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Les mouches adultes Drosophila melanogaster ont été largement utilisées comme organismes modèles pour étudier les mécanismes moléculaires sous-jacents aux réponses immunitaires innées antimicrobiennes de l’hôte et les stratégies d’infection microbienne. Pour promouvoir le stade larvaire de D. melanogaster en tant que système modèle supplémentaire ou alternatif, une technique d’injection larvaire est décrite.
L’utilisation de modèles non conventionnels pour étudier l’immunité innée et la virulence des agents pathogènes constitue une alternative précieuse aux modèles de mammifères, ce qui peut être coûteux et soulever des questions éthiques. Les modèles non conventionnels sont notoirement bon marché, faciles à manipuler et à cultiver, et ne prennent pas beaucoup de place. Ils sont génétiquement disponibles et possèdent des séquences complètes du génome, et leur utilisation ne présente aucune considération éthique. La mouche des fruits Drosophila melanogaster, par exemple, a fourni d’excellentes informations sur une variété de recherches sur le comportement, le développement, le métabolisme et l’immunité. Plus précisément, les mouches adultes et les larves de D. melanogaster possèdent plusieurs réactions de défense innées qui sont partagées avec les animaux vertébrés. Les mécanismes régulant les réponses immunitaires ont été principalement révélés par des études génétiques et moléculaires dans le modèle de D. melanogaster . Ici, une nouvelle technique d’injection larvaire est fournie, qui favorisera davantage les recherches sur les processus immunitaires innés chez les larves de D. melanogaster et explorera la pathogenèse d’un large éventail d’infections microbiennes.
Drosophila melanogaster a été immensément utilisé dans la recherche biologique et biomédicale pendant plusieurs décennies, car la gamme sophistiquée d’outils génétiques et moléculaires a progressivement évolué pour l’analyse d’un large éventail d’études1,2,3,4. Les aspects du développement, de l’homéostasie et de l’immunité innée conservés sur le plan évolutif chez D. melanogaster en ont fait un organisme modèle précieux pour l’étude de diverses maladies humaines et d’insectes5,6.
1. Élevage à la mouche
REMARQUE: Le cycle de vie de D. melanogaster est divisé en quatre étapes: embryon, larve, nymphe et adulte. Le temps de génération avec des conditions d’élevage optimales en laboratoire (~ 25 ° C, 60% d’humidité et suffisamment de nourriture) est d’environ 10 jours entre l’œuf fécondé et l’adulte éclos. Les femelles pondent environ 100 embryons par jour et l’embryogenèse dure environ 24 h22. Les larves subissent trois stades de développement (instars; L1-L3) en ~4 jours (L1 et L2: 24 h, et L3: 48 h). Les larves du premier stade commencent à se nourrir immédiatement à la ....
Lorsqu’elles sont effectuées correctement, les injections de larves de D. melanogaster montrent un effet spécifique à la bactérie. Les données de survie ont été recueillies à plusieurs moments à la suite d’infections à P. asymbiotica (souche ATCC43943), à E. coli (souche K12) et à PBS (figure 4). Alors que les larves de D. melanogaster sont sensibles à P. asymbiotica, ce qui compromet rapidement la survie, les larves injectées av.......
Drosophila melanogaster est l’un des modèles les plus précieux et les plus manipulés expérimentalement utilisés pour étudier l’immunité innée et la pathogenèse de diverses infections microbiennes. Cela est dû à son cycle de vie simple et rapide, à son entretien simple en laboratoire, à sa génétique évolutive bien établie et à sa boîte à outils génétique diversifiée. Les méthodes antérieures d’injection de larves de D. melanogaster, telles que l’utilisation d’un disposi.......
Les auteurs ne déclarent aucun intérêt concurrent.
Nous remercions les membres du Département des sciences biologiques de l’Université George Washington (GWU) pour leur lecture critique du manuscrit. GT a été soutenu par une bourse d’été Harlan de GWU. Toutes les figures graphiques ont été réalisées à l’aide de BioRender.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Fly Food B (Bloomington Recipe) | LabExpress | 7001-NV | Food B, in narrow vials, 100 vials/tray |
100 x 15, Mono Petri Dishes Fully Stackable | VWR | 25384-342 | Diameter 100 x 15 mm |
60 x 15, Mono Petri dishes Fully Stackable | VWR | 25384-092 | Diameter 60 x 15 mm |
Glass capillaries | VWR | 53440-186 | |
Grade 1 qualitative filter paper standard grade, circle | VWR | 28450-150 | Diameter 150 mm |
Lab culture Class II Type A2 Biosafety Safety Cabinet | ESCO | LA2-4A2-E | |
LB Agar | Fisher Scientific | BP1425-500 | LB agar miller powder 500 g |
LB Broth | Fisher Scientific | BP1426-500 | LB broth miller powder 500 g |
Mineral oil | Alfa Aesar, Thermo Fisher Scientific | 31911-A1 | |
NanoDrop 2000/2000c Spectrophotometer | Thermo Fisher Scientific | ND-2000C | |
Nanoject III Programmable Nanoliter Injector | Drummond | 3-000-207 | |
Narrow Drosophila Vials, Polystyrene | Genesee Scientific | 32-109 | |
Needles, hypodermic | VWR | 89219-316 | 22 G, 25 mm |
Next Generation Micropipette Puller | World Precision Instruments | SU-P1000 | |
PBS | VWR | 97062-732 | Buffer PBS tablets biotech grade 200tab |
Prism | GraphPad | Version 8 | |
Syringes - plastic, disposable | VWR | 76124-652 | 20 mL |
Trypan Blue | Sigma-Aldrich | T8154 |
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