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Ici, un protocole pour la culture d’organoïdes œsophagiens humains et la culture d’interface air-liquide est fourni. La culture de l’interface air-liquide des organoïdes œsophagiens peut être utilisée pour étudier l’impact des cytokines sur la barrière épithéliale œsophagienne.
L’épithélium squameux de l’œsophage est directement exposé à l’environnement, faisant continuellement face à des antigènes étrangers, y compris des antigènes alimentaires et des microbes. Le maintien de l’intégrité de la barrière épithéliale est essentiel pour prévenir les infections et éviter l’inflammation causée par des antigènes inoffensifs d’origine alimentaire. Cet article fournit des protocoles simplifiés pour générer des organoïdes œsophagiens humains et des cultures d’interface air-liquide à partir de biopsies de patients afin d’étudier le compartiment épithélial de l’œsophage dans le contexte de l’homéostasie tissulaire et de la maladie. Ces protocoles ont constitué des jalons scientifiques importants au cours de la dernière décennie, décrivant des structures tridimensionnelles ressemblant à des organes à partir de cellules primaires dérivées de patients, d’organoïdes et de cultures d’interface air-liquide. Ils offrent la possibilité d’étudier la fonction de cytokines, de facteurs de croissance et de voies de signalisation spécifiques dans l’épithélium de l’œsophage dans un cadre tridimensionnel tout en conservant les propriétés phénotypiques et génétiques du donneur. Les organoïdes fournissent des informations sur la microarchitecture tissulaire en évaluant le transcriptome et le protéome après stimulation par cytokines. En revanche, les cultures d’interface air-liquide permettent d’évaluer l’intégrité de la barrière épithéliale par des mesures de résistance transépithéliale (TEER) ou de flux de macromolécules. La combinaison de ces organoïdes et des cultures d’interface air-liquide est un outil puissant pour faire avancer la recherche sur les altérations de la barrière épithéliale œsophagienne.
L’inflammation de l’œsophage compromet l’intégrité de la barrière épithéliale 1,2,3,4,5, comme observé dans l’œsophagite à éosinophiles (EoE), une maladie inflammatoire chronique de l’œsophage6 dominée par Th2. L’œsophage à éosinophile a été décrit pour la première fois dans les années 1990 7,8 et est principalement induit par des antigènes alimentaires 9,10,11,12,13
Les procédures ont été approuvées par la Commission d’éthique de la Suisse du Nord-Ouest et centrale (EKNZ ; N° de projet 2019-00273). Tous les patients ont fourni un consentement éclairé écrit pour l’utilisation expérimentale des biopsies avant l’examen endoscopique. Les réactifs et l’équipement utilisés dans l’étude sont énumérés dans la table des matériaux.
1. Isolement cellulaire pour les organoïdes œsophagiens dérivés de patients
REMARQUE : Le tableau 1 présente une liste des constituants du milieu pour la culture des organoïdes œsophagiens humains.
Les organoïdes œsophagiens se développeront à partir de cellules primaires extraites des biopsies des patients conformément aux instructions du protocole fourni, tel que documenté avec un microscope à fond clair inversé (Figure 1). Les ASC épithéliales commencent à former des amas de cellules de manière auto-organisée dans les deux premiers jours de culture après l’ensemencement des cellules isolées dans l’extrait de membrane basale, servant d’échafaudage. La taille et .......
Les procédures fournies permettent la culture d’organoïdes dérivés de patients et de cultures ALI avec de fortes chances de succès. Le protocole des organoïdes a été adapté à partir du premier protocole publié rapportant la génération d’organoïdes œsophagiens humains26 et d’un protocole récemment publié32. Sherill et ses collègues ont décrit le modèleALI 22. Les organoïdes et les modèles de culture ALI s’entraident dans .......
Les auteurs n’ont rien à divulguer.
La subvention FNS 310030_219210 accordée à J.H.N. a soutenu la publication de ce manuscrit sans restriction. La figure 1 a été créée à l’aide de BioRender.com.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1250 µL Griptip - Filter | Integra | 4445 | |
300 µL Griptip - Filter | Integra | 4435 | |
70 µM cell strainer | Sarstedt | 83.3945.070 | |
Ascorbic Acid | Sigma-Aldrich (Merck) | A4544 | |
Bovine pituitary extract | Gibco (Thermo Fischer Scientific) | 3700015 | |
Calcium chloride | Sigma-Aldrich (Merck) | 21115 | |
Cell Culture Multiwell Plates CELLSTAR for suspension cultures | Greiner Bio-One | 7.657 185 | |
Cultrex Basement Membrane Extract (BME), Type 2, Pathclear | R&D Systems (Bio-Techne) | 3532-010-02 | |
Dimethyl sulfoxide (DMSO), >99,5% BioScience Grade | Carl Roth | A994 | |
Dispase I | Corning | 354235 | |
Dispase II | Sigma-Aldrich (Merck) | D4693 | |
Dulbeccos Phosphate Buffered Saline (DPBS) | Sigma-Aldrich (Merck) | D8537 | |
EVE Automated Cell Counter | NanoEntek | EVE-MC | |
EVE Cell counting slide | NanoEntek | EVS-050 | |
Falcon 5 mL Round Bottom Polystyrene Test Tube, with Cell Strainer Snap Cap | Falcon | 352235 | |
Fluorescin isothiocyanate (FITC)-dextran | Sigma-Aldrich (Merck) | FD4 | average mol wt 3000-5000 |
Heraeus - Megafuge 40R | Thermo Fisher Scientific | 75004518 | |
Human recombinant epidermal growth factor | Gibco (Thermo Fischer Scientific) | 3700015 | |
Keratinocyte-SFM | Gibco (Thermo Fischer Scientific) | 17005042 | |
Penicillin-Streptomycin | Gibco (Thermo Fischer Scientific) | 15140122 | |
Recombinant Human KGF/FGF-7 Protein | R&D Systems (Bio-Techne) | 251-KG-010/CF | |
Screw cap tube, 15 mL | Sarstedt | 62.554.502 | |
Single Channel EVOLVE 100-1000 µL | Integra | 3018 | |
Single Channel EVOLVE 20-200 µL | Integra | 3016 | |
Syringe 1 mL | 1134950 | ||
ThermoMixer C | Eppendorf | 5382000015 | |
Trypsin inhibitor from Glycine max (soybean) | Sigma-Aldrich (Merck) | T9128 | |
Trypsin-EDTA | SAFC Biosciences (Merck) | 59418C | |
Y27632 dihydrochloride | Tocris (Bio-Techne) | 1254 |
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