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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats Représentatifs
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Ici, nous présentons la préparation étape par étape de l’amplification isotherme prémélangée et lyophilisée basée sur la recombinase et des réactions basées sur CRISPR (Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats), qui peuvent être utilisées pour la détection de biomarqueurs d’acides nucléiques d’agents pathogènes de maladies infectieuses ou d’autres marqueurs génétiques d’intérêt.

Résumé

Le diagnostic moléculaire par détection basée sur CRISPR (Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats) a une grande précision diagnostique et des attributs qui conviennent à une utilisation sur le lieu d’intervention, tels que des délais d’exécution rapides pour les résultats, des lectures simples et pratiques et l’absence d’instruments compliqués. Cependant, les réactions peuvent être lourdes à réaliser sur le lieu d’intervention en raison de leurs nombreux composants et des étapes de manutention manuelles. Dans ce document, nous fournissons un protocole optimisé étape par étape pour la détection robuste des agents pathogènes et des marqueurs génétiques avec une amplification isotherme basée sur la recombinase et des réactifs basés sur CRISPR, qui sont prémélangés puis lyophilisés dans des formats faciles à stocker et prêts à l’emploi. Les réactifs prémélangés et lyophilisés peuvent être réhydratés pour une utilisation immédiate et conserver des efficacités d’amplification et de détection élevées. Nous fournissons également un guide de dépannage pour les problèmes couramment rencontrés lors de la préparation et de l’utilisation de réactifs prémélangés et lyophilisés pour les diagnostics basés sur CRISPR, afin de rendre la plate-forme de détection plus accessible aux communautés plus larges de diagnostic/tests génétiques.

Introduction

Le diagnostic basé sur CRISPR pour la détection de biomarqueurs d’acides nucléiques a été signalé pour la première fois en 2017 1,2,3,4, et depuis lors, il a fait ses preuves en tant que diagnostic de nouvelle génération avec des tests approuvés par la Food and Drug Administration (FDA), en particulier pour la détection de l’ARN du coronavirus du syndrome respiratoire aigu sévère 2 (SRAS-CoV-2), dans plusieurs pays 5,6,7,8

Protocole

1. Préparation de réactifs prémélangés RT-RPA lyophilisés

  1. Préparation de l’équipement
    1. Préparez un dewar ou un plateau d’azote liquide pour la congélation instantanée des réactions. Remplissez le dewar ou le plateau avec de l’azote liquide.
    2. Lyophilisateur
      1. Vérifiez qu’il n’y a pas d’eau condensée dans les tubes de vidange et à l’intérieur de la chambre ; Retirez l’eau si nécessaire.
      2. Nettoyez l’intérieur de la chambre et le support métallique du tube de microcentrifugation de 1,5 ml avec une solution de décontamination RNase, suivie d’éthanol à 70 %.
      3. Fermez la po....

Résultats Représentatifs

Nous mettons en évidence la cinétique de la génération du signal de fluorescence FAM à partir de la détection combinée des gènes s et n du SRAS-CoV-2, et comment l’information a été utilisée pour déterminer les conditions optimales pour les formulations de réaction lyophilisées et prémélangées. Dans tous les cas, nous avons inclus des échantillons avec des valeurs de Ct bien en deçà de la limite de détection déterminée (Ct .......

Discussion

Il y a des étapes critiques dans ce protocole. Pour la ségrégation de zone, il est recommandé d’utiliser des espaces séparés pour l’extraction des acides nucléiques, la préparation du mastermix (zone de préamplification), l’ajout d’échantillons et la détection d’amplicons (zone de post-amplification). Chaque zone doit être réglée à l’aide d’un ensemble distinct d’outils et d’équipements. N’apportez pas d’outils d’une zone à une autre, en particuli.......

Déclarations de divulgation

M.P. et C.U. ont déposé un brevet en Thaïlande sur les formulations pour la détection multiplexée de l’ARN du SARS-CoV-2. R.K. ne déclare aucun intérêt concurrent.

Remerciements

C.U. reconnaît le financement de la Siam Commercial Bank dans le cadre du VISTEC-Siriraj Frontier Research Center, et de la Thailand Science Research and Innovation (TSRI), fonds fondamental, exercice 2024, numéro de subvention FRB670026/0457. R.K. et M.P. sont soutenus par des fonds d’études et d’assistanat de recherche de VISTEC, respectivement.

....

matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
Material
Betaine solutionSigma-AldrichB0300-1VL
DEPC-Treated waterInvitrogenAM9915G
Dithiothreitol (DTT)Merck3870-25GM
EpiScript reverse transcriptaseLucigenERT12925K
Gly-Gly-Gly Sigma-AldrichSIA-50239-1G
LwaCas13aProducing in-houseStrain name:Leptotrichia wadei, Abbreviation: Lwa, Protein name: LwaCas13a
Magnesium chloride solution, 1MSigma-AldrichM1028-10X1ML
NxGenT7 RNA polymeraseLucigen30223-2
Poly(ethylene glycol)Sigma-Aldrich81300-1KG
Potassium acetate solution, 5MSigma-Aldrich95843-100ML-F
Riobnucleotide Solution MixNEBN0466L
RNase HNEBM0297L
SucroseTCITCI-S0111-500G
Trehalose DihydrateSigma-AldrichSIA-90210-50G
Trizma hydrochloride solution, 1M, pH 7.4Sigma-AldrichT2194-100ML
TwistAmp Basic kitTwistDxTABAS03KIT
Equipment
BluPAD Dual LED Blue/White light transilluminatorBio-HelixBP001CU
Dry Bath Dual BlockELITE4-2-EL-02-220Model: EL-02
Fluorescence microplate readerTecan30050303Model: Infinite 200 Pro
Freeze dryerLABCONCO794001030FreeZone Triad Benchtop Freeze Dryer
Microplate 384-wellGreinerGDE0784076F-Bottom, small volume, Hibase, Med. Binding, Black
Real-time thermal cycler (CFX Connect Real-Time PCR System)Bio-Rad185-5201Model: CFX Connect Optics Module
Oligonucleotide
s-gene forward RPA primerIDTGAAATTAATACGACTCAC
TATAGGGAGGTTTCAAAC
TTTACTTGCTTTACATAGA
s-gene reverse RPA primerIDTTCCTAGGTTGAAGA
TAACCCACATAATAAG
n-gene forward RPA primerIDTGAAATTAATACGACTC
ACTATAGGAACTTCTC
CTGCTAGAATGGCTG
n-gene reverse RPA primerIDTCAGACATTTTGCTCTC
AAGCTGGTTCAATC
LwaCas13a-crRNA for the s geneSynthegoGAUUUAGACUACCCCAAAAAC
GAAGGGGACUAAAACGCAGCA
CCAGCUGUCCAACCUGAAGAAG
LwaCas13a-crRNA for the n geneSynthegoGAUUUAGACUACCCCAAAAACG
AAGGGGACUAAAACAAAGCAAG
AGCAGCAUCACCGCCAUUGC
FAM-polyU-IABkFQ reporterIDT56-FAM/rUrUrUrUrU/3IABkFQ
O-hannah_cytb_F RPA primerIDTGAAATTAATACGACTCACTA
TAGGGTACGGATGAACCATA
CAAAACCTTCACGCAATCG
O-hannah_cytb_R RPA primerIDTAAGATCCATAGTAGATTC
CTCGTGCGATGTGGATA
synT7crRNA13a_ O_hannah IDTGCGCATCCATATTCTTCAT
CTGCATTTAGTTTTAGTCC
CCTTCGTTTTTGGGGTA
GTCTAAATCCCCTATAGT
GAGTCGTATTAATTTC

Références

  1. Gootenberg, J. S., et al. Nucleic acid detection with CRISPR-Cas13a/C2c2. Science. 356 (6336), 438-442 (2017).
  2. Kaminski, M. M., Abudayyeh, O. O., Gootenberg, J. S., Zhang, F., Collins, J. J. CRISPR-based diagnostics. Nat Biomed Eng. 5....

Réimpressions et Autorisations

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