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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats Représentatifs
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Nous présentons ici un protocole d’extraction du venin de Trichogramma dendrolimi à l’aide d’un hôte artificiel créé avec un film de polyéthylène et une solution d’acides aminés.

Résumé

Les guêpes parasitoïdes sont un groupe diversifié d’insectes hyménoptères qui constituent des ressources inestimables pour la lutte biologique contre les ravageurs. Pour assurer un parasitisme réussi, les guêpes parasitoïdes injectent du venin dans leurs hôtes pour supprimer l’immunité de leurs hôtes, moduler le développement, le métabolisme et même le comportement des hôtes. Avec plus de 600 000 espèces estimées, la diversité des guêpes parasitoïdes dépasse celle d’autres animaux venimeux, tels que les serpents, les escargots coniques et les araignées. Le venin de guêpe parasitoïde est une source sous-explorée de molécules bioactives avec des applications potentielles dans la lutte antiparasitaire et la médecine. Cependant, la collecte du venin parasitoïde est difficile en raison de l’impossibilité d’utiliser la stimulation directe ou électrique et de la difficulté de dissection en raison de leur petite taille. Trichogramma est un genre de minuscules guêpes parasitoïdes d’œufs (~0,5 mm) qui sont largement utilisées pour la lutte biologique contre les lépidoptères ravageurs dans l’agriculture et les forêts. Nous rapportons ici une méthode d’extraction du venin de T. dendrolimi à l’aide d’hôtes artificiels. Ces hôtes artificiels sont créés avec un film de polyéthylène et des solutions d’acides aminés, puis inoculés avec des guêpes Trichogramma pour le parasitisme. Le venin a ensuite été recueilli et concentré. Cette méthode permet d’extraire de grandes quantités de venin de trichogramme tout en évitant la contamination d’autres tissus causée par la dissection, un problème courant dans les protocoles de dissection de réservoir de venin. Cette approche innovante facilite l’étude du venin de Trichogramma , ouvrant la voie à de nouvelles recherches et applications potentielles.

Introduction

Les guêpes parasitoïdes sont des insectes hyménoptères parasites qui sont des ressources importantes pour la lutte biologique1. Il existe une grande variété de guêpes parasitoïdes, avec plus de 600 000 espèces estimées2. La diversité des guêpes parasitoïdes dépasse de loin celle d’autres arthropodes venimeux, tels que les serpents, les escargots coniques, les araignées, les scorpions et les abeilles. Le venin est un facteur parasitaire important chez les guêpes parasitoïdes. Pour un parasitisme réussi, le venin est injecté dans l’hôte, modulant le comportement, l’immunité, le développement et le métabolisme de l’hôte

Protocole

1. L’élevage d’insectes

  1. Nourrissez Corcyra cephalonica avec de la farine de maïs à une température de 26 ± 1 °C et à une humidité relative de 40 % ± 10 %.
  2. Élevez la souche T. dendrolimi de l’insectarium Jilin à l’intérieur en utilisant les œufs de Corcyra cephalonica comme hôtes. Nourrir les guêpes adultes avec 10 % d’eau de saccharose dans des tubes de drosophile à une température de 26 ± 1 °C, une humidité relative de 70 % ± 10 %, une lumière (L) : sombre (D) une période de 14 h : 10 h.

2. Préparation de cartes d’oeufs en film plastique polyéthyl....

Résultats Représentatifs

La concentration en protéines d’échantillons représentatifs de venin a été mesurée à l’aide de la trousse d’analyse des protéines, et les résultats sont présentés dans le tableau 1. Les résultats ont montré que la concentration de protéine de venin recueillie par cette méthode variait de 0,35 μg/μL à 0,46 μg/μL, tandis que le témoin négatif de la solution d’acides aminés n’avait qu’une concentration en protéines de 0,03 μg/μL à 0,05 μg/μL. La concentration de prot.......

Discussion

Nous présentons ici une méthode d’extraction du venin de T. dendrolimi à l’aide d’hôtes artificiels. Les points clés de l’expérience de collecte de venin sont les suivants. (1) Au cours de la préparation, T. dendrolimi doit être anesthésié rapidement avec une concentration appropriée de CO2. Si la concentration de CO2 est trop faible, elle sera insuffisante pour anesthésier rapidement les trichogrammes . À l’inverse, si la concentration est trop éle.......

Déclarations de divulgation

L’auteur n’a rien à divulguer et n’a pas d’intérêts financiers concurrents.

Remerciements

Nous remercions le soutien financier de la Fondation des sciences naturelles de la province de Hainan (subvention n° 323QN262), de la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (subvention n° 31701843 et 32172483), du Fonds d’innovation pour la science et la technologie agricoles du Jiangsu (subvention n° 323QN262). CX(22)3012 et CX(21)3008), la Fondation « Shuangchuang Doctor » de la province du Jiangsu (subvention n° 202030472) et le fonds de démarrage de l’Université agricole de Nanjing (subvention n° 804018).

....

matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
10 μm Nylon NetMilliporeNY1002500For filtering the eggs
10% Polyvinyl alcoholAladdinP139533For attractting  T. dendrolimi  to lay eggs
10% Sucrose waterSinopharm Chemical Reagent 10021463Feed Trichogramma dendrolimi
4x LDS loading bufferAce HardwareB23010301SDS-PAGE
Collection boxDeli8555Container for T. dendrolimi parasitism
Future PAGE  4–12% (12 wells)Ace HardwareJ70236502XSDS-PAGE
GenScript eStain L1 protein staining apparatusGenScriptL00753SDS-PAGE
Glass grinding rod  Applygentb6268Semicircular protrudations 
L- LeucineSolarbioL0011Artificial host components
L-HistidineAladdinA2219458Artificial host components
L-PhenylalanineSolarbioP0010Artificial host components
Mini-CentrifugesScilogexD1008Centrifuge
MOPS-SDS running bufferAce HardwareB23021SDS-PAGE
Omni-Easy Instant BCA protein assay kitShanghai Yamay Biomedical Technology ZJ102For esimation of venom protein concentration
PCR plate layout of 96 holesThermo FisherAB1400LSemicircular protrudations 
Polyethylene plastic filmSuzhou Aopang Trading  001c5427Artificial egg card
Prestained color protein marker(10–180 kDa)YiFeiXue BiotechYWB007SDS-PAGE
Rubber bandGuangzhou qianrui biology science and technology009Tighten the plastic film and the collection box
Silicone rubber septa mat, 96-well, round holeSangon BiotechF504416-0001Semicircular protrudations 

Références

  1. Pennacchio, F., Strand, M. R. Evolution of developmental strategies in parasitic hymenoptera. Annual Review of Entomology. 51, 233-258 (2006).
  2. Yan, Z. C., Ye, X. H., Wang, B. B., Fang, Q., Ye, G. Y.

Réimpressions et Autorisations

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