiviruses via stereotaxic injection

Replication defective lentiviruses or retroviruses are capable of stably integrating transgenes into the genome of an infected host cell. This technique has been widely used to encode fluorescent proteins, opto- or chemo-genetic controllers of cell activity, or heterologous expression of human genes in model organisms. These viruses have also successfully been used to deliver recombinases to relevant target sites in transgenic animals, or even deliver small hairpin or micro RNAs in order to manipulate gene expression. While these techniques have been fruitful, they rely on transgenic animals (recombinases) or frequently lack high efficacy and specificity (shRNA/miRNA). In contrast, the CRISPR/Cas system uses an exogenous Cas nuclease which targets specific sites in an organism's genome via an exogenous guide RNA in order to induce double stranded breaks in DNA. These breaks are then repaired by non-homologous end joining (NHEJ), producing insertion and deletion (indel) mutations that can result in deleterious missense or nonsense mutations. This manuscript provides detailed methods for the design, production, injection, and validation of single lenti/retro virus particles that can stably transduce neurons to express a fluorescent reporter, Cas9, and sgRNAs to knockout genes in a model organism.

Tras el &quot;Protocolo para el diseño de una Guía de Strand (sgRNA) para CRISPR / Cas9 Retrovirus&quot;, oligos dirigidas a una secuencia particular se insertan en el vector de clonación PXL aguas abajo del promotor Hu6 y aguas abajo de un andamio guía de ARN usando los sitios de clonación BbsI (Figura 1, paso 1). Este sgRNA se escinde luego de PXL y se inserta en la columna vertebral pRubi usando los sitios BstBI y PacI (Figura 1, paso 2). Por último, otro sgRNA clonado en PXL se puede colocar aguas abajo de la primera guía de pRubi-Guía 1 (figura 1, paso 3), dirigido a otra área de la genética y aumentar las posibilidades de un golpe de gracia a través de NHEJ. Verificación de los constructos correctos debe ser determinado por análisis de secuencia. Una vez hecha esta construcción, puede ser empaquetado en un virus siguiendo el &quot;Protocolo para Retro / Lentiviral producción- CaPO4 el método&quot;. embalaje exitosa se confirmó por la infección de virus en células HEK293 con el fin de titular la virus. Si no hay expresión fluoróforo entonces no era probable un error durante el empaquetado del virus. La Figura 2 es un resultado representativo de 2 retrovirus, uno que expresan GFP y el otro mCherry expresar, co-inyecta en el giro dentado del ratón neonatal (7 días de edad) y la imagen de 21 días después de la inyección. Etiquetado de neuronas con mCherry o GFP permite la evaluación morfológica de diversas manipulaciones genéticas en el mismo tejido, donde un virus puede expresar una CRISPR mediada / Cas9 KO y el otro un virus control, que expresan únicamente un fluoróforo. inyección estereotáxica permite selectividad anatómica precisa como se demuestra por la infección discreta de las coordenadas destinados, el giro dentado. Al analizar las secciones del cerebro para la infección, es importante para mantener el tejido circundante hasta que se determina que la región anatómica correcta estaba infectado. Si no hay ningún signo de infección, entonces es posible que la inyección se produjo en una región de un vecinod puede ser identificado en las secciones de los alrededores. También puede ser útil para localizar el trayecto de la aguja para encontrar la zona de inyección exacta. Pseudotyped virus VSVG rara vez se diseminan fuera de los márgenes de la circunvolución dentada cuando se inyecta in vivo, y tienden a extenderse a lo largo de las células de eje infectar caudal / rostrales a lo largo de todo el giro dentado, tal como se analizó por la reconstrucción 3D (Figura 3). <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/53783/53783fig1.jpg" /> Figura 1:. Estrategia de clonación para el plásmido pRubi-Guía 1-Guía 2-retroviral CRISPR Esta estrategia es idéntica para los plásmidos de lentivirus basados-FU. oligos sgRNA se recuecen y se insertan en PXL usando los sitios de clonación BSBI. Después de la secuenciación para asegurar que el sgRNA se inserta con éxito en PXL, digerir el plásmido con BstBI y PacI. El inserto que se deja caer hacia fuera (cuadro negro) se clona en la espalda b viraluno (negro líneas de puntos) pRubi-Guía 1 CRISPR. Un segundo sgRNA también se puede insertar en PXL y se digirió a cabo utilizando la enzima PacI. Esto se clona en el vector de CRISPR pRubi-Guía 1 (líneas de puntos rojos), utilizando el sitio PacI. El plásmido resultante contiene entonces ambas cadenas de guía, así como los elementos necesarios virales, promotores y fluoróforos. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53783/53783fig1large.jpg" target="_blank">Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/53783/53783fig2.jpg" /> Figura 2:. De inyección retroviral del giro dentado del ratón Los retrovirus que expresan mCherry (rojo) o GFP (verde) se inyectaron en el giro dentado de un ratón p7. 21 días más tarde, los ratones fueron perfundidos y los cerebros se seccionaron y se tiñeron para GFP y mCherry. (A) Una imagen fluorescente de campo amplio 5X muestra el prECISIÓN de la inyección giro dentado y la especificidad de etiquetado dentado gyrus neuronas granulares. La morfología del hipocampo puede ser visto a través de la tinción (azul) Dapi. La barra de escala mide 200 micras. (B) Una imagen fluorescente 10X de gran campo demuestra que estos lentivirus alto título infectan un gran número de células cuya morfología se puede acceder a través de la expresión fluoróforo. La barra de escala mide 100 micras. (C) Los virus que expresan GFP o mCherry fueron co-inyectados en el giro dentado. El uso de un sistema de retrovirus, se puede utilizar un virus para hacer una manipulación genética marcada por GFP y otra manipulación marcado por mCherry, y luego evaluar los cambios individuales o aditivo debido a cada virus. La barra de escala mide 10 micras. <img alt="figura 3" src="/files/ftp_upload/53783/53783fig3.jpg" /> Figura 3:. Anatómico propagación de la inyección lentiviral co-inyección estereotáxica<html> de un virus GFP-shPten y un virus de control mCherry en el cerebro de un adulto Pten loxP / + ratón dio como resultado una propagación viral a lo largo de todo el eje rostral / caudal del giro dentado del hipocampo. Esto se muestra en una reconstrucción en 3D de la extensión de la inyección en el que contornos cerrados de la propagación viral se trazaron más de 21 secciones en serie (Z = 50 micras / sección) utilizando software de reconstrucción. Los trazados de contorno fueron alineados para generar las imágenes en 3D para la cuantificación del volumen. La propagación viral total se muestra en verde (volumen = 54.730.800 m 3) y la propagación dentado-localizada se muestra en morado (volumen = 27.275.200 m 3). El virus se propaga a lo largo del trayecto de la aguja y el cuerpo calloso en la intersección de la pista de la aguja además de llenar el eje rostral / caudal del giro dentado. La barra de escala mide 200 micras. Les / ftp_upload / 53783 / 53783video1frame.jpg &quot;/&gt; Suplementario vídeo 1. Diseño de sgRNAs para clonar en estructura principal retroviral y lentiviral. En este ejemplo de diseño RNA guía sintética (sgRNA), la secuencia genómica de ratón CHD8 se descarga desde NCBI. El codón de iniciación y la estructura exón se visualizaron después de Vector NTI. Esto nos permite copiar la región genómica alrededor del primer exón codificante y entramos en esta secuencia en Benchling. Benchling nos permite visualizar todas las sgRNAs potenciales en la región. Además, después de lo que indica la región genómica que tenemos de entrada, Benchling nos mostrará las puntuaciones en la diana y fuera de objetivo para cada guía de ARN. El usuario puede entonces seleccionar la guía de ARN con las puntuaciones más altas dentro y fuera de objetivo. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53783/Benchling_GuideRNA_Design.mp4" target="_blank">Por favor, haga clic aquí para ver el vídeo. (Haga clic aquí para descargar.)</a>

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Designing, Packaging, and Delivery of High Titer CRISPR Retro and Lentiviruses via Stereotaxic Injection

Proyectos, Embalaje y Entrega de alto título de CRISPR Retro y lentivirus vía estereotáxica Inyección

El sistema / Cas9 CRISPR ofrece el potencial para que la edición del genoma específico accesible y asequible para la comunidad científica. Este protocolo está destinado a demostrar cómo crear virus que Knockout un gen de interés utilizando el sistema / Cas9 CRISPR y, a continuación, inyectarlos estereotáxica en el cerebro del ratón adulto.

Replication defective lentiviruses or retroviruses are capable of stably integrating transgenes into the genome of an infected host cell. This technique ...

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

17.5K vistas.  Geisel School of Medicine at Dartmouth College.  El sistema / Cas9 CRISPR ofrece el potencial para que la edición del genoma específico accesible y asequible para la comunidad científica. Este protocolo está destinado a demostrar cómo crear virus que Knockout un gen de interés utilizando el sistema / Cas9 CRISPR y, a continuación, inyectarlos estereotáxica en el cerebro del ratón adulto. 

Video: Designing, Packaging, and Delivery of High Titer CRISPR Retro and Lentiviruses via Stereotaxic Injection

Gene Delivery to Postnatal Rat Brain by Non-ventricular Plasmid Injection and Electroporation

Creation of transgenic animals is a standard approach in studying functions of a gene of interest in vivo. However, many knockout or transgenic animals are not viable in those cases where the modified gene is expressed or deleted in the whole organism. Moreover, a variety of compensatory mechanisms often make it difficult to interpret the results. The compensatory effects can be alleviated by either timing the gene expression or limiting the amount of transfected cells.
The method of postnatal non-ventricular microinjection and in vivo electroporation allows targeted delivery of genes, siRNA or dye molecules directly to a small region of interest in the newborn rodent brain. In contrast to conventional ventricular injection technique, this method allows transfection of non-migratory cell types. Animals transfected by means of the method described here can be used, for example, for two-photon in vivo imaging or in electrophysiological experiments on acute brain slices.

This protocol describes a non-viral method of delivery of genetic constructs to a certain area of living rodent brain. The method consists of plasmid preparation, micropipette fabrication, neonatal rat pup surgery, microinjection of the construct, and in vivo electroporation.

Gen de entrega de cerebro de rata postnatal por la inyección no ventricular plásmido y electroporación

Creation of transgenic animals is a standard approach in studying functions of a gene of interest in vivo. However, many knockout or transgenic animals ...

Investigación

Neurociencias

Rodent Stereotaxic Surgery and Animal Welfare Outcome Improvements for Behavioral Neuroscience

Stereotaxic surgery for the implantation of cannulae into specific brain regions has for many decades been a very successful experimental technique to investigate the effects of locally manipulated neurotransmitter and signaling pathways in awake, behaving animals. Moreover, the stereotaxic implantation of electrodes for electrophysiological stimulation and recording studies has been instrumental to our current understanding of neuroplasticity and brain networks in behaving animals. Ever-increasing knowledge about optimizing surgical techniques in rodents1-4, public awareness concerning animal welfare issues and stringent legislation (e.g., the 2010 European Union Directive on the use of laboratory animals5) prompted us to refine these surgical procedures, particularly with respect to implementing new procedures for oxygen supplementation and the continuous monitoring of blood oxygenation and heart rate levels during the surgery as well as introducing a standardized protocol for post-surgical care. Our observations indicate that these modifications resulted in an increased survival rate and an improvement in the general condition of the animals after surgery (e.g. less weight loss and a more active animal). This video presentation will show the general procedures involved in this type of stereotaxic surgery with special attention to our several modifications. We will illustrate these surgical procedures in rats, but it is also possible to perform this type of surgery in mice or other small laboratory animals by using special adaptors for the stereotaxic apparatus6.

Stereotaxic surgery on rodents allows for targeted administration of drugs or electrical stimulation and recordings in awake, behaving animals. In this video presentation we will demonstrate recent procedural refinements to this long-standing procedure that successfully improved survival rate and reduced post-surgical weight loss.

Cirugía estereotáctica de roedores y mejoras del bienestar de los animales de resultados para la revista Behavioral Neuroscience

Stereotaxic surgery for the implantation of cannulae into specific brain regions has for many decades been a very successful experimental technique to ...

Expansion of Embryonic and Adult Neural Stem Cells by In Utero Electroporation or Viral Stereotaxic Injection

Somatic stem cells can divide to generate additional stem cells (expansion) or more differentiated cell types (differentiation), which is fundamental for tissue formation during embryonic development and tissue homeostasis during adulthood 1. Currently, great efforts are invested towards controlling the switch of somatic stem cells from expansion to differentiation because this is thought to be fundamental for developing novel strategies for regenerative medicine 1,2. However, a major challenge in the study and use of somatic stem cell is that their expansion has been proven very difficult to control.
Here we describe a system that allows the control of neural stem/progenitor cell (altogether referred to as NSC) expansion in the mouse embryonic cortex or the adult hippocampus by manipulating the expression of the cdk4/cyclinD1 complex, a major regulator of the G1 phase of the cell cycle and somatic stem cell differentiation 3,4. Specifically, two different approaches are described by which the cdk4/cyclinD1 complex is overexpressed in NSC in vivo. By the first approach, overexpression of the cell cycle regulators is obtained by injecting plasmids encoding for cdk4/cyclinD1 in the lumen of the mouse telencephalon followed by in utero electroporation to deliver them to NSC of the lateral cortex, thus, triggering episomal expression of the transgenes 5-8. By the second approach, highly concentrated HIV-derived viruses are stereotaxically injected in the dentate gyrus of the adult mouse hippocampus, thus, triggering constitutive expression of the cell cycle regulators after integration of the viral construct in the genome of infected cells 9. Both approaches, whose basic principles were already described by other video protocols 10-14, were here optimized to i) reduce tissue damage, ii) target wide portions of very specific brain regions, iii) obtain high numbers of manipulated cells within each region, and iv) trigger high expression levels of the transgenes within each cell. Transient overexpression of the transgenes using the two approaches is obtained by different means i.e. by natural dilution of the electroporated plasmids due to cell division or tamoxifen administration in Cre-expressing NSC infected with viruses carrying cdk4/cyclinD1 flanked by loxP sites, respectively 9,15.
These methods provide a very powerful platform to acutely and tissue-specifically manipulate the expression of any gene in the mouse brain. In particular, by manipulating the expression of the cdk4/cyclinD1 complex, our system allows the temporal control of NSC expansion and their switch to differentiation, thus, ultimately increasing the number of neurons generated in the mammalian brain. Our approach may be critically important for basic research and using somatic stem cells for therapy of the mammalian central nervous system while providing a better understanding of i) stem cell contribution to tissue formation during development, ii) tissue homeostasis during adulthood, iii) the role of adult neurogenesis in cognitive functions, and perhaps, iv) better using somatic stem cells in models of neurodegenerative diseases.

Expansion of Embryonic and Adult Neural Stem Cells by In Utero Electroporation or Viral Stereotaxic Injection

Controlling the expansion of somatic stem cells is a major factor hampering their study and use in therapy. Here we describe a system to temporally control neural stem cells expansion during development and adulthood, which can be used to increase the number of neurons generated in the mouse brain.

La expansión de las células madre embrionarias y adultas neurales por<em&gt; In Utero</em&gt; La electroporación o inyección estereotáxica Viral

Somatic stem cells can divide to generate additional stem cells (expansion) or more differentiated cell types (differentiation), which is fundamental for ...

Stereotaxic Injection of a Viral Vector for Conditional Gene Manipulation in the Mouse Spinal Cord

Intraparenchymal injection of a viral vector enables conditional gene manipulation in distinct populations of neurons or particular regions of the central nervous system. We demonstrate a stereotaxic injection technique that allows targeted gene expression or silencing in the dorsal horn of the mouse spinal cord. The surgical procedure is brief. It requires laminectomy of a single vertebra, providing for quick recovery of the animal and unimpaired motility of the spine. Controlled injection of a small vector suspension volume at low speed and use of a microsyringe with beveled glass cannula minimize the tissue lesion. The local immune response to the vector depends on the intrinsic properties of the virus employed; in our experience, it is minor and short-lived when a recombinant adeno-associated virus is used. A reporter gene such as enhanced green fluorescent protein facilitates monitoring spatial distribution of the vector, and the efficacy and cellular specificity of the transfection.

Viral vectors allow for targeted gene manipulation. We demonstrate a method for conditional gene expression or ablation in the mouse spinal cord, using stereotaxic injection of a viral vector into the dorsal horn, a prominent site of synaptic contact between primary somatosensory afferents and neurons of the central nervous system.

Inyección estereotáxica de un vector viral para la manipulación genética condicional en la médula espinal de ratón

Intraparenchymal injection of a viral vector enables conditional gene manipulation in distinct populations of neurons or particular regions of the central ...

Designing and Implementing Nervous System Simulations on LEGO Robots

We present a method to use the commercially available LEGO Mindstorms NXT robotics platform to test systems level neuroscience hypotheses. The first step of the method is to develop a nervous system simulation of specific reflexive behaviors of an appropriate model organism; here we use the American Lobster. Exteroceptive reflexes mediated by decussating (crossing) neural connections can explain an animal's taxis towards or away from a stimulus as described by Braitenberg and are particularly well suited for investigation using the NXT platform.1 The nervous system simulation is programmed using LabVIEW software on the LEGO Mindstorms platform. Once the nervous system is tuned properly, behavioral experiments are run on the robot and on the animal under identical environmental conditions. By controlling the sensory milieu experienced by the specimens, differences in behavioral outputs can be observed. These differences may point to specific deficiencies in the nervous system model and serve to inform the iteration of the model for the particular behavior under study. This method allows for the experimental manipulation of electronic nervous systems and serves as a way to explore neuroscience hypotheses specifically regarding the neurophysiological basis of simple innate reflexive behaviors. The LEGO Mindstorms NXT kit provides an affordable and efficient platform on which to test preliminary biomimetic robot control schemes. The approach is also well suited for the high school classroom to serve as the foundation for a hands-on inquiry-based biorobotics curriculum.

An approach to neural network modeling on the LEGO Mindstorms robotics platform is presented. The method provides a simulation tool for invertebrate neuroscience research in both the research lab and the classroom. This technique enables the investigation of biomimetic robot control principles.

Diseño e implementación de simulaciones del sistema nervioso en LEGO Robots

We present a method to use the commercially available LEGO Mindstorms NXT robotics platform to test systems level neuroscience hypotheses. The first step ...

Stereotaxic Infusion of Oligomeric Amyloid-beta into the Mouse Hippocampus

Alzheimer&#8217;s disease is a neurodegenerative disease affecting the aging population. A key neuropathological feature of the disease is the over-production of amyloid-beta and the deposition of amyloid-beta plaques in brain regions of the afflicted individuals. Throughout the years scientists have generated numerous Alzheimer&#8217;s disease mouse models that attempt to replicate the amyloid-beta pathology. Unfortunately, the mouse models only selectively mimic the disease features. Neuronal death, a prominent effect in the brains of Alzheimer&#8217;s disease patients, is noticeably lacking in these mice. Hence, we and others have employed a method of directly infusing soluble oligomeric species of amyloid-beta - forms of amyloid-beta that have been proven to be most toxic to neurons - stereotaxically into the brain. In this report we utilize male C57BL/6J mice to document this surgical technique of increasing amyloid-beta levels in a select brain region. The infusion target is the dentate gyrus of the hippocampus because this brain structure, along with the basal forebrain that is connected by the cholinergic circuit, represents one of the areas of degeneration in the disease. The results of elevating amyloid-beta in the dentate gyrus via stereotaxic infusion reveal increases in neuron loss in the dentate gyrus within 1 week, while there is a concomitant increase in cell death and cholinergic neuron loss in the vertical limb of the diagonal band of Broca of the basal forebrain. These effects are observed up to 2 weeks. Our data suggests that the current amyloid-beta infusion model provides an alternative mouse model to address region specific neuron death in a short-term basis. The advantage of this model is that amyloid-beta can be elevated in a spatial and temporal manner.

Here, we present a protocol for direct stereotaxic brain infusion of amyloid-beta. This methodology provides an alternative in vivo mouse model to address the short-term effects of amyloid-beta on brain neurons.

Infusión estereotáxica de Oligomeric beta-amiloide en el hipocampo del ratón

Alzheimer&#8217;s disease is a neurodegenerative disease affecting the aging population. A key neuropathological feature of the disease is the ...

Mouse Microsurgery Infusion Technique for Targeted Substance Delivery into the CNS via the Internal Carotid Artery

Animal models of central nervous system (CNS) diseases and, consequently, blood-brain barrier disruption diseases, require the delivery of exogenous substances into the brain. These exogenous substances may induce injurious impact or constitute therapeutic strategy. The most common delivery methods of exogenous substances into the brain are based on systemic deliveries, such as subcutaneous or intravenous routes. Although commonly used, these approaches have several limitations, including low delivery efficacy into the brain. In contrast, surgical methods that locally deliver substances into the CNS are more specific and prevent the uptake of the exogenous substances by other organs. Several surgical methods for CNS delivery are available; however, they tend to be very traumatic. Here, we describe a mouse infusion microsurgery technique, which effectively delivers substances into the brain via the internal carotid artery, with minimal trauma and no interference with normal CNS functionality.

Mouse Microsurgery Infusion Technique for Targeted Substance Delivery into the CNS via the Internal Carotid Artery

The present protocol describes a mouse microsurgery infusion technique, which effectively delivers substances directly into the brain via the internal carotid artery.

Técnica ratón Microcirugía de infusión para Targeted Sustancia de entrega en el SNC<i&gt; vía</i&gt; La arteria carótida interna

Animal models of central nervous system (CNS) diseases and, consequently, blood-brain barrier disruption diseases, require the delivery of exogenous ...

An Alternative and Validated Injection Method for Accessing the Subretinal Space via a Transcleral Posterior Approach

Subretinal injections have been successfully used in both humans and rodents to deliver therapeutic interventions of proteins, viral agents, and cells to the interphotoreceptor/subretinal compartment that has direct exposure to photoreceptors and the retinal pigment epithelium (RPE). Subretinal injections of plasminogen as well as recent preclinical and clinical trials have demonstrated safety and/or efficacy of delivering viral vectors and stem cells to individuals with advanced retinal disease. Mouse models of retinal disease, particularly hereditary retinal dystrophies, are essential for testing these therapies. The most common injection procedure in rodents is to use small transcorneal or transcleral incisions with an anterior approach to the retina. With this approach, the injection needle penetrates the neurosensory retina disrupting the underlying RPE and on insertion can easily nick the lens, causing lens opacification and impairment of noninvasive imaging. Accessing the subretinal space via a transcleral, posterior approach avoids these problems: the needle crosses the sclera approximately 0.5 mm from the optic nerve, without retinal penetration and avoids disrupting the vitreous. Collateral damage is limited to that associated with the focal sclerotomy and the effects of a transient, serous retinal detachment. The simplicity of the method minimizes ocular injury, ensures rapid retinal reattachment and recovery, and has a low failure rate. The minimal damage to the retina and RPE allows for clear assessment of the efficacy and direct effects of the therapeutic agents themselves. This manuscript describes a novel subretinal injection technique that can be used to target viral vectors, pharmacological agents, stem cells or induced pluripotent stem (iPS) cells to the subretinal space in mice with high efficacy, minimal damage, and fast recovery.

An Alternative and Validated Injection Method for Accessing the Subretinal Space via a Transcleral Posterior Approach

Subretinal injections are the most common technique for delivering large therapeutic agents such as proteins and viral vectors to photoreceptors and the retinal pigment epithelium. An alternative method in mice that successfully targets the subretinal space with minimal collateral damage and fast recovery times is described here.

Un método alternativo de inyección y validado para acceder al espacio subretiniano<i&gt; vía</i&gt; Un enfoque posterior transescleral

Subretinal injections have been successfully used in both humans and rodents to deliver therapeutic interventions of proteins, viral agents, and cells to ...

Delivery of Antibodies into the Murine Brain via Convection-enhanced Delivery

Convection-enhanced delivery (CED) is a neurosurgical technique enabling effective perfusion of large brain volumes using a catheter system. Such an approach provides a safe delivery method by-passing the blood brain barrier (BBB), thus allowing treatment with therapeutics with poor BBB-permeability or those for which systemic exposure is not desired, e.g., due to toxicity. CED requires optimization of the catheter design, injection protocol, and properties of the infusate. With this protocol we describe how to perform CED of a solution containing up to 20 &#181;g of an antibody into the caudate putamen of mice. It describes preparation of step catheters, testing them in vitro and performing the CED in mice using a ramping injection program. The protocol can be readily adjusted for other infusion volumes and can be used for injecting various tracers or pharmacologically active or inactive substances, including chemotherapeutics, cytokines, viral particles, and liposomes.

Convection-enhanced delivery (CED) is a method enabling effective delivery of therapeutics into the brain by direct perfusion of large tissue volumes. The procedure requires the use of catheters and an optimized injection procedure. This protocol describes a methodology for CED of an antibody into a mouse brain.

Entrega de anticuerpos en el cerebro murino a través de la entrega mejorada por convección

Convection-enhanced delivery (CED) is a neurosurgical technique enabling effective perfusion of large brain volumes using a catheter system. Such an ...

Induction of Leptomeningeal Cells Modification Via Intracisternal Injection

The protocol outlined here describes how to safely and manually inject solutions through the cisterna magna while eliminating the risk of damage to the underlying parenchyma. Previously published protocols recommend using straight needles that should be lowered to a maximum of 1-2 mm from the dural surface. The sudden drop in resistance once the dural membrane has been punctured makes it difficult to maintain the needle in a steady position. Our method, instead, employs a needle bent at the tip that can be stabilized against the occipital bone of the skull, thus preventing the syringe from penetrating into the tissue after perforation of the dural membrane. The procedure is straightforward, reproducible, and does not cause long-lasting discomfort in the operated animals. We describe the intracisternal injection strategy in the context of genetic fate mapping of vascular leptomeningeal cells. The same technique can, furthermore, be utilized to address a wide range of research questions, such as probing the role of leptomeninges in neurodevelopment and the spreading of bacterial meningitis, through genetic ablation of genes putatively implicated in these phenomena. Additionally, the procedure can be combined with an automatized infusion system for a constant delivery and used for tracking cerebrospinal fluid movement via injection of fluorescently labelled molecules.

We describe an intracisternal injection that employs a needle bent at the tip that can be stabilized to the skull, thus eliminating the risk of damage to the underlying parenchyma. The approach can be used for genetic fate mapping and manipulations of leptomeningeal cells and for tracking cerebrospinal fluid movement.

Inducción de células leptomeningeales Modificación a través de inyección intraciternal

The protocol outlined here describes how to safely and manually inject solutions through the cisterna magna while eliminating the risk of damage to the ...