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Method Article
Larves de drosophile sont capables de s'associer avec des stimuli odeur récompense gustative. Nous décrivons ici un paradigme simple de comportement qui permet l'analyse de l'apprentissage olfactif associatif appétitive.
Dans ce qui suit, nous décrivons les détails méthodologiques de l'apprentissage olfactif associatif appétit chez les larves de drosophile. L'installation, en association avec d'interférence génétique, fournit une poignée d'analyser les bases neuronales et moléculaire de l'apprentissage associatif spécifiquement à une réflexion simple larvaire.
Les organismes peuvent utiliser l'expérience passée pour ajuster le comportement présent. Une telle acquisition du potentiel de comportement peut être définie comme l'apprentissage et les bases physiques de ces potentiels que les traces mnésiques 1-4. Les neuroscientifiques essayer de comprendre comment ces processus sont organisés en fonction des changements moléculaires et neuronale dans le cerveau en utilisant une variété de méthodes dans des organismes modèles, allant des insectes aux vertébrés 5,6. Pour ces efforts, il est utile d'utiliser des systèmes modèles simples et accessibles expérimentalement. La larve Drosophila s'est avéré répondre à ces exigences fondées surla disponibilité de solides analyses comportementales, l'existence d'une variété de techniques transgéniques et l'organisation élémentaire du système nerveux comprenant seulement environ 10.000 neurones (quoique avec quelques concessions: limitations cognitives, comportementales, peu d'options et de la richesse de l'expérience douteuse) 7-10 .
Larves de drosophile peuvent créer des associations entre les odeurs et appétitive renforcement gustative comme le sucre 11-14. Dans un essai standard, mis en place dans le laboratoire de B. Gerber, les animaux reçoivent une formation de deux odeurs réciproque: Un premier groupe de larves est exposé à une odeur A avec un renforçateur gustative (récompense sucre) et est ensuite exposé à une odeur B sans armature 9. Pendant ce temps un deuxième groupe de larves reçoit une formation réciproque tout en éprouvant une odeur sans armature et étant ensuite exposée à odeurs B avec renforcement (récompense sucre). Dans ce qui suit les deux groupes sont tested pour leur préférence entre les deux odeurs. Préférences relativement plus élevés pour l'odeur récompensés reflètent l'apprentissage associatif - présenté comme un indice de performance (PI). La conclusion quant à la nature associative de l'indice de performance est convaincante, car en dehors de la contingence entre les odeurs et sapides, d'autres paramètres, tels que l'odeur et l'exposition de récompense, le passage du temps et de manipulation ne diffèrent pas entre les deux groupes 9.
1. Préparation
2. Formation Récompense de sucre et d'essai
Premier groupe | CS1 / (+) - CS2 / (-) | Réciproque groupe | CS2 / (+) - CS1 / (-) |
CS1 / (-) - CS2 / (+) | CS2 / (-) - CS1 / (+) | ||
CS2 / (+) - CS2 / (-) | CS1 / (+) - CS2 / (-) | ||
CS2 / (-) - CS1 / (+) | CS1 / (-) - CS2 / (+) |
Pour prévenir les effets systématiques des stimuli de l'environnement expérimental, il faut effectuer le test dans la moitié des cas, que l'OCT est présentée sur la gauche et vers la droite AM. Dans l'autre moitié des cas AM doivent être présentées sur la gauche et les PTOM sur la droite.
3. Les tests pour les tâches pertinentes sensori-moteur Facultés
La conception des expériences décrites ci-dessus permet d'analyser les odeurs de sucre dans l'apprentissage de type sauvage alimentation 3 e stade larvaire sur ses propres. Cependant, dans la vie quotidienne des chercheurs de laboratoire utilisent généralement deux ou plusieurs groupes expérimentaux de larves de comparer, si l'apprentissage olfactif dépend d'un pairgène particulier, un ensemble spécifique de neurones, un stock mutant, un régime alimentaire spécial, différentes conditions d'élevage, les produits chimiques toxiques ajoutés au cours du développement, etc Ainsi, dans tous les cas où deux ou plusieurs groupes expérimentaux de larves sont testés qu'on a à faire un ensemble d'expériences de contrôle obligatoires afin de tester si les différents groupes de larves montrent appropriées sensori-motrices acuité. Cela devient obligatoire phénotypes potentiels ne sont pas nécessairement en raison de capacités réduites ou abolies aux odeurs associés avec le sucre. Au contraire, les éventuels défauts d'apprentissage pourrait être basée sur les défauts à n'importe quelle étape du circuit sensori-motrice dans le traitement des odeurs et / ou de sucre. Ou en d'autres termes, si une larve mutante n'est pas en mesure de sucre sens, il ne peut pas établir une mémoire de sucre. Mais cela ne permet pas de conclure que la larve ne peut pas apprendre. En détail les expériences de contrôle suivantes doivent être effectuées pour tester la bonne PTOM, AM et le traitement des larves de fructose transgénique.
1. Test de naïf octobre préférence
Recueillir 30 d'alimentation 3 e stade larvaire d'un flacon de nourriture. Lavez-les soigneusement à l'eau du robinet comme décrit en 2.1. Placez un récipient odeur unique PTOM sur un côté d'un plat de Pétri agarose, ajouter les larves sur le milieu de la boîte de Pétri, fermez le couvercle et attendez 5 min, tels que les larves peuvent ramper sur la boîte de Pétri et les orienter vers les PTOM source de l'odeur. Par la suite compter le nombre de larves sur le côté gauche, au milieu et sur le côté droit de la boîte de Petri de test.
2. Test de préférence naïve AM
Recueillir 30 d'alimentation 3 e stade larvaire d'un flacon de nourriture. Lavez-les soigneusement à l'eau du robinet comme décrit en 2.1. Placez un récipient odeur unique AM sur un côté d'un plat de Pétri agarose, ajouter les larves sur le milieu de la boîte de Pétri, fermez le couvercle et attendez 5 min, tels que les larves peuvent ramper sur la boîte de Pétri et les orienter vers l'AM source de l'odeur. Par la suite compter le nombre de larvae sur le côté gauche, au milieu et sur le côté droit de la boîte de Petri de test.
3. Test de préférence sucre naïve
Recueillir 30 d'alimentation 3 e stade larvaire d'un flacon de nourriture. Lavez-les soigneusement à l'eau du robinet comme décrit en 2.1. Préparer des boîtes de Pétri contenant 2,5% d'agarose dans une moitié et un fructose 2M-agarose mélange dans l'autre moitié. Ajouter les larves sur la boîte de Pétri, fermez le couvercle et attendez 5 min, tels que les larves peuvent ramper sur la boîte de Pétri et les orienter vers le côté contenant du fructose. Par la suite compter le nombre de larves sur le côté gauche, au milieu et sur le côté droit de la boîte de Petri de test.
Préparation des boîtes de Petri moitié-moitié: Préparer normales des plaques d'agarose comme décrit ci-dessus à la section 1.2. Lorsque les boîtes de Pétri remplies d'agarose sont refroidies, coupez soigneusement le agarose sur l'axe vertical avec un scalpel. Enlever une moitié de l'agarose à partir de la boîte de Pétri. Add une chaude fructose solution d'agarose (pour la préparation voir 1.3) à la moitié vide de la boîte de Pétri. Veillez à ce que les deux moitiés de match et ne forment pas un bord défini - cela influe sur le comportement de choix des larves et rend une analyse comportementale plutôt difficile. 4.
Sham formation
Malgré un examen si l'alimentation transgénique 3 e stade larvaire sont capables de distinguer au niveau du type sauvage entre les PTOM et l'air (3,1), AM et de l'air (3,2) et le sucre et pur agarose (3,3), une série supplémentaire d'expériences de test a récemment été introduit (pour une discussion voir Gerber et Stocker, 2007). La justification de ces expériences est la suivante. Au cours de la formation des larves subissent manipulation massive et successive odeur et le sucre stimulation. Ainsi, il est bien possible que le phénotype observé apprentissage est trompeur (bien que l'odeur naïve et tests de perception de sucre sont à un niveau de type sauvage!). En effet, il est possible que les animaux transgéniques differ de larves de type sauvage en ce qui concerne la résistance au stress, la motivation, la fatigue, l'adaptation sensorielle, apprentissage contextuel, et les changements dans la satiété. Ainsi, Michels et al. (2005) ont introduit des contrôles qui testent si un mutant donné est capable de (1) détecter AM par rapport à un conteneur vide odeur si vous traitez les larves exactement comme lors de la formation, sauf que vous omettez la récompense et simplement exposer à la fois les odeurs; (2) détecter octobre après le même régime; (3) détecter AM par rapport à un conteneur vide odeur, si vous traitez les larves d'une manière semblable à la formation, sauf que vous omettez les odeurs et simplement exposer à la récompense, et (4 ) détecter octobre après le même schéma. Pour une discussion détaillée et de plus amples détails sur les méthodes s'il vous plaît voir Michels et al (2005) et de Gerber et Stocker (2007).
4. Analyse des données pour l'apprentissage Récompense sucre
5. Analyse des données pertinentes pour la tâche-sensori-moteur Facultés
La figure 1A montre une vue d'ensemble des procédures expérimentales pour des larves apprentissage associatif olfactif. En couplant une des deux odeurs présentées avec une récompense larves sucre acquérir le comportement potentiel d'exprimer une réponse intéressante à l'odeur récompensés par rapport à l'odeur récompense. Deux groupes de larves sont toujours formés soit par l'appariement du renfort de l'odeur ou du PTOM AM. L'indice de performance (PI) mesure la ...
La configuration décrite dans les larves de drosophile permet d'enquêter sur l'apprentissage olfactif associatif au sein d'un cerveau comparable élémentaire. L'approche est simple, pas cher, facile à mettre en place dans un laboratoire et ne nécessite pas de matériel de haute technologie 9. Nous présentons une version de l'expérience, d'étudier appétitive apprentissage associatif renforcé par la récompense fructose 11. La configuration décrite es...
Aucun conflit d'intérêt déclaré.
Nous tenons particulièrement à remercier les membres du laboratoire Gerber pour obtenir des instructions techniques sur leur dispositif expérimental et commentaires sur le manuscrit. Nous remercions également Lyubov Pankevych pour les soins et l'entretien de la mouche du type cantons stock sauvage. Ce travail est soutenu par la DFG TH1584/1-1 subvention, la subvention SNF 31003A_132812 / 1 et le Zukunftskolleg de l'Université de Konstanz (tout à AST).
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Nom du réactif | Entreprise | Numéro de catalogue | Numéro CAS |
Fructose | Sigma | 47740 | 57-48-7 |
NaCl | Fluka | 71350 | 7647-14-5 |
Agarose | Sigma | A5093 | 9012-36-6 |
1-octanol | Sigma | 12012 | 111-87-5 |
Amyle | Sigma | 46022 | 628-63-7 |
Pétrole | Sigma | 18512 | 8012-95-1 |
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