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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats Représentatifs
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Ce protocole décrit la réalisation d’une craniectomie à l’aide d’une perceuse pneumatique à grande vitesse sur un porc Landrace danois âgé de 3 mois. L’accès se fait par l’os frontal et révèle la dure-mère ventrale et les hémisphères cérébraux sous-jacents. Cette procédure permet d’accéder à une grande partie du cerveau du porc.

Résumé

L’utilisation de porcs comme modèle animal expérimental est particulièrement pertinente dans la recherche en neurosciences, car les systèmes nerveux central (SNC) porcin et humain partagent de nombreuses propriétés fonctionnelles et architecturales importantes. Par conséquent, on s’attend à ce que les porcs jouent un rôle de plus en plus important dans les recherches futures sur diverses maladies neurologiques. Ici, une méthode pour effectuer une craniectomie antérieure à travers l’os frontal porcin est décrite. Après une incision médiane et l’exposition ultérieure de l’os frontal porcin, des repères anatomiques sont utilisés pour assurer l’emplacement optimal de la craniectomie. En amincissant soigneusement et progressivement l’os frontal avec une perceuse arrondie, une ouverture rectangulaire vers la dure-mère et les hémisphères cérébraux sous-jacents est obtenue. La méthode présentée nécessite certains matériaux chirurgicaux, y compris une perceuse pneumatique à grande vitesse, et un certain degré d’expérience chirurgicale. Les complications potentielles comprennent des lésions involontaires de la dure-mère ou du sinus sagittal dorsal. Cependant, la méthode est simple, rapide et offre un haut degré de reproductibilité pour les chercheurs. Si elle est correctement exécutée, la technique expose une grande partie du cerveau de porc non affecté à divers contrôles ou analyses neurologiques.

Introduction

En général, les modèles animaux sont utilisés lorsque des limites pratiques et/ou éthiques interdisent l’utilisation de patients humains pour examiner des maladies ou tester des méthodes chirurgicales. De nouveaux modèles animaux sont généralement établis pour fournir de nouvelles connaissances ayant une valeur translationnelle aux conditions humaines. Les rongeurs sont souvent utilisés pour des raisons pratiques et financières, mais ils ont une valeur translationnelle limitée pour les humains, notamment en raison de différences anatomiques substantielles1. Les porcs, cependant, offrent plusieurs avantages par rapport aux rongeurs. Non seulemen....

Protocole

Toutes les expériences sur les animaux décrites ont été effectuées à l’hôpital universitaire d’Aalborg, au Danemark, conformément aux lois en vigueur et avec l’approbation de l’Inspection danoise de l’expérimentation animale (licence n° 2020-15-0201-00401). Des porcs domestiques, femelles, d’environ 40 kg et âgées de 3 mois, ont été utilisés pour cette étude. Les détails concernant les réactifs et l’équipement utilisés sont répertoriés dans la table des matériaux.

1. Logement du sujet

  1. Hébergez les sujets en groupes avec des cycles lumière/obscurité de 12 h dans des enclos approuvés pendant au moin....

Résultats Représentatifs

La position couchée de la tête du porc offre un accès optimal au chirurgien pendant la procédure, et l’utilisation de sacs de sable stabilisateurs réduit le risque de changements involontaires de la position de la tête du porc pendant le forage.

Au cours de cette démonstration, les repères anatomiques superficiels du crâne supérieur du porc (les deux crêtes orbitaires supérieures et la crête nucale) (Figure 1 et Figure 3

Discussion

La procédure démontrée comporte plusieurs étapes critiques. Tout d’abord, la planification précise de l’emplacement de la craniectomie est cruciale en raison de la composition du crâne porcin. Étant donné que l’épaisseur de l’os frontal porcin augmente sur les bords latéraux, placer l’ouverture trop latéralement11 peut rendre difficile l’atteinte de la dure-mère pendant le forage. De plus, il est important de localiser correctement l’ouverture dans la ligne médiane pour .......

Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à déclarer.

Remerciements

Les auteurs tiennent à exprimer leur gratitude pour le soutien et l’expérience technique partagés par le personnel du laboratoire biomédical de l’hôpital universitaire d’Aalborg, au Danemark.

....

matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
10 mL plastic syrringesBecton, Dickinson and Company303219
107 Microdialysis pumpM DialysisP000127 107 Microdialysis Pump
2 mL plastic syrringesBecton, Dickinson and Company300928
25 mm, 18 G needlesBecton, Dickinson and Company304100
Bair Hugger heater3MB5005241003
Bair Hugger heating blanket3MB5005241003
Batery for microdialysis pumpM Dialysis8001788Battery 6V, 106 & MD Pump
DissectorKarl Storz223535Flattended 3 mm dissector
Endotracheal tube size 6.5DVMedDVM-107860Cuffed endotracheal tube
Euthasol VetDechra Veterinary Products A/S380019phentobarbital for euthanazia, 400 mg/mL
Farabeuf RougineMahr SurgicalFlat headed rougine (12 mm)
Foley Catheter 12 FBecton, Dickinson and CompanyD175812ECatherter with in-built thermosensor
Intravenous sheathCoris AvantiAvanti Cordis Femoral Sheath 6 F
Microdialysis brain cathetersM DialysisP000050membrane length 10 mm -shaft 100 mm 4/pkg
Microdialysis syringeM Dialysis8010191 106 Pump Syringe 20/pkg
Microvials for microdialysis samplingM DialysisP000001Microvials 250/pkg
Operating table
Pneumatic high-speed drillMedtronicMedtronic Midas Rex 7 drill
Primus respiratorDrägerRespirator with in-built vaporiser for supplementary Sevofluran anesthesia
Rounded diamond drillMedtronic7BA40D-MN
Self-retaining retractorWorld Precission Instruments501722Weitlander retractor, self-retaining, 14 cm blunt
Sterile SalineFresnius Kabi8055411000 mL
Sterile surgical swaps
Surgical scalpel no 24Swann Morton5.03396E+12Swann Morton Sterile Disposable Scalpel No. 24
Zoletil VetVirbacMedical mixture for induction of anesthesia

Références

  1. Mariager, T., Bjarkam, C., Nielsen, H., Bodilsen, J. Experimental animal models for brain abscess: a systematic review. Br J Neurosurg. , 1-8 (2022).
  2. Bassols, A., et al. The pig as an animal model for human pathologies:....

Réimpressions et Autorisations

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