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Ici, nous présentons la préparation étape par étape de l’amplification isotherme prémélangée et lyophilisée basée sur la recombinase et des réactions basées sur CRISPR (Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats), qui peuvent être utilisées pour la détection de biomarqueurs d’acides nucléiques d’agents pathogènes de maladies infectieuses ou d’autres marqueurs génétiques d’intérêt.
Le diagnostic moléculaire par détection basée sur CRISPR (Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats) a une grande précision diagnostique et des attributs qui conviennent à une utilisation sur le lieu d’intervention, tels que des délais d’exécution rapides pour les résultats, des lectures simples et pratiques et l’absence d’instruments compliqués. Cependant, les réactions peuvent être lourdes à réaliser sur le lieu d’intervention en raison de leurs nombreux composants et des étapes de manutention manuelles. Dans ce document, nous fournissons un protocole optimisé étape par étape pour la détection robuste des agents pathogènes et des marqueurs génétiques avec une amplification isotherme basée sur la recombinase et des réactifs basés sur CRISPR, qui sont prémélangés puis lyophilisés dans des formats faciles à stocker et prêts à l’emploi. Les réactifs prémélangés et lyophilisés peuvent être réhydratés pour une utilisation immédiate et conserver des efficacités d’amplification et de détection élevées. Nous fournissons également un guide de dépannage pour les problèmes couramment rencontrés lors de la préparation et de l’utilisation de réactifs prémélangés et lyophilisés pour les diagnostics basés sur CRISPR, afin de rendre la plate-forme de détection plus accessible aux communautés plus larges de diagnostic/tests génétiques.
Le diagnostic basé sur CRISPR pour la détection de biomarqueurs d’acides nucléiques a été signalé pour la première fois en 2017 1,2,3,4, et depuis lors, il a fait ses preuves en tant que diagnostic de nouvelle génération avec des tests approuvés par la Food and Drug Administration (FDA), en particulier pour la détection de l’ARN du coronavirus du syndrome respiratoire aigu sévère 2 (SRAS-CoV-2), dans plusieurs pays 5,6,7,8
1. Préparation de réactifs prémélangés RT-RPA lyophilisés
Nous mettons en évidence la cinétique de la génération du signal de fluorescence FAM à partir de la détection combinée des gènes s et n du SRAS-CoV-2, et comment l’information a été utilisée pour déterminer les conditions optimales pour les formulations de réaction lyophilisées et prémélangées. Dans tous les cas, nous avons inclus des échantillons avec des valeurs de Ct bien en deçà de la limite de détection déterminée (Ct .......
Il y a des étapes critiques dans ce protocole. Pour la ségrégation de zone, il est recommandé d’utiliser des espaces séparés pour l’extraction des acides nucléiques, la préparation du mastermix (zone de préamplification), l’ajout d’échantillons et la détection d’amplicons (zone de post-amplification). Chaque zone doit être réglée à l’aide d’un ensemble distinct d’outils et d’équipements. N’apportez pas d’outils d’une zone à une autre, en particuli.......
M.P. et C.U. ont déposé un brevet en Thaïlande sur les formulations pour la détection multiplexée de l’ARN du SARS-CoV-2. R.K. ne déclare aucun intérêt concurrent.
C.U. reconnaît le financement de la Siam Commercial Bank dans le cadre du VISTEC-Siriraj Frontier Research Center, et de la Thailand Science Research and Innovation (TSRI), fonds fondamental, exercice 2024, numéro de subvention FRB670026/0457. R.K. et M.P. sont soutenus par des fonds d’études et d’assistanat de recherche de VISTEC, respectivement.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Material | |||
Betaine solution | Sigma-Aldrich | B0300-1VL | |
DEPC-Treated water | Invitrogen | AM9915G | |
Dithiothreitol (DTT) | Merck | 3870-25GM | |
EpiScript reverse transcriptase | Lucigen | ERT12925K | |
Gly-Gly-Gly | Sigma-Aldrich | SIA-50239-1G | |
LwaCas13a | Producing in-house | Strain name:Leptotrichia wadei, Abbreviation: Lwa, Protein name: LwaCas13a | |
Magnesium chloride solution, 1M | Sigma-Aldrich | M1028-10X1ML | |
NxGenT7 RNA polymerase | Lucigen | 30223-2 | |
Poly(ethylene glycol) | Sigma-Aldrich | 81300-1KG | |
Potassium acetate solution, 5M | Sigma-Aldrich | 95843-100ML-F | |
Riobnucleotide Solution Mix | NEB | N0466L | |
RNase H | NEB | M0297L | |
Sucrose | TCI | TCI-S0111-500G | |
Trehalose Dihydrate | Sigma-Aldrich | SIA-90210-50G | |
Trizma hydrochloride solution, 1M, pH 7.4 | Sigma-Aldrich | T2194-100ML | |
TwistAmp Basic kit | TwistDx | TABAS03KIT | |
Equipment | |||
BluPAD Dual LED Blue/White light transilluminator | Bio-Helix | BP001CU | |
Dry Bath Dual Block | ELITE | 4-2-EL-02-220 | Model: EL-02 |
Fluorescence microplate reader | Tecan | 30050303 | Model: Infinite 200 Pro |
Freeze dryer | LABCONCO | 794001030 | FreeZone Triad Benchtop Freeze Dryer |
Microplate 384-well | Greiner | GDE0784076 | F-Bottom, small volume, Hibase, Med. Binding, Black |
Real-time thermal cycler (CFX Connect Real-Time PCR System) | Bio-Rad | 185-5201 | Model: CFX Connect Optics Module |
Oligonucleotide | |||
s-gene forward RPA primer | IDT | GAAATTAATACGACTCAC TATAGGGAGGTTTCAAAC TTTACTTGCTTTACATAGA | |
s-gene reverse RPA primer | IDT | TCCTAGGTTGAAGA TAACCCACATAATAAG | |
n-gene forward RPA primer | IDT | GAAATTAATACGACTC ACTATAGGAACTTCTC CTGCTAGAATGGCTG | |
n-gene reverse RPA primer | IDT | CAGACATTTTGCTCTC AAGCTGGTTCAATC | |
LwaCas13a-crRNA for the s gene | Synthego | GAUUUAGACUACCCCAAAAAC GAAGGGGACUAAAACGCAGCA CCAGCUGUCCAACCUGAAGAAG | |
LwaCas13a-crRNA for the n gene | Synthego | GAUUUAGACUACCCCAAAAACG AAGGGGACUAAAACAAAGCAAG AGCAGCAUCACCGCCAUUGC | |
FAM-polyU-IABkFQ reporter | IDT | 56-FAM/rUrUrUrUrU/3IABkFQ | |
O-hannah_cytb_F RPA primer | IDT | GAAATTAATACGACTCACTA TAGGGTACGGATGAACCATA CAAAACCTTCACGCAATCG | |
O-hannah_cytb_R RPA primer | IDT | AAGATCCATAGTAGATTC CTCGTGCGATGTGGATA | |
synT7crRNA13a_ O_hannah | IDT | GCGCATCCATATTCTTCAT CTGCATTTAGTTTTAGTCC CCTTCGTTTTTGGGGTA GTCTAAATCCCCTATAGT GAGTCGTATTAATTTC |
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