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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Le développement du cerveau mammifère nécessite un contrôle approprié de l’expression des gènes au niveau de la traduction. Ici, nous décrivons un système de profilage polysome avec une plate-forme facile à assembler de gradient de saccharose et de fractionnement pour évaluer l’état translationnel des ARNM dans le cerveau en développement.

Résumé

Le bon développement du cerveau mammifère repose sur un équilibre fin de la prolifération et de la différenciation des cellules souches neurales en différents types de cellules neurales. Cet équilibre est étroitement contrôlé par l’expression des gènes qui est peaufinée à plusieurs niveaux, y compris la transcription, la post-transcription et la traduction. À cet égard, un nombre croissant de preuves mettent en évidence un rôle essentiel de la régulation translationnelle dans la coordination des décisions relatives au sort des cellules souches neurales. La fractionnement polysome est un outil puissant pour l’évaluation du statut translationnel de l’ARNm aux niveaux génétique global et individuel. Ici, nous présentons un pipeline interne de profilage polysome pour évaluer l’efficacité translationnelle dans les cellules du cortex cérébral de souris en développement. Nous décrivons les protocoles pour la préparation de gradient de saccharose, la lyse de tissu, l’ultracentrifugation et l’analyse fractionnée-basée de l’état translationnel d’ARNm.

Introduction

Pendant le développement du cerveau des mammifères, les cellules souches neurales prolifèrent et se différencient pour générer des neurones et desgliales 1,2 . La perturbation de ce processus peut mener aux changements dans la structure et la fonction de cerveau, comme vu dans beaucoup de désordres neurodevelopmental3,4. Le bon comportement des cellules souches neurales nécessite l’expression orchestrée de gènes spécifiques5. Tandis que le contrôle épigénétique et transcriptionnel de ces gènes a été intensivement étudié, les rés....

Protocole

Toute l’utilisation des animaux a été supervisée par le Comité de protection des animaux de l’Université de Calgary. Les souris CD1 utilisées pour l’expérience ont été achetées auprès d’un fournisseur commercial.

1. Préparation de solutions

REMARQUE Pour prévenir la dégradation de l’ARN, vaporisez l’établi et tout l’équipement avec la solution de décontamination RNase. Les conseils sans RNase sont utilisés pour l’expérience. Toutes les solutions sont préparées dans l’eau sans RNase.

  1. Préparer la solution de bouillon de cycloheximide (100 mg/mL) dans DMSO et conserver à -20 °C.
  2. Préparez une solu....

Résultats

À titre de démonstration, le lysate cortical contenant 75 ARN μg (mis en commun à partir de 8 embryons) a été séparé par le gradient de saccharose en 12 fractions. Pics d’absorption UV à 254 nm fractions identifiées contenant le sous-unité 40S, sous-unité 60S, monosome 80S et polysomes (Figure 4A). Analyse des fractions par tache occidentale pour la grande sous-unité ribosomique, Rpl10 a montré sa présence dans la sous-unité 60S (fraction 3), monosome (fraction 4) et polyso.......

Discussion

Le profilage polysome est une technique couramment utilisée et puissante pour évaluer l’état translationnel à la fois au niveau d’un seul gène et à l’échelle dugénome 14 . Dans ce rapport, nous présentons un protocole de profilage polysome à l’aide d’une plate-forme assemblée à domicile et son application pour analyser le cortex de souris en développement. Cette plate-forme rentable est facile à assembler et à générer des gradients de saccharose robustes et reproductible.......

Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun intérêt concurrent.

Remerciements

Ces travaux ont été financés par une subvention découverte du CSERN (RGPIN/04246-2018 à G.Y.). G.Y. est chaire de recherche du Canada. S.K. a été financé par mitacs Globalink Graduate Fellowship et ACHRI Graduate Student Scholarship.

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matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
1.5 mL RNA free microtubesAxygenMCT-150-C
10 cm dishGreiner-Bio664160
1M MgCl2InvitrogenAM9530G
21-23G needleBD305193
2M KClInvitrogenAM8640G
30 mL syringeBD302832
Blunt end needleVWR20068-781
BreadboardThorlabsMB2530/M
Bromophenol blueSigma115-39-9
CD1 mouseCharles River Laboratory
Curved tip forcepsSigma#Z168785
CycloheximideSigma66-81-9
Data acquisition software TracerDAQMeasurement Computing
Digital converterMeasurement ComputingUSB-1208LS
Direct-zol RNA miniprep kitZymoR2070
Dithiothreitol (DTT)Bio-basic12-03-3483
DMSOBioshop67-68-5
Dumont No.5 forcepsSigma#F6521
Fraction collectorBio-RadModel 2110
HBSSWisent311-513-CL
Linear stage actuatorRattmmotorCBX1605-100A
Luciferase control RNAPromegaL4561
Maxima first strand cDNA synthesis kitThemo FisherM1681
Miniature V-clampThorlabsVH1/M
Mini-series breadboardThorlabsMSB7515/M
Mini-series optical postThorlabsMS2R/M
Mini-series pedestal post holder baseThorlabsMBA1
NaClBio-basic7647-14-5
Neurobasal mediaGibco21103-049
Ø12.7 mm aluminum postThorlabsTRA150/M
ParafilmBemisPM992
PerfeCTa SYBR green fastmixQuanta BioCA101414-274
Phosphate buffered saline (PBS)Wisent311-010-CL
PuromycinBioshop58-58-2
Right-angle clampThorlabsRA90/M
Right-angle Ø1/2" to Ø6 mm post clampThorlabsRA90TR/M
Rnase AWAYMolecular BioProducts7002
RNase free tipsFrogga BioFT10, FT200, FT1000
RNase free waterWisent809-115-CL
RNasinPromegaN2111
Slim right-angle bracketThorlabsAB90B/M
Small V-clampThorlabsVC1/M
Sodium deoxycholateSigma302-95-4
Stepper motor driverSongHeTB6600
SucroseBioshop57501
SW 41 Ti rotorBeckman Coulter331362
Syringe pumpHarvard Apparatus70-4500
Syringe pumpHarvard Apparatus70-4500
Triton-X-100Bio-basic9002-93-1
TrizolThermofisher Scientific15596018
Tube piercerBrandelBR-184
UltracentrifugeBeckman CoulterL8-70M
Ultracentrifuge tubesBeckman Coulter331372
UltraPure 1M Tris-HCl pH 7.5Invitrogen15567-027
UNO project super starter kitElegooEL-KIT-003
UV monitorBio-RadEM-1 Econo
Vertical bracketThorlabsVB01A/M

Références

  1. Götz, M., Huttner, W. B. The cell biology of neurogenesis. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 6, 777-788 (2005).
  2. Guillemot, F. Spatial and temporal specification of neural fates by transcription factor codes.

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Neurosciencesnum ro 171

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